Artykuł metodologiczny

Metoda ręcznego chowu marmozet niemowląt

DOI:

10.3791/65296

⸱

9 czerwca 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurology of the Second Affiliated Hospital and Interdisciplinary Institute of Neuroscience and Technology, School of Medicine, Zhejiang University, 2Key Laboratory of Biomedical Engineering of Ministry of Education, College of Biomedical Engineering and Instrument Science, Zhejiang University, 3Rehabilitation Medicine Center, Rehabilitation & Sports Medicine Research Institute of Zhejiang Province, Department of Rehabilitation Medicine, Zhejiang Provincial People’s Hospital, Affiliated People’s Hospital, Hangzhou Medical College, 4NHC and CAMS Key Laboratory of Medical Neurobiology, MOE Frontier Science Center for Brain Science and Brain-Machine Integration, School of Brain Science and Brain Medicine, Zhejiang University

W tym artykule

Podsumowanie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Tutaj opisujemy metodę ręcznego chowu młodych marmozet w inkubatorze dla zwierząt. Metoda ta znacznie zwiększa przeżywalność niemowląt marmozet, co daje możliwość zbadania rozwoju niemowląt marmozet o podobnym pochodzeniu genetycznym, wychowywanych w różnych środowiskach poporodowych.

Streszczenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Marmozeta zwyczajna (Callithrix jacchus) to mała i bardzo towarzyska małpa z Nowego Świata o wysokich wskaźnikach reprodukcji, która okazała się być przekonującym modelem naczelnych dla badań biomedycznych i neurobiologicznych. Niektóre samice rodzą trojaczki; Rodzice nie są jednak w stanie wychować ich wszystkich. Aby uratować te niemowlęta, opracowaliśmy metodę ręcznego chowu nowonarodzonych marmozet. W tym protokole opisujemy formułę karmy, czas karmienia, konfigurację temperatury i wilgotności, a także adaptację ręcznie wychowywanych niemowląt do środowiska kolonii. Ta metoda ręcznego chowu znacznie zwiększa przeżywalność niemowląt marmozet (bez ręcznego odchowywania: 45%; z odchowywaniem ręcznym: 86%) i daje możliwość zbadania rozwoju niemowląt marmozet o podobnym pochodzeniu genetycznym, wychowywanych w różnych środowiskach poporodowych. Ponieważ metoda jest praktyczna i łatwa w użyciu, przewidujemy, że może być również zastosowana w innych laboratoriach pracujących z marmozetami pospolitymi.

Wprowadzenie

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Marmozeta zwyczajna (Callithrix jacchus) to mała i nadrzewna małpa z Nowego Świata pochodząca z Ameryki Południowej i Środkowej. Wykorzystanie marmozet w badaniach biomedycznych gwałtownie wzrosło w ciągu ostatnich dziesięcioleci ze względu na kilka kluczowych zalet marmozet w porównaniu z innymi naczelnymi (NHP), w tym ich mniejszy rozmiar ciała, łatwiejszą obsługę i hodowlę w niewoli, krótszy czas ciąży, wcześniejsze dojrzewanie płciowe i niższe ryzyko chorób odzwierzęcych1,2,3,4,5,6. Marmozeta zwyczajna ma podobną strukturę mózgu i funkcję mózgu do ludzi i wykazuje bogaty repertuar wokalizacji i wysoce społecznych zachowań z bogatymi emocjami. Jest to przekonujący model NHP dla różnych rodzajów badań neurobiologicznych, takich jak badania nad przetwarzaniem sensorycznym7,8,9,10,11,12,13,14, komunikacja głosowa15,16,17,18,19, modele urazów rdzenia kręgowego20,21,22,23, Choroba Parkinsona24,25,26,27,28, oraz choroby związane z wiekiem29. W porównaniu z innymi NHP, marmozeta zwyczajna ma stosunkowo wysoki wskaźnik reprodukcji, co jest potencjalnie przydatne w modyfikacji transgenicznej30,31,32. Ten naczelny jest również szeroko stosowany w farmakologii, angiografii oraz badaniach nad patogenami i odpornością33,34,35,36,37,38,39. Jednak podaż marmozet pozostaje bardzo ograniczona, zwłaszcza w Chinach, i nie jest w stanie sprostać szybko rosnącym potrzebom badań naukowych.

