Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Metoda ręcznego chowu marmozet niemowląt

3.5K wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/65296

⸱

9 czerwca 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurology of the Second Affiliated Hospital and Interdisciplinary Institute of Neuroscience and Technology, School of Medicine, Zhejiang University, 2Key Laboratory of Biomedical Engineering of Ministry of Education, College of Biomedical Engineering and Instrument Science, Zhejiang University, 3Rehabilitation Medicine Center, Rehabilitation & Sports Medicine Research Institute of Zhejiang Province, Department of Rehabilitation Medicine, Zhejiang Provincial People’s Hospital, Affiliated People’s Hospital, Hangzhou Medical College, 4NHC and CAMS Key Laboratory of Medical Neurobiology, MOE Frontier Science Center for Brain Science and Brain-Machine Integration, School of Brain Science and Brain Medicine, Zhejiang University

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj opisujemy metodę ręcznego chowu młodych marmozet w inkubatorze dla zwierząt. Metoda ta znacznie zwiększa przeżywalność niemowląt marmozet, co daje możliwość zbadania rozwoju niemowląt marmozet o podobnym pochodzeniu genetycznym, wychowywanych w różnych środowiskach poporodowych.

Streszczenie

Marmozeta zwyczajna (Callithrix jacchus) to mała i bardzo towarzyska małpa z Nowego Świata o wysokich wskaźnikach reprodukcji, która okazała się być przekonującym modelem naczelnych dla badań biomedycznych i neurobiologicznych. Niektóre samice rodzą trojaczki; Rodzice nie są jednak w stanie wychować ich wszystkich. Aby uratować te niemowlęta, opracowaliśmy metodę ręcznego chowu nowonarodzonych marmozet. W tym protokole opisujemy formułę karmy, czas karmienia, konfigurację temperatury i wilgotności, a także adaptację ręcznie wychowywanych niemowląt do środowiska kolonii. Ta metoda ręcznego chowu znacznie zwiększa przeżywalność niemowląt marmozet (bez ręcznego odchowywania: 45%; z odchowywaniem ręcznym: 86%) i daje możliwość zbadania rozwoju niemowląt marmozet o podobnym pochodzeniu genetycznym, wychowywanych w różnych środowiskach poporodowych. Ponieważ metoda jest praktyczna i łatwa w użyciu, przewidujemy, że może być również zastosowana w innych laboratoriach pracujących z marmozetami pospolitymi.

Wprowadzenie

Marmozeta zwyczajna (Callithrix jacchus) to mała i nadrzewna małpa z Nowego Świata pochodząca z Ameryki Południowej i Środkowej. Wykorzystanie marmozet w badaniach biomedycznych gwałtownie wzrosło w ciągu ostatnich dziesięcioleci ze względu na kilka kluczowych zalet marmozet w porównaniu z innymi naczelnymi (NHP), w tym ich mniejszy rozmiar ciała, łatwiejszą obsługę i hodowlę w niewoli, krótszy czas ciąży, wcześniejsze dojrzewanie płciowe i niższe ryzyko chorób odzwierzęcych1,2,3,4,5,6. Marmozeta zwyczajna ma podobną strukturę mózgu i funkcję mózgu do ludzi i wykazuje bogaty repertuar wokalizacji i wysoce społecznych zachowań z bogatymi emocjami. Jest to przekonujący model NHP dla różnych rodzajów badań neurobiologicznych, takich jak badania nad przetwarzaniem sensorycznym7,8,9,10,11,12,13,14, komunikacja głosowa15,16,17,18,19, modele urazów rdzenia kręgowego20,21,22,23, Choroba Parkinsona24,25,26,27,28, oraz choroby związane z wiekiem29. W porównaniu z innymi NHP, marmozeta zwyczajna ma stosunkowo wysoki wskaźnik reprodukcji, co jest potencjalnie przydatne w modyfikacji transgenicznej30,31,32. Ten naczelny jest również szeroko stosowany w farmakologii, angiografii oraz badaniach nad patogenami i odpornością33,34,35,36,37,38,39. Jednak podaż marmozet pozostaje bardzo ograniczona, zwłaszcza w Chinach, i nie jest w stanie sprostać szybko rosnącym potrzebom badań naukowych.