W koloniach marmozet dorosłe zwierzęta są karmione raz lub dwa razy dziennie, a kilka instytucji zmienia dietę dla młodych marmozet40. Ogólnie rzecz biorąc, młode marmozety zwykle mocno chwytają się ciała ojca lub starszego rodzeństwa w celu codziennej pielęgnacji i są podawane matce kilka razy dziennie na mleko. Niektóre samice marmozet rodzą trojaczki, aw tym przypadku jedno lub dwoje niemowląt nie może przeżyć z powodu braku mleka; Co więcej, niektórzy rodzice nie opiekują się swoimi niemowlętami z powodu braku doświadczenia w karmieniu piersią lub z innych nieznanych powodów. To duża strata dla wielu laboratoriów. Kilka badań opisało metody zarządzania żywieniem dorosłych marmozet w warunkach niewoli40,41,42 wykorzystujące żywność i formuły o różnych składach makroskładników, witaminach i minerałach, a także różne protokoły żywieniowe w celu wzbogacenia (puree, żelowanie, oczyszczanie lub puszkowanie)2,41. Jedno z poprzednich badań opisywało metodę wspólnego wychowu trojaczków marmozet43, w której opiekunowie biorą jedno niemowlę dziennie, karmią je ręcznie przez cały dzień i wymieniają na inne trojaczki następnego dnia. Chociaż ta metoda pozwala niemowlętom na opiekę rodzicielską, wymaga doświadczonego opiekuna, który codziennie chwyta niemowlę z ciała rodziców i jest pracochłonna. Do tej pory żadne badanie nie opisało szczegółowej, krok po kroku metody ręcznej hodowli nowonarodzonych marmozet.

Celem obecnego badania jest dostarczenie metody ręcznej hodowli dla osób zainteresowanych rozwojem marmozet, ale dysponujących ograniczonymi zasobami. W przeciwieństwie do poprzedniej metody wspólnego wychowania43, obecna metoda jest alternatywą, która powoduje mniej zakłóceń w rodzinie niemowlęcia i jest łatwa do nauczenia. Opierając się na podstawowych zasadach karmienia piersią i 5-letniej praktyce, w artykule opisano metodę ręcznego chowu marmozet niemowląt, która obejmuje przygotowanie pokarmu, harmonogram karmienia, konfigurację temperatury i wilgotności inkubatora dla zwierząt, a także adaptację niemowląt do środowiska kolonii.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury eksperymentalne zostały zatwierdzone przez Komitet ds. Użytkowania i Opieki nad Zwierzętami Uniwersytetu Zhejiang i były zgodne z wytycznymi National Institutes of Health (NIH).

1. Pomieszczenia i hodowla44

  1. Ustaw pomieszczenie kolonijne na cykl dzień/noc 12 h:12 h, temperaturę na 26-28 °C i wilgotność względną na 45%-55%.
  2. Sparuj samce i samice marmozet w wieku 2-6 lat i trzymaj je w klatkach (850 mm x 800 mm x 800 mm) z wystarczającą ilością miejsca i świeżym powietrzem z 24-godzinnym systemem wentylacji.
  3. W klatkach zapewnij deski do odpoczynku, huśtawki, grzędy i hamaki.
  4. Karm parę marmozet świeżą wodą i 30-40 g jedzenia dwa razy dziennie, w tym płatkami zbożowymi, jajkami, słodkimi ziemniakami, miodem, owocami, warzywami i larwami mącznika.
    UWAGA: Lekarze weterynarii i eksperymentatorzy muszą przeprowadzać inspekcję obiektu dla zwierząt co najmniej raz dziennie, aby upewnić się, że wszystkie chore osoby są natychmiast diagnozowane i leczone.