W koloniach marmozet dorosłe zwierzęta są karmione raz lub dwa razy dziennie, a kilka instytucji zmienia dietę dla młodych marmozet40. Ogólnie rzecz biorąc, młode marmozety zwykle mocno chwytają się ciała ojca lub starszego rodzeństwa w celu codziennej pielęgnacji i są podawane matce kilka razy dziennie na mleko. Niektóre samice marmozet rodzą trojaczki, aw tym przypadku jedno lub dwoje niemowląt nie może przeżyć z powodu braku mleka; Co więcej, niektórzy rodzice nie opiekują się swoimi niemowlętami z powodu braku doświadczenia w karmieniu piersią lub z innych nieznanych powodów. To duża strata dla wielu laboratoriów. Kilka badań opisało metody zarządzania żywieniem dorosłych marmozet w warunkach niewoli40,41,42 wykorzystujące żywność i formuły o różnych składach makroskładników, witaminach i minerałach, a także różne protokoły żywieniowe w celu wzbogacenia (puree, żelowanie, oczyszczanie lub puszkowanie)2,41. Jedno z poprzednich badań opisywało metodę wspólnego wychowu trojaczków marmozet43, w której opiekunowie biorą jedno niemowlę dziennie, karmią je ręcznie przez cały dzień i wymieniają na inne trojaczki następnego dnia. Chociaż ta metoda pozwala niemowlętom na opiekę rodzicielską, wymaga doświadczonego opiekuna, który codziennie chwyta niemowlę z ciała rodziców i jest pracochłonna. Do tej pory żadne badanie nie opisało szczegółowej, krok po kroku metody ręcznej hodowli nowonarodzonych marmozet.

Celem obecnego badania jest dostarczenie metody ręcznej hodowli dla osób zainteresowanych rozwojem marmozet, ale dysponujących ograniczonymi zasobami. W przeciwieństwie do poprzedniej metody wspólnego wychowania43, obecna metoda jest alternatywą, która powoduje mniej zakłóceń w rodzinie niemowlęcia i jest łatwa do nauczenia. Opierając się na podstawowych zasadach karmienia piersią i 5-letniej praktyce, w artykule opisano metodę ręcznego chowu marmozet niemowląt, która obejmuje przygotowanie pokarmu, harmonogram karmienia, konfigurację temperatury i wilgotności inkubatora dla zwierząt, a także adaptację niemowląt do środowiska kolonii.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Wszystkie procedury eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Opieki i Korzystania ze Zwierząt Uniwersytetu Zhejiang i były zgodne z wytycznymi Narodowych Instytutów Zdrowia (NIH).

1. Zakwaterowanie i pielęgnacja44

  1. Ustaw w pomieszczeniu hodowlanym cykl dnia i nocy 12 h:12 h, temperaturę na 26-28 °C oraz wilgotność względną na 45%-55%.
  2. Dobierz w pary samce i samice marmosetek w wieku od 2 do 6 lat i trzymaj je w klatkach (850 mm x 800 mm x 800 mm) z wystarczającą ilością miejsca i świeżym powietrzem dzięki systemowi wentylacji działającemu przez 24 h.
  3. Wyposaż klatki w półki do odpoczynku, huśtawki, żerdzie i hamaki.
  4. Podawaj parze marmosetek świeżą wodę oraz 30-40 g pokarmu dwa razy dziennie, w skład którego powinny wchodzić zboża, jaja, bataty, miód, owoce, warzywa i mączniki.
    UWAGA: Lekarze weterynarii i eksperymentatorzy muszą kontrolować pomieszczenie zwierzęce co najmniej raz dziennie, aby zapewnić natychmiastową diagnostykę i leczenie wszelkich chorych osobników.

2. Przygotowania przed narodzinami młodych marmosetów

  1. Opieka nad ciężarnymi marmosetami
    UWAGA: Czas zapłodnienia określono poprzez palpację (zazwyczaj 10–20 dni po rozpoczęciu okresu embrionalnego), odnosząc się również do historii rozrodczej zwierząt.
    1. Zapewnienie większej przestrzeni oraz minimalnego zakłócania przez ludzi par hodowlanych.
    2. Dokarmianie par hodowlanych dodatkowym pokarmem, takim jak larwy mącznika, jajka, jogurt i suszone owoce, aby zagwarantować odpowiednie odżywienie samic.
    3. Opieka i częste kontrolowanie ciężarnych marmosetów w celu przygotowania do porodu.
      UWAGA: Okres ciążowy marmosetów szacuje się na 148 dni ± 4,3 dni45.
  2. Przygotowanie następujących przedmiotów: inkubatora dla zwierząt (855 mm [W] x 470 mm [L] x 440 mm [H]), jednorazowych podkładów do pieluch (rozmiary M/L), chusteczek nawilżanych dla niemowląt, pluszowych zabawek (Rysunek 1A), wałków-zabawek (Rysunek 1B), stelaży do wspinania (Rysunek 1B), kocyków (10 cm х 10 cm, Rysunek 1C) oraz wagi elektronicznej (dokładność 0,2 g, Rysunek 1F).
    ​UWAGA: Aby zapobiec zawieszeniu się zwierząt, pluszowe zabawki nie powinny posiadać elementów w formie pętli.
  3. Przygotowanie pokarmu i sprzętu do karmienia
    1. Przygotowanie następujących przedmiotów: mleka modyfikowanego (odpowiedniego dla dzieci w wieku 0–12 miesięcy), ryżowej papki dla niemowląt (odpowiedniej dla dzieci w wieku 0–6 miesięcy), elektrycznego czajnika do wody, zlewki (100 mL), podkładu grzewczego, plastikowego naczynia wagowego (80 mm x 80 mm x 22 mm, Rysunek 1D), sterylnych probówek do wirówek (50 mL), jednorazowych sterylnych strzykawek (1–5 mL), kaniul do iniekcji dożylnych (do wykonania niestandardowych smoczków do karmienia) (Rysunek 1E) oraz gazików (80–100 cm).
      UWAGA: Aby wykonać smoczek do karmienia, należy naciąć kaniulę do iniekcji dożylnej przymocowaną do strzykawki w odległości 1 cm od jej końca (Rysunek 1E).
  4. Przygotowanie formularza dokumentacji
    1. Przygotowanie formularza (zazwyczaj wielostronicowego) dla każdego młodego marmoseta w celu zapisywania podstawowych informacji, takich jak imię, data urodzenia, masa urodzeniowa, rodzice, inne istotne dane, takie jak obwód głowy i długość ogona, informacje o hodowli, np. data i godzina karmienia, ilość przyjętego pokarmu (mL), status defekacji (tak/nie, twardy/luźny) oraz temperatura i wilgotność w inkubatorze.
      ​UWAGA: Zazwyczaj masę ciała mierzy się i zapisuje dwa razy dziennie, raz przed pierwszym posiłkiem i raz przed ostatnim posiłkiem.

Urządzenie do wzbogacania środowiska dla makaków marmosetów z pluszowymi zabawkami i ramami do wspinania; opiekun w ŚOI podczas badania nad opieką nad zwierzętami.
Rysunek 1: Zdjęcia przedmiotów w inkubatorze oraz narzędzi i akcesoriów do karmienia. (A) Zabawki pluszowe; (B) wałek-zabawka i ramy do wspinania; (C) koc; (D) plastikowy naczynie do ważenia; (E) wstrzykiwacz dożylny i strzykawka z wykonanym na zamówienie smoczkiem do karmienia; (F) waga elektroniczna; (G) opiekun w środkach ochrony indywidualnej. Kliknij tutaj, aby zobaczyć powiększoną wersję tego rysunku.