2. Przygotowanie przed narodzinami niemowląt marmozet

  1. Opieka nad ciężarnymi marmozetami
    UWAGA: Czas zapłodnienia został zdiagnozowany za pomocą badania palpacyjnego (zwykle 10-20 dni po rozpoczęciu okresu embrionalnego), a także odnieśliśmy się do historii rozrodczej badanych zwierząt.
    1. Zapewnij parom lęgowym większą przestrzeń i minimalny wpływ człowieka na zakłócenia.
    2. Nakarm pary hodowlane dodatkowym pokarmem, takim jak larwy mącznika, jaja, jogurt i suszone owoce, aby zagwarantować pożywienie samicom.
    3. Dbaj o ciężarne marmozety i często je sprawdzaj, aby przygotować się do porodu.
      UWAGA: Okres ciąży marmozety szacuje się na 148 dni ± 4,3 dnia45.
  2. Przygotuj następujące elementy: inkubator dla zwierząt (855 mm [szer.] x 470 mm [dł.] x 440 mm [wys.]), jednorazowe wkładki do pieluch (rozmiary M/L), chusteczki dla niemowląt, pluszowe zabawki (Rysunek 1A), rolki do zabawek (Rysunek 1B), drabinki (Rysunek 1B), koce (10 cm x 10 cm, Rysunek 1C) oraz waga elektroniczna (dokładność 0,2 g, Rysunek 1F).
    UWAGA: Aby uniknąć zawieszania się zwierząt, pluszowe zabawki nie powinny mieć struktur pętelkowych.
  3. Przygotowanie urządzeń do żywności i karmienia
    1. Przygotuj następujące elementy: mleko modyfikowane dla niemowląt (odpowiednie dla dzieci w wieku 0-12 miesięcy), pasta ryżowa dla niemowląt (odpowiednia dla dzieci w wieku 0-6 miesięcy), czajnik elektryczny, zlewka (100 ml), podkładka grzewcza, plastikowe naczynie do ważenia (80 mm x 80 mm x 22 mm, Rysunek 1D), sterylne probówki wirówkowe (50 ml), jednorazowe sterylne strzykawki (1-5 ml), wstrzykiwacze dożylne (do smoczków do karmienia na zamówienie) (Rysunek 1E), i waciki (80-100 cm).
      UWAGA: Aby wykonać smoczek do karmienia, wykonuje się nacięcie 1 cm od końca wstrzykiwacza dożylnego podłączonego do strzykawki (Rysunek 1E).
  4. Przygotowanie formularza nagrania
    1. Przygotuj formularz, zwykle o długości kilku stron, dla każdego młodego marmozety, aby zapisać podstawowe informacje, takie jak imię, data urodzenia, waga urodzeniowa, rodzice, inne podstawowe informacje, takie jak obwód głowy i długość ogona, informacje hodowlane, takie jak data i godzina rozrodu, ilość (ml) pobranego pokarmu, stan wypróżnienia (tak/nie, twardy/luźny), a temperatura i wilgotność inkubatora.
      UWAGA: Zazwyczaj masa ciała jest mierzona i rejestrowana dwa razy dziennie, raz przed pierwszym posiłkiem i raz przed ostatnim posiłkiem.

figure-protocol-1
Rysunek 1: Zdjęcia przedmiotów w inkubatorze oraz narzędzi i akcesoriów do karmienia. (A) Pluszowe zabawki; (B) zabawkowe rolki i drabinki; (C) koc; D) plastikowa szalka wagowa; E) iniektor dożylny i strzykawka ze specjalnie wykonanym smoczkiem do karmienia; F) waga elektroniczna; G) opiekun wyposażony w środki ochrony indywidualnej. Kliknij tutaj, aby zobaczyć większą wersję tego rysunku.

3. Procedura ręcznego chowu

  1. Wyczyść i wysterylizuj pokój przed terminem.
    1. Spryskaj podłógę i stół kwasem podchlorawym lub 75% alkoholem etylowym, pozostaw na 30 sekund, a następnie wytrzyj stół i umyj podłogę.
  2. Ustaw temperaturę inkubatora na 35 °C, a wilgotność na 40%. Zazwyczaj, aby zasymulować podstawowe wymagania temperaturowe marmozet niemowląt, jak pokazano w tabeli 1, przed 14. dniem po urodzeniu (P14) należy utrzymywać temperaturę inkubatora na poziomie 35 °C, a od P15 obniżać temperaturę o 0,5 °C co 3 dni. Utrzymuj wilgotność na poziomie 40%-45% wewnątrz inkubatora, która jest zbliżona do wilgotności kolonii i utrzymuje sierść niemowląt w suchości.
  3. Ułóż jednorazową podkładkę na pieluchy, aby przykryć obudowę inkubatora.
  4. Aby zminimalizować stres niemowląt, umieść kilka i pluszowych zabawek w inkubatorze przed wprowadzeniem małych marmozet, które mają tendencję do naśladowania dorosłych marmozet.
    UWAGA: Kocyki i pluszowe zabawki umieszcza się w domowej klatce par hodowlanych na 1 dzień przed użyciem.
  5. Umieść małe marmozety w inkubatorze i umieść je na pluszowych zabawkach, gdy zostaną oddzielone od rodziców w domowej klatce.
    UWAGA: Aby uniknąć izolacji społecznej i w zgodzie z dobrostanem zwierząt, zazwyczaj dwoje niemowląt jest wybieranych razem do ręcznego wychowywania.
    1. Przed karmieniem należy nosić wysterylizowane środki ochrony osobistej (PPE, Rysunek 1G).
    2. Ogrzej kilka do 35 °C.
    3. Delikatnie trzymaj niemowlę marmozetę ciepłymi kocami i uzyskaj wagę zwierzęcia jako wagę urodzeniową.
    4. Przenieś marmozetę niemowlęcia do inkubatora z ciepłymi kocami.
    5. Wykonaj zapisy, jak wspomniano w kroku 2.4.
  6. Zmiksuj składniki żywności i nakarm niemowlę marmozetę.
    1. Rozpuścić 5 g mleka modyfikowanego dla niemowląt w 30 ml przegotowanej wody o temperaturze 50 °C w sterylnej probówce wirówkowej o pojemności 50 ml.
      UWAGA: Niemowlęta marmozety w różnym wieku poporodowym potrzebują różnych przepisów żywieniowych. Tabela 2 zawiera różne dawki mleka modyfikowanego dla niemowląt, pasty ryżowej i wody w wieku postnatalnym od P1 do P60. Dawka wystarcza zwykle na 1 dzień. Zmiksuj składniki przed pierwszym posiłkiem, a resztę potraw przechowuj w lodówce o temperaturze 4 °C. Podgrzej jedzenie do 30-35 °C dla każdego posiłku.
    2. Weź 1 ml jedzenia za pomocą strzykawki o pojemności 1 ml i przykryj strzykawkę specjalnie przygotowanym smoczkiem do karmienia.
      UWAGA: Wybrać strzykawkę o odpowiednim rozmiarze, odnosząc się do Tabeli 2.
    3. Utrzymuj temperaturę żywności na poziomie 30-35 °C za pomocą poduszki grzewczej.
    4. Ogrzej ręce przed karmieniem i delikatnie trzymaj marmozetę z ciepłym kocem w jednej ręce w inkubatorze.
    5. Włóż smoczek do karmienia do ust małego marmozety, podczas gdy główka małego marmozety jest delikatnie trzymana kciukiem i palcem wskazującym ręki trzymającej opiekuna i powoli wypychaj pokarm ze strzykawki ze stałą prędkością.
      UWAGA: Nigdy nie popychaj jedzenia szybciej niż połyka marmozeta niemowlę. Szybkie parcie może spowodować zadławienie, a jedzenie wydostaje się z nosa przez gardło. Może to powodować choroby, takie jak zapalenie płuc, które może nawet prowadzić do śmierci. Jeśli pokarm się przeleje, mała marmozeta będzie walczyć. W takim przypadku przerwij karmienie i ostrożnie zetrzyj jedzenie z pyska zwierzęcia. Kontynuuj karmienie, gdy marmozeta zacznie zachowywać się normalnie.
  7. Po spożyciu przez marmozetę niemowlęcia odpowiedniej ilości pokarmu przetrzyj jego odbyt wacikiem z ciepłą wodą, która zarówno oczyszcza odbyt, jak i sprzyja wypróżnianiu.
  8. Obserwuj zwierzę przez kilka minut i sprawdź poruszanie się i wypróżnianie zwierzęcia.
  9. Zapisz czas karmienia, ilość (ml) pobranego pokarmu, stan wypróżnienia (tak/nie, twardy/luźny) oraz temperaturę i wilgotność inkubatora.
    UWAGA: Podczas ważenia owiń marmozety niemowlęcia ciepłymi kocami, aby uniknąć wychłodzenia lub zranienia niemowlęcia.
  10. Utrzymuj ramę inkubatora w czystości, zbierając stały kał lub zmieniając go na nową jednorazową wkładkę do pieluch
    11. .
  11. Przed P50 nakarm marmozetę niemowlęcia zgodnie z krokami 3.3-3.7 i zastosuj dawkę składników żywności oraz czas i częstotliwość karmienia podane w Tabeli 2.
  12. Od P50 niemowlę marmozeta jest zwykle gotowe do dobrowolnego jedzenia.
    1. Zamiast strzykawek używaj plastikowych naczyń wagowych. Przygotuj jedzenie, mieszając składniki żywności bezpośrednio w naczyniu; Kwoty te znajdują się w tabeli 2.
    2. Umieść naczynie na żywność w inkubatorze i zamocuj dno na wypadek jego odwrócenia. Obserwuj przez kilka minut, aby upewnić się, że młode marmozety zjedzą pokarm. Przez pierwsze kilka razy poprowadź zwierzę do dobrowolnego jedzenia, zwabiając zwierzę do naczynia z jedzeniem i prowadząc jego pysk, aby kilkakrotnie dotknęło jedzenia.
      UWAGA: Nigdy nie pozwól, aby nos zwierzęcia dotykał jedzenia. Zwykle zwierzę uczy się dobrowolnie jeść w ciągu 1 dnia.