3. Procedura ręcznego wychowu

  1. Wyczyścić i wysterylizować pomieszczenie przed wyznaczonym terminem.
    1. Spryskać podłogę i stół kwasem podchlorowym lub 75% alkoholem etylowym, pozostawić na 30 s, a następnie wytrzeć stół i umyć podłogę mopem.
  2. Ustawić temperaturę inkubatora na 35 °C, a wilgotność na 40%. Zazwyczaj, aby symulować podstawowe zapotrzebowanie temperaturowe młodych marmosetów, jak pokazuje Tabela 1, przed 14. dniem po urodzeniu (P14) należy utrzymywać temperaturę inkubatora na poziomie 35 °C, a od P15 obniżać temperaturę o 0.5 °C co 3 dni. Wilgotność wewnątrz inkubatora należy utrzymywać na poziomie 40%-45%, co odpowiada wilgotności w kolonii i zapobiega zawilgoceniu futra młodych zwierząt.
  3. Wyłożyć dno inkubatora jednorazową podkładką higieniczną.
  4. Aby zminimalizować stres u młodych, przed wprowadzeniem marmosetów do inkubatora należy włożyć do niego kilka kocyków i pluszowych zabawek, które mają na celu imitowanie dorosłych osobników.
    UWAGA: Kocyki i pluszowe zabawki powinny przebywać w klatce domowej par hodowlanych przez 1 dzień przed użyciem.
  5. Umieścić młode marmosety w inkubatorze i położyć je na pluszowych zabawkach po oddzieleniu od rodziców w klatce domowej.
    UWAGA: Aby uniknąć izolacji społecznej i zgodnie z zasadami dobrostanu zwierząt, do ręcznego wychowu zazwyczaj wybiera się dwa młode wspólnie.
    1. Przed karmieniem założyć wysterylizowane środki ochrony indywidualnej (PPE, Rysunek 1G).
    2. Ogrzać kilka kocyków do 35 °C.
    3. Delikatnie chwycić młode marmosety za pomocą ciepłych kocyków i zmierzyć masę ciała zwierzęcia jako masę urodzeniową.
    4. Przenieść młode marmosety do inkubatora w ciepłych kocykach.
    5. Dokonać zapisów, jak wspomniano w kroku 2.4.
  6. Przygotować mieszankę pokarmową i nakarmić młode marmosety.
    1. Rozpuścić 5 g mleka modyfikowanego w 30 mL przegotowanej wody o temperaturze 50 °C w 50 mL sterylnej probówce wirówkowej.
      UWAGA: Młode marmosety w różnym wieku postnatalnym wymagają różnych receptur pokarmu. Tabela 2 zawiera różne dawki mleka modyfikowanego, papki ryżowej i wody dla wieku postnatalnego od P1 do P60. Dawka jest zazwyczaj wystarczająca na 1 dzień. Składniki należy wymieszać przed pierwszym posiłkiem, a resztę pokarmu przechowywać w lodówce w temperaturze 4 °C. Przed każdym posiłkiem pokarm należy podgrzać do 30-35 °C.
    2. Nabrać 1 mL pokarmu strzykawką 1 mL i założyć na strzykawkę specjalnie wykonany smoczek do karmienia.
      UWAGA: Należy wybrać strzykawkę o odpowiednim rozmiarze, odnosząc się do Tabeli 2.
    3. Utrzymywać temperaturę pokarmu w zakresie 30-35 °C za pomocą podkładki grzejnej.
    4. Ogrzać dłonie przed karmieniem, a następnie delikatnie chwycić młode marmoseta ciepłym kocykiem w jednej ręce wewnątrz inkubatora.
    5. Wprowadzić smoczek do pyszczka młodego marmoseta, podczas gdy jego głowa jest lekko podtrzymywana kciukiem i palcem wskazującym ręki opiekuna, i powoli wypychać pokarm ze strzykawki ze stałą prędkością.
      UWAGA: Nigdy nie należy wypychać pokarmu szybciej, niż młody marmoset go połyka. Zbyt szybkie podawanie może spowodować zadławienie i cofnięcie pokarmu z gardła przez nos. Może to prowadzić do schorzeń takich jak zapalenie płuc, a nawet do śmierci. Jeśli pokarm wypłynie, młody marmoset będzie się szamotać. W takim przypadku należy przerwać karmienie i ostrożnie wytrzeć pokarm z pyszczka zwierzęcia. Karmienie należy kontynuować po tym, jak marmoset zacznie zachowywać się normalnie.
  7. Po spożyciu przez młodego marmoseta odpowiedniej ilości pokarmu, przemyć jego odbyt tamponem z ciepłą wodą, co zapewnia higienę i stymuluje defekację.
  8. Obserwować zwierzę przez kilka minut, sprawdzając jego lokomocję i defekację.
  9. Zapisywać czas karmienia, ilość (mL) przyjętego pokarmu, stan defekacji (tak/nie, twarda/luźna) oraz temperaturę i wilgotność w inkubatorze.
    UWAGA: Podczas ważenia owinąć młodego marmoseta ciepłymi kocykami, aby zapobiec wychłodzeniu lub urazom zwierzęcia.
  10. Utrzymywać czystość dna inkubatora poprzez usuwanie stałych odchodów lub wymianę jednorazowej podkładki higienicznej na nową.
  11. Przed P50 karmić młode marmosety zgodnie z krokami 3.3-3.7, stosując dawki składników pokarmowych oraz czas i częstotliwość karmienia podane w Tabeli 2.
  12. Od P50 młode marmosety są zazwyczaj gotowe do samodzielnego jedzenia.
    1. Zamiast strzykawek używać plastikowych naczyń wagowych. Przygotować pokarm, mieszając składniki bezpośrednio w naczyniu; ilości podano w Tabeli 2.
    2. Umieścić naczynie z pokarmem w inkubatorze i przymocować dno, aby zapobiec jego przewróceniu. Obserwować przez kilka minut, aby upewnić się, że młode marmosety jedzą pokarm. Przez pierwsze kilka razy zachęcać zwierzę do samodzielnego jedzenia, wabiąc je do naczynia i kilka razy kierując jego pyszczek tak, aby dotknął pokarmu.
      ​UWAGA: Nigdy nie dopuszczać do tego, aby nos zwierzęcia dotykał pokarmu. Zazwyczaj zwierzę uczy się samodzielnie jeść w ciągu 1 dnia.