4. Aklimatyzacja przed powrotem młodych marmozet do kolonii

UWAGA: Zazwyczaj ręczne wychowywanie kończy się, gdy młode marmozety uczą się jeść samodzielnie. Istnieje kilka procedur adaptacyjnych, które należy przeprowadzić, zanim zostaną zwrócone do klatki domowej w kolonii marmozet.

  1. Przenieś marmozety niemowląt z inkubatora dla zwierząt do małych klatek (45 cm x 45 cm x 40 cm), które są podobne do klatki dla ptaków. Zawieś butelkę z wodą (50 ml) na każdej małej klatce.
  2. Przenieś małe klatki z młodymi marmozetami do kolonii i umieść je blisko klatki rodzinnej.
  3. Karm marmozety niemowlę osobno plastikowym naczyniem wagowym przez 1 tydzień, mieszając pokarm zgodnie z codziennymi przepisami przygotowanymi dla całej kolonii.
  4. Zapisuj masę ciała i stan wypróżniania się raz dziennie.

5. Młode marmozety wracają do klatki rodzinnej

UWAGA: Po 7-10 dniach życia w małej klatce, młode marmozety zazwyczaj dobrze przystosowują się do środowiska kolonii i nie wykazują już więcej niepokoju.

  1. Rano włóż młode marmozety z powrotem do klatki rodzinnej.
  2. Obserwuj zwierzęta przez co najmniej 15 minut, aby upewnić się, że nie ma gryzienia, walki ani pogoni między członkami rodziny a nowymi uczestnikami.
    UWAGA: Jeśli dojdzie do gryzienia, walki lub pogoni, jak najszybciej oddziel niemowlę od innych; i spróbuj zwrócić niemowlę rodzinie jeszcze raz w innym dniu. Jeśli awaria wystąpi ponownie, wybierz inną rodzinę, która ją zaopiekuje. Grupy rodzinne, które mają bogate doświadczenie rodzicielskie, są pierwszym wyborem do rodziny zastępczej. Umieść pluszową zabawkę w nowej klatce, aby towarzyszyła małej małpce, jeśli żadna rodzina jej nie zaakceptuje.
  3. Przestań karmić młode marmozety osobno i zacznij karmić je dietą dla kolonii.
  4. Zwróć szczególną uwagę na aktywność młodych marmozet przez 1 tydzień po powrocie do klatki rodzinnej.
  5. Mierz masę ciała niemowląt marmozet co 2 dni i zapisz. Jeśli stracą na wadze, podawaj im dodatkowe składniki odżywcze za pomocą strzykawki umieszczonej w klatce rodzinnej.
  6. Zapewnij codzienną opiekę nad młodymi marmozetami, tak jak w przypadku marmozet w kolonii.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Masa ciała jest kluczowym wskaźnikiem rozwoju ciała zwierzęcia i jest używana jako wskaźnik stanu zdrowia marmozet w tym protokole. W tej pracy masa ciała zwierząt hodowanych ręcznie wzrastała stopniowo wraz z wiekiem (Ryc. 2A, n = 16), podobnie jak waga noworodków w poprzednim badaniu46. Aby zminimalizować zakłócenia dla rodzin rozrodczych w kolonii, nie ważyliśmy codziennie młodych marmozet w kolonii. Uzyskaliśmy wagę zwierząt hodowanych przez rodziców 1 miesiąc po urodzeniu i późn...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Marmozeta pospolita jest bardzo przydatnym modelem NHP w badaniach biomedycznych i neurobiologicznych. Jednak zasoby marmozet są zbyt ograniczone, aby sprostać szybko rosnącym potrzebom. W niniejszej pracy opracowaliśmy metodę chowu ręcznego, która nie tylko zwiększa przeżywalność niemowląt marmozet, ale także daje możliwość zbadania ich rozwoju poporodowego. Ta metoda ręcznej hodowli jest praktyczna i łatwa do nauczenia, a zatem można ją łatwo zastosować w innych laboratoriach pracujących z marmozetami pospolitymi.

...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Autorzy chcieliby podziękować Mingxuan Li za jego edycję gramatyki i dopracowanie wczesnej wersji tego rękopisu. Prace te były wspierane przez Chińską Fundację Nauk Przyrodniczych Prowincji Zhejiang (LD22H090003); Chińska Fundacja Nauk Przyrodniczych (32170991 i 32071097), STI2030-Duże projekty 2021ZD0204100 (2021ZD0204101) i 2022ZD0205000 (2022ZD0205003); oraz MOE Frontier Science Center for Brain Science & Brain-Machine Integration, Zhejiang University.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
inkubator dla zwierzątRCOM, KoreaMX - BL600N, 855 mm (szer.) x 470 mm (dł.) x 440 mm (wys.)
mleko w proszku dla niemowlątMeadjohnson, Amerykaodpowiedni dla dzieci w wieku 0-12 miesięcy, standard wykonawczy - GB25596
pasta ryżowadla niemowląt HEINZ, Chinyodpowiedni dla dzieci w wieku 0-6 miesięcy, standard wykonawczy - GB10769
chusteczki dla niemowląt dopielęgnacji niemowląt, Chinymiękkie
zlewkaShuNiu, ChinyKoce 100 ml
Grace, Chiny10 cm i razy; 10 cm, miękki
plac zabawWowWee, Chinymocne i nie ma małych okrągłych struktur
jednorazowe podkładki na pieluchyHi Health Pet, Chinyjednorazowa
sterylna strzykawkaCofoe, Chiny1 ml, 2,5 mL, 3 mL, 5 mL, 10 ml
waga elektronicznaYouSheng, Chinyzakres pomiarowy od 0 do 6,000 g z precyzją 0,2 g
wstrzykiwacz dożylnyHD, Chinyigłowy 0,55 mm x 20 mm
FGA, Chinyczajnik utrzymujący ciepło 1,500 ml
laktulozyBELCOL, Chinydo rozwiązywania zaparć
plastikowe naczynie do ważeniaSKSLAB, Chiny80 mm x 80 mm x 22 mm, używany jako pluszowa zabawka w misce
Lebiyou, Chinymiękki
probiotykw proszku G-Pet, Chinydo regulacji środowiska żołądkowo-jelitowego
sterylna probówka wirówkowaNEST, Chinywacik 50 ml
OYEAH, Chiny80 - 100 mm
wałek zabawkowyWowWee, Chinymocne i bez małych okrągłych struktur
w rozmiarze M lub L Czajnik