4. Aklimatyzacja przed powrotem młodych marmosetów do kolonii

UWAGA: Zazwyczaj ręczne wychowywanie kończy się, gdy młode marmosety nauczą się samodzielnie jeść. Przed powrotem do klatki macierzystej w kolonii marmosetów należy przeprowadzić kilka procedur adaptacyjnych.

  1. Przenieś młode marmosety z inkubatora dla zwierząt do małych klatek (45 cm x 45 cm x 40 cm), które przypominają klatki dla ptaków. Do każdej małej klatki zawieś butelkę z wodą (50 mL).
  2. Przenieś małe klatki z młodymi marmosetami do kolonii i ustaw je w pobliżu klatki rodzinnej.
  3. Karmij młode marmosety oddzielnie, używając plastikowego naczynia wagowego, przez 1 tydzień, przygotowując pokarm zgodnie z codziennymi recepturami opracowanymi dla całej kolonii.
  4. Odnotowuj masę ciała oraz status defekacji raz dziennie.

5. Powrót młodych marmosetów do klatki rodzinnej

UWAGA: Po przebywaniu w małej klatce przez 7-10 dni, młode marmosety zazwyczaj dobrze adaptują się do środowiska kolonii i nie wykazują już stanów lękowych.

  1. Wróć młode marmosety do klatki rodzinnej rano.
  2. Obserwuj zwierzęta przez co najmniej 15 min, aby upewnić się, że między członkami rodziny a nowymi osobnikami nie dochodzi do gryzienia, walk lub pogoni.
    UWAGA: Jeśli wystąpi gryzienie, walka lub pościg, oddziel młode od pozostałych tak szybko, jak to możliwe, i spróbuj zwrócić młode do rodziny jeszcze raz w innym dniu. Jeśli niepowodzenie powtórzy się, wybierz inną rodzinę do adopcji. W pierwszej kolejności do adopcji należy wybierać grupy rodzinne z dużym doświadczeniem rodzicielskim. Jeśli żadna rodzina nie zaakceptuje młodej małpy, umieść w nowej klatce pluszową zabawkę, aby towarzyszyła ona zwierzęciu.
  3. Zaprzestań oddzielnego karmienia młodych marmosetów i zacznij karmić je dietą stosowaną w kolonii.
  4. Przez 1 tydzień po powrocie do klatki rodzinnej uważnie obserwuj aktywność młodych marmosetów.
  5. Co 2 dni mierz masę ciała młodych marmosetów i prowadź dokumentację. W przypadku utraty wagi podawaj im dodatkową żywność odżywczą za pomocą strzykawki w klatce rodzinnej.
  6. Zapewnij młodym marmosetom codzienną opiekę, analogicznie do marmosetów w kolonii.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Masa ciała jest kluczowym wskaźnikiem rozwoju organizmu zwierząt i w niniejszym protokole służy jako miernik stanu zdrowia marmosetek. W tej pracy masa ciała zwierząt karmionych ręcznie wzrastała stopniowo wraz z wiekiem (Rysunek 2A, n = 16), podobnie jak masa noworodków w poprzednim badaniu46. Aby zminimalizować stres rodzin hodowlanych w kolonii, nie ważyliśmy codziennie młodych marmosetek w kolonii. Masę ciała zwierząt wychowywanych przez rodziców mierzono 1 miesią...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Marmozeta pospolita jest bardzo przydatnym modelem NHP w badaniach biomedycznych i neurobiologicznych. Jednak zasoby marmozet są zbyt ograniczone, aby sprostać szybko rosnącym potrzebom. W niniejszej pracy opracowaliśmy metodę chowu ręcznego, która nie tylko zwiększa przeżywalność niemowląt marmozet, ale także daje możliwość zbadania ich rozwoju poporodowego. Ta metoda ręcznej hodowli jest praktyczna i łatwa do nauczenia, a zatem można ją łatwo zastosować w innych laboratoriach pracujących z marmozetami pospolitymi.