Bibliografia

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Miller, C. T., et al. Marmosets: A neuroscientific model of human social behavior. Neuron. 90 (2), 219-233 (2016).
  2. Ross, C. N., Colman, R., Power, M., Tardif, S. Marmoset metabolism, nutrition, and obesity. ILAR Journal. 61 (2-3), 179-187 (2020).
  3. Kishi, N., Sato, K., Sasaki, E., Okano, H. Common marmoset as a new model animal for neuroscience research and genome editing technology. Development, Growth & Differentiation. 56 (1), 53-62 (2014).
  4. Prins, N. W., et al. Common marmoset (Callithrix jacchus) as a primate model for behavioral neuroscience studies. Journal of Neuroscience Methods. 284, 35-46 (2017).
  5. Tokuno, H., Watson, C., Roberts, A., Sasaki, E., Okano, H. Marmoset neuroscience. Neuroscience Research. 93, 1-2 (2015).
  6. Hodges, J. K., Henderson, C., Hearn, J. P. Relationship between ovarian and placental steroid production during early pregnancy in the marmoset monkey (Callithrix jacchus). Journal of Reproduction and Fertility. 69 (2), 613-621 (1983).
  7. Troilo, D., Judge, S. J. Ocular development and visual deprivation myopia in the common marmoset (Callithrix jacchus). Vision Research. 33 (10), 1311-1324 (1993).
  8. Mitchell, J. F., Leopold, D. A. The marmoset monkey as a model for visual neuroscience. Neuroscience Research. 93, 20-46 (2015).
  9. Hung, C. C., et al. Functional MRI of visual responses in the awake, behaving marmoset. NeuroImage. 120, 1-11 (2015).
  10. Gao, L., Kostlan, K., Wang, Y., Wang, X. Distinct subthreshold mechanisms underlying rate-coding principles in primate auditory cortex. Neuron. 91 (4), 905-919 (2016).
  11. Gao, L., Wang, X. Subthreshold activity underlying the diversity and selectivity of the primary auditory cortex studied by intracellular recordings in awake marmosets. Cerebral Cortex. 29 (3), 994-1005 (2019).
  12. Gao, L., Wang, X. Intracellular neuronal recording in awake nonhuman primates. Nature Protocols. 15, 3615-3631 (2020).
  13. Wang, X., et al. Corticofugal modulation of temporal and rate representations in the inferior colliculus of the awake marmoset. Cerebral Cortex. 32 (18), 4080-4097 (2022).
  14. Wang, X., et al. Selective corticofugal modulation on sound processing in auditory thalamus of awake marmosets. Cerebral Cortex. 33 (7), 3372-3386 (2022).
  15. Kajikawa, Y., et al. Coding of FM sweep trains and twitter calls in area CM of marmoset auditory cortex. Hearing Research. 239 (1-2), 107-125 (2008).
  16. Choi, D., Bruderer, A. G., Werker, J. F., et al. Sensorimotor influences on speech perception in pre-babbling infants: Replication and extension of Bruderer et al. Psychonomic Bulletin & Review. 26 (4), 1388-1399 (2019).
  17. Eliades, S. J., Miller, C. T. Marmoset vocal communication: Behavior and neurobiology. Developmental Neurobiology. 77 (3), 286-299 (2017).
  18. Roy, S., Zhao, L., Wang, X. Distinct neural activities in premotor cortex during natural vocal behaviors in a New World primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Journal of Neuroscience. 36 (48), 12168-12179 (2016).
  19. Simões, C. S., et al. Activation of frontal neocortical areas by vocal production in marmosets. Frontiers in Integrative Neuroscience. 4, 123(2010).
  20. Iwanami, A., et al. Transplantation of human neural stem cells for spinal cord injury in primates. Journal of Neuroscience Research. 80 (2), 182-190 (2005).
  21. Schorscher-Petcu, A., Dupré, A., Tribollet, E. Distribution of vasopressin and oxytocin binding sites in the brain and upper spinal cord of the common marmoset. Neuroscience Letters. 461 (3), 217-222 (2009).
  22. Bowes, C., Burish, M., Cerkevich, C., Kaas, J. Patterns of cortical reorganization in the adult marmoset after a cervical spinal cord injury. Journal of Comparative Neurology. 521 (15), 3451-3463 (2013).
  23. Kondo, T., et al. Histological and electrophysiological analysis of the corticospinal pathway to forelimb motoneurons in common marmosets. Neuroscience Research. 98, 35-44 (2015).
  24. Nash, J. E., et al. Antiparkinsonian actions of ifenprodil in the MPTP-lesioned marmoset model of Parkinson's disease. Experimental Neurology. 165 (1), 136-142 (2000).
  25. van Vliet, S. A., et al. Neuroprotective effects of modafinil in a marmoset Parkinson model: Behavioral and neurochemical aspects. Behavioural Pharmacology. 17 (5-6), 453-462 (2006).
  26. van Vliet, S. A., Vanwersch, R. A., Jongsma, M. J., Olivier, B., Philippens, I. H. Therapeutic effects of Delta9-THC and modafinil in a marmoset Parkinson model. European Neuropsychopharmacology. 18 (5), 383-389 (2008).
  27. Philippens, I. H., t Hart, B. A., Torres, G. The MPTP marmoset model of parkinsonism: a multi-purpose non-human primate model for neurodegenerative diseases. Drug Discovery Today. 15 (23-24), 985-990 (2010).
  28. Santana, M. B., et al. Spinal cord stimulation alleviates motor deficits in a primate model of Parkinson disease. Neuron. 84 (4), 716-722 (2014).
  29. Tardif, S. D., Mansfield, K. G., Ratnam, R., Ross, C. N., Ziegler, T. E. The marmoset as a model of aging and age-related diseases. ILAR Journal. 52 (1), 54-65 (2011).