...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Autorzy chcieliby podziękować Mingxuan Li za jego edycję gramatyki i dopracowanie wczesnej wersji tego rękopisu. Prace te były wspierane przez Chińską Fundację Nauk Przyrodniczych Prowincji Zhejiang (LD22H090003); Chińska Fundacja Nauk Przyrodniczych (32170991 i 32071097), STI2030-Duże projekty 2021ZD0204100 (2021ZD0204101) i 2022ZD0205000 (2022ZD0205003); oraz MOE Frontier Science Center for Brain Science & Brain-Machine Integration, Zhejiang University.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
inkubator dla zwierzątRCOM, KoreaMX - BL600N, 855 mm (szer.) x 470 mm (dł.) x 440 mm (wys.)
mleko w proszku dla niemowlątMeadjohnson, Amerykaodpowiedni dla dzieci w wieku 0-12 miesięcy, standard wykonawczy - GB25596
pasta ryżowadla niemowląt HEINZ, Chinyodpowiedni dla dzieci w wieku 0-6 miesięcy, standard wykonawczy - GB10769
chusteczki dla niemowląt dopielęgnacji niemowląt, Chinymiękkie
zlewkaShuNiu, ChinyKoce 100 ml
Grace, Chiny10 cm i razy; 10 cm, miękki
plac zabawWowWee, Chinymocne i nie ma małych okrągłych struktur
jednorazowe podkładki na pieluchyHi Health Pet, Chinyjednorazowa
sterylna strzykawkaCofoe, Chiny1 ml, 2,5 mL, 3 mL, 5 mL, 10 ml
waga elektronicznaYouSheng, Chinyzakres pomiarowy od 0 do 6,000 g z precyzją 0,2 g
wstrzykiwacz dożylnyHD, Chinyigłowy 0,55 mm x 20 mm
FGA, Chinyczajnik utrzymujący ciepło 1,500 ml
laktulozyBELCOL, Chinydo rozwiązywania zaparć
plastikowe naczynie do ważeniaSKSLAB, Chiny80 mm x 80 mm x 22 mm, używany jako pluszowa zabawka w misce
Lebiyou, Chinymiękki
probiotykw proszku G-Pet, Chinydo regulacji środowiska żołądkowo-jelitowego
sterylna probówka wirówkowaNEST, Chinywacik 50 ml
OYEAH, Chiny80 - 100 mm
wałek zabawkowyWowWee, Chinymocne i bez małych okrągłych struktur
w rozmiarze M lub L Czajnik