  30. Sasaki, E., et al. Generation of transgenic non-human primates with germline transmission. Nature. 459, 523-527 (2009).
  31. Sasaki, E. Prospects for genetically modified non-human primate models, including the common marmoset. Neuroscience Research. 93, 110-115 (2015).
  32. Park, J. E., Sasaki, E. Assisted reproductive techniques and genetic manipulation in the common marmoset. ILAR Journal. 61 (2-3), 286-303 (2020).
  33. Smith, D., Trennery, P., Farningham, D., Klapwijk, J. The selection of marmoset monkeys (Callithrix jacchus) in pharmaceutical toxicology. Laboratory Animals. 35 (2), 117-130 (2001).
  34. Smith, T. E., Tomlinson, A. J., Mlotkiewicz, J. A., Abbott, D. H. Female marmoset monkeys (Callithrix jacchus) can be identified from the chemical composition of their scent marks. Chemical Senses. 26 (5), 449-458 (2001).
  35. Jagessar, S. A., et al. Induction of progressive demyelinating autoimmune encephalomyelitis in common marmoset monkeys using MOG34-56 peptide in incomplete freund adjuvant. Journal of Neuropathology and Experimental Neurology. 69 (4), 372-385 (2010).
  36. Kap, Y. S., Laman, J. D., 't Hart, B. A. Experimental autoimmune encephalomyelitis in the common marmoset, a bridge between rodent EAE and multiple sclerosis for immunotherapy development. Journal of Neuroimmune Pharmacology. 5 (2), 220-230 (2010).
  37. Carrion, R., Patterson, J. L. An animal model that reflects human disease: The common marmoset (Callithrix jacchus). Current Opinion in Virology. 2 (3), 357-362 (2012).
  38. Jagessar, S. A., et al. Overview of models, methods, and reagents developed for translational autoimmunity research in the common marmoset (Callithrix jacchus). Experimental Animals. 62 (3), 159-171 (2013).
  39. Feng, Z., et al. Biologically excretable aggregation-induced emission dots for visualizing through the marmosets intravitally: Horizons in future clinical nanomedicine. Advanced Materials. 33 (17), 2008123(2021).
  40. Goodroe, A., et al. Current practices in nutrition management and disease incidence of common marmosets (Callithrix jacchus). Journal of Medical Primatology. 50 (3), 164-175 (2021).
  41. Power, M. L., Koutsos, L. Chapter 4 - Marmoset nutrition and dietary husbandry. The Common Marmoset in Captivity and Biomedical Research. Marini, R., Wachtman, L., Tardif, S., Mansfield, K., Fox, J. , Academic Press. Cambridge, MA. 63-76 (2019).
  42. Gore, M. A., et al. Callitrichid nutrition and food sensitivity. Journal of Medical Primatology. 30 (3), 179-184 (2001).
  43. Hearn, J. P., Burden, F. J. Collaborative' rearing of marmoset triplets. Laboratory Animals. 13 (2), 131-133 (1979).
  44. Cao, X., et al. Effect of a high estrogen level in early pregnancy on the development and behavior of marmoset offspring. ACS Omega. 7 (41), 36175-36183 (2022).
  45. Watakabe, A., et al. Application of viral vectors to the study of neural connectivities and neural circuits in the marmoset brain. Developmental Neurobiology. 77 (3), 354-372 (2017).
  46. Takahashi, D. Y., et al. The developmental dynamics of marmoset monkey vocal production. Science. 349 (6249), 734-738 (2015).
  47. Malukiewicz, J., et al. The gut microbiome of exudivorous marmosets in the wild and captivity. Scientific Reports. 12 (1), 5049(2022).
  48. Shigeno, Y., et al. Comparison of gut microbiota composition between laboratory-bred marmosets (Callithrix jacchus) with chronic diarrhea and healthy animals using terminal restriction fragment length polymorphism analysis. Microbiology and Immunology. 62 (11), 702-710 (2018).
  49. Baxter, V. K., et al. Serum albumin and body weight as biomarkers for the antemortem identification of bone and gastrointestinal disease in the common marmoset. PLoS One. 8 (12), e82747(2013).
  50. Tardif, S. D., et al. Characterization of obese phenotypes in a small nonhuman primate, the common marmoset (Callithrix jacchus). Obesity. 17 (8), 1499-1505 (2009).
  51. Wachtman, L. M., et al. Differential contribution of dietary fat and monosaccharide to metabolic syndrome in the common marmoset (Callithrix jacchus). Obesity. 19 (6), 1145-1156 (2011).
  52. Power, M. L., Ross, C. N., Schulkin, J., Ziegler, T. E., Tardif, S. D. Metabolic consequences of the early onset of obesity in common marmoset monkeys. Obesity. 21 (12), E592-E598 (2013).
  53. Shimizu, K., et al. Peer-social response in 4 juvenile marmosets represented the emotional development traits depending on family structure. Neuroscience Research. 65, S244(2009).
  54. Schultz-Darken, N., Braun, K. M., Emborg, M. E. Neurobehavioral development of common marmoset monkeys. Developmental Psychobiology. 58 (2), 141-158 (2016).
  55. Gultekin, Y. B., Hage, S. R. Limiting parental feedback disrupts vocal development in marmoset monkeys. Nature Communications. 8, 14046(2017).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Marmoset ColonySurvival RateFeeding ProtocolIncubator SetupFormula PreparationBody Weight MonitoringPostnatal EnvironmentPrimate Model

Powiązane artykuły