Bibliografia

  1. Miller, C. T., et al. Marmosets: A neuroscientific model of human social behavior. Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).
  2. Ross, C. N., Colman, R., Power, M., Tardif, S. Marmoset metabolism, nutrition, and obesity. ILAR Journal. 61 (2-3), 179-187 (2020).
  3. Kishi, N., Sato, K., Sasaki, E., Okano, H. Common marmoset as a new model animal for neuroscience research and genome editing technology. Development, Growth & Differentiation. 56 (1), 53-62 (2014).
  4. Prins, N. W., et al. Common marmoset (Callithrix jacchus) as a primate model for behavioral neuroscience studies. Journal of Neuroscience Methods. 284, 35-46 (2017).
  5. Tokuno, H., Watson, C., Roberts, A., Sasaki, E., Okano, H. Marmoset neuroscience. Neuroscience Research. 93, 1-2 (2015).
  6. Hodges, J. K., Henderson, C., Hearn, J. P. Relationship between ovarian and placental steroid production during early pregnancy in the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Journal of Reproduction and Fertility. 69 (2), 613-621 (1983).
  7. Troilo, D., Judge, S. J. Ocular development and visual deprivation myopia in the common marmoset (Callithrix jacchus). Vision Research. 33 (10), 1311-1324 (1993).
  8. Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
  9. Hung, C. C., et al. Functional MRI of visual responses in the awake, behaving marmoset. NeuroImage. 120, 1-11 (2015).
  10. Gao, L., Kostlan, K., Wang, Y., Wang, X. Distinct subthreshold mechanisms underlying rate-coding principles in primate auditory cortex. Neuron. 91 (4), 905-919 (2016).
  11. Gao, L., Wang, X. Subthreshold activity underlying the diversity and selectivity of the primary auditory cortex studied by intracellular recordings in awake marmosets. Cerebral Cortex. 29 (3), 994-1005 (2019).
  12. Gao, L., Wang, X. Intracellular neuronal recording in awake nonhuman primates. Nature Protocols. 15, 3615-3631 (2020).
  13. Wang, X., et al. Corticofugal modulation of temporal and rate representations in the inferior colliculus of the awake marmoset. Cerebral Cortex. 32 (18), 4080-4097 (2022).
  14. Wang, X., et al. Selective corticofugal modulation on sound processing in auditory thalamus of awake marmosets. Cerebral Cortex. 33 (7), 3372-3386 (2022).
  15. Kajikawa, Y., et al. Coding of FM sweep trains and twitter calls in area CM of marmoset auditory cortex. Hearing Research. 239 (1-2), 107-125 (2008).
  16. Choi, D., Bruderer, A. G., Werker, J. F., et al. Sensorimotor influences on speech perception in pre-babbling infants: Replication and extension of Bruderer et al. Psychonomic Bulletin & Review. 26 (4), 1388-1399 (2019).
  17. Eliades, S. J., Miller, C. T. Marmoset vocal communication: Behavior and neurobiology. Developmental Neurobiology. 77 (3), 286-299 (2017).
  18. Roy, S., Zhao, L., Wang, X. Distinct neural activities in premotor cortex during natural vocal behaviors in a New World primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Journal of Neuroscience. 36 (48), 12168-12179 (2016).
  19. Simões, C. S., et al. Activation of frontal neocortical areas by vocal production in marmosets. Frontiers in Integrative Neuroscience. 4, 123(2010).
  20. Iwanami, A., et al. Transplantation of human neural stem cells for spinal cord injury in primates. Journal of Neuroscience Research. 80 (2), 182-190 (2005).
  21. Schorscher-Petcu, A., Dupré, A., Tribollet, E. Distribution of vasopressin and oxytocin binding sites in the brain and upper spinal cord of the common marmoset. Neuroscience Letters. 461 (3), 217-222 (2009).
  22. Bowes, C., Burish, M., Cerkevich, C., Kaas, J. Patterns of cortical reorganization in the adult marmoset after a cervical spinal cord injury. Journal of Comparative Neurology. 521 (15), 3451-3463 (2013).
  23. Kondo, T., et al. Histological and electrophysiological analysis of the corticospinal pathway to forelimb motoneurons in common marmosets. Neuroscience Research. 98, 35-44 (2015).
  24. Nash, J. E., et al. Antiparkinsonian actions of ifenprodil in the MPTP-lesioned marmoset model of Parkinson's disease. Experimental Neurology. 165 (1), 136-142 (2000).
  25. van Vliet, S. A., et al. Neuroprotective effects of modafinil in a marmoset Parkinson model: Behavioral and neurochemical aspects. Behavioural Pharmacology. 17 (5-6), 453-462 (2006).
  26. van Vliet, S. A., Vanwersch, R. A., Jongsma, M. J., Olivier, B., Philippens, I. H. Therapeutic effects of Delta9-THC and modafinil in a marmoset Parkinson model. European Neuropsychopharmacology. 18 (5), 383-389 (2008).
  27. Philippens, I. H., t Hart, B. A., Torres, G. The MPTP marmoset model of parkinsonism: a multi-purpose non-human primate model for neurodegenerative diseases. Drug Discovery Today. 15 (23-24), 985-990 (2010).
  28. Santana, M. B., et al. Spinal cord stimulation alleviates motor deficits in a primate model of Parkinson disease. Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).
  29. Tardif, S. D., Mansfield, K. G., Ratnam, R., Ross, C. N., Ziegler, T. E. The marmoset as a model of aging and age-related diseases. ILAR Journal. 52 (1), 54-65 (2011).
  30. Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459, 523-527 (2009).
  31. Sasaki, E. Prospects for genetically modified non-human primate models, including the common marmoset. Neuroscience Research. 93, 110-115 (2015).
  32. Park, J. E., Sasaki, E. Assisted reproductive techniques and genetic manipulation in the common marmoset. ILAR Journal. 61 (2-3), 286-303 (2020).
  33. Smith, D., Trennery, P., Farningham, D., Klapwijk, J. The selection of marmoset monkeys (Callithrix jacchus) in pharmaceutical toxicology. Laboratory Animals. 35 (2), 117-130 (2001).
  34. Smith, T. E., Tomlinson, A. J., Mlotkiewicz, J. A., Abbott, D. H. Female marmoset monkeys (Callithrix jacchus) can be identified from the chemical composition of their scent marks. Chemical Senses. 26 (5), 449-458 (2001).
  35. Jagessar, S. A., et al. Induction of progressive demyelinating autoimmune encephalomyelitis in common marmoset monkeys using MOG34-56 peptide in incomplete freund adjuvant. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 69 (4), 372-385 (2010).
  36. Kap, Y. S., Laman, J. D., 't Hart, B. A. Experimental autoimmune encephalomyelitis in the common marmoset, a bridge between rodent EAE and multiple sclerosis for immunotherapy development. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 5 (2), 220-230 (2010).
  37. Carrion, R., Patterson, J. L. An animal model that reflects human disease: The common marmoset (Callithrix jacchus). Current Opinion in Virology. 2 (3), 357-362 (2012).
  38. Jagessar, S. A., et al. Overview of models, methods, and reagents developed for translational autoimmunity research in the common marmoset (Callithrix jacchus). Experimental Animals. 62 (3), 159-171 (2013).
  39. Feng, Z., et al. Biologically excretable aggregation-induced emission dots for visualizing through the marmosets intravitally: Horizons in future clinical nanomedicine. Advanced Materials. 33 (17), 2008123(2021).
  40. Goodroe, A., et al. Current practices in nutrition management and disease incidence of common marmosets (Callithrix jacchus). Journal of Medical Primatology. 50 (3), 164-175 (2021).
  41. Power, M. L., Koutsos, L. Chapter 4 - Marmoset nutrition and dietary husbandry. The Common Marmoset in Captivity and Biomedical Research. Marini, R., Wachtman, L., Tardif, S., Mansfield, K., Fox, J. , Academic Press. Cambridge, MA. 63-76 (2019).
  42. Gore, M. A., et al. Callitrichid nutrition and food sensitivity. Journal of Medical Primatology. 30 (3), 179-184 (2001).
  43. Hearn, J. P., Burden, F. J. Collaborative' rearing of marmoset triplets. Laboratory Animals. 13 (2), 131-133 (1979).
  44. Cao, X., et al. Effect of a high estrogen level in early pregnancy on the development and behavior of marmoset offspring. ACS Omega. 7 (41), 36175-36183 (2022).
  45. Watakabe, A., et al. Application of viral vectors to the study of neural connectivities and neural circuits in the marmoset brain. Developmental Neurobiology. 77 (3), 354-372 (2017).
  46. Takahashi, D. Y., et al. The developmental dynamics of marmoset monkey vocal production. Science. 349 (6249), 734-738 (2015).
  47. Malukiewicz, J., et al. The gut microbiome of exudivorous marmosets in the wild and captivity. Scientific Reports. 12 (1), 5049(2022).
  48. Shigeno, Y., et al. Comparison of gut microbiota composition between laboratory-bred marmosets (Callithrix jacchus) with chronic diarrhea and healthy animals using terminal restriction fragment length polymorphism analysis. Microbiology and Immunology. 62 (11), 702-710 (2018).
  49. Baxter, V. K., et al. Serum albumin and body weight as biomarkers for the antemortem identification of bone and gastrointestinal disease in the common marmoset. PLoS One. 8 (12), e82747(2013).
  50. Tardif, S. D., et al. Characterization of obese phenotypes in a small nonhuman primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Obesity. 17 (8), 1499-1505 (2009).
  51. Wachtman, L. M., et al. Differential contribution of dietary fat and monosaccharide to metabolic syndrome in the common marmoset (Callithrix jacchus). Obesity. 19 (6), 1145-1156 (2011).
  52. Power, M. L., Ross, C. N., Schulkin, J., Ziegler, T. E., Tardif, S. D. Metabolic consequences of the early onset of obesity in common marmoset monkeys. Obesity. 21 (12), E592-E598 (2013).
  53. Shimizu, K., et al. Peer-social response in 4 juvenile marmosets represented the emotional development traits depending on family structure. Neuroscience Research. 65, S244(2009).
  54. Schultz-Darken, N., Braun, K. M., Emborg, M. E. Neurobehavioral development of common marmoset monkeys. Developmental Psychobiology. 58 (2), 141-158 (2016).
  55. Gultekin, Y. B., Hage, S. R. Limiting parental feedback disrupts vocal development in marmoset monkeys. Nature Communications. 8, 14046(2017).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Kolonia marmosetówwskaźnik przeżywalnościprotokół karmieniakonfiguracja inkubatoraprzygotowanie mieszanki mlecznejmonitorowanie masy ciałaśrodowisko postnatalnemodel naczelny
Metoda ręcznego chowu marmozet niemowląt
Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.