Artykuł metodologiczny

Akwizycja i półautomatyczna analiza elektromiografii powierzchni mięśni oddechowych

1.7K wyświetleń

DOI:

10.3791/67157

24 stycznia 2025

W tym artykule

Podsumowanie

Tutaj opisujemy protokół do rejestrowania i analizowania sygnałów elektromiografii oddechowej (EMG). Zawiera anatomiczne odniesienia do umieszczania elektrod EMG na kilku mięśniach oddechowych, usuwania szumu elektrokardiograficznego z sygnałów EMG oraz uzyskiwania średniej kwadratowej EMG (RMS) i czasu rozpoczęcia aktywności.

Streszczenie

Ocena napędu oddechowego stanowi wyzwanie ze względu na natrętność i niepraktyczność obecnych metod, takich jak funkcjonalne obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego (fMRI). Elektromiografia (EMG) oferuje zastępczą miarę napędu oddechowego mięśni, umożliwiając określenie zarówno wielkości, jak i czasu aktywacji mięśni. Wielkość odzwierciedla poziom aktywacji mięśni, podczas gdy czas wskazuje początek i przesunięcie aktywności mięśni w stosunku do określonych zdarzeń, takich jak przepływ wdechowy i aktywacja innych mięśni. Wskaźniki te mają kluczowe znaczenie dla zrozumienia koordynacji i kontroli oddechowej, zwłaszcza przy zmiennych obciążeniach lub w obecności patofizjologii układu oddechowego. Badanie to przedstawia protokół pozyskiwania i analizowania sygnałów EMG mięśni oddechowych u zdrowych osób dorosłych i pacjentów z chorobami układu oddechowego. Uzyskano zgodę etyczną na badania, które obejmowały przygotowanie uczestników, umieszczenie elektrod, akwizycję sygnału, przetwarzanie wstępne i przetwarzanie końcowe. Kluczowe kroki obejmują oczyszczenie skóry, zlokalizowanie mięśni za pomocą badania palpacyjnego i ultradźwięków oraz zastosowanie elektrod w celu zminimalizowania zanieczyszczenia elektrokardiografii (EKG). Dane są pozyskiwane z dużą częstotliwością próbkowania i wzmocnieniem, z zsynchronizowanymi zapisami EKG i przepływu oddechowego. Przetwarzanie wstępne obejmuje filtrowanie i przekształcanie sygnału EMG, podczas gdy przetwarzanie końcowe polega na obliczaniu różnic początku i przesunięcia w stosunku do przepływu wdechowego. Reprezentatywne dane od zdrowego uczestnika płci męskiej wykonującego przyrostowe obciążenie progu wdechowego (ITL) ilustrują zastosowanie protokołu. Wyniki wykazały wcześniejszą aktywację i wydłużony czas trwania mięśni pozaprzeponowych pod wpływem większych obciążeń, co korelowało ze zwiększoną wielkością EMG. Protokół ten ułatwia szczegółową ocenę aktywacji mięśni oddechowych, dostarczając wglądu zarówno w normalne, jak i patofizjologiczne strategie kontroli motorycznej.

Wprowadzenie

Napęd oddechowy (tj. wyjście ośrodków oddechowych do mięśni oddechowych) jest trudny do oceny ze względu na natrętny, często niepraktyczny charakter metod oceny, takich jak funkcjonalny rezonans magnetyczny (fMRI). Co więcej, niewielki rozmiar ośrodków oddechowych znajdujących się w pniu mózgu jest trudny do zlokalizowania i jest wrażliwy na zmiany spowodowane hałasem fizjologicznym1,2. Pomiary napędu oddechowego są ważne ze względu na ich związek z ważnymi wynikami klinicznymi, takimi jak duszność, wskazująca na niewydolność oddechową. Elektromiografia (EMG) jest substytutem napędu oddechowego mięśni oddechowych3. EMG mięśni oddechowych pozwala na określenie aktywności mięśni i jej intensywności za pomocą średniej kwadratowej (RMS) sygnału EMG. Dodatkowo czas aktywacji mięśni można ocenić, identyfikując początek i przesunięcie ich aktywności (odpowiednio EMG, początek i EMG, przesunięcie)1,2,3,4,5,6,7,8,9,10,11.

Wielkość sygnału EMG odnosi się do potencjału elektrycznego generowanego przez komórki mięśniowe podczas ich skurczu, wskazując na ich poziom aktywacji mięśni12. Wielkość sygnału EMG może się różnić w zależności od takich czynników, jak intensywność skurczu mięśni, liczba rekrutowanych jednostek motorycznych, rozmieszczenie elektrod, ruch mięśni i tkanek podskórnych oraz specyficzne cechy mierzonego mięśnia12.

Czas sygnału EMG odnosi się do momentu, w którym aktywność elektryczna występuje w odniesieniu do określonego zdarzenia lub działania (np. w odniesieniu do przepływu wdechowego podczas oddychania)13. Czas rozpoczęcia wskazuje, kiedy rozpoczyna się aktywacja mięśni, podczas gdy czas przesunięcia wskazuje, kiedy aktywność mięśni spada, usta lub znajduje się w fazie relaksu13. Czas między aktywacją kilku mięśni oddechowych ułatwi zrozumienie mechanizmów koordynacji i kontroli podczas oddychania. Ocena spójności lub zmienności wzorców czasowych w czasie lub u poszczególnych osób może pomóc w identyfikacji fizjologicznych i patofizjologicznych strategii kontroli motorycznej związanych z ostrą lub przewlekłą niewydolnością wentylacji.

Zarówno wielkość, jak i czas EMG mięśni oddechowych zostały powiązane z ważnymi wynikami klinicznymi12,13,14. Membrana generuje większość wentylacji w spoczynku15. Gdy zapotrzebowanie na oddech wzrasta, na przykład podczas ćwiczeń lub zwiększonego obciążenia wdechowego związanego z chorobami płuc (np. przewlekłą obturacyjną chorobą płuc, śródmiąższową chorobą płuc lub zespołem ostrej niewydolności oddechowej), pozaprzeponowe mięśnie oddechowe poprawiają wentylację, co może zwiększyć lub zrównoważyć wymagania dotyczące kurczliwości przepony15. Tak więc, oprócz rosnącej wielkości EMG przepony, wzrośnie również wielkość EMG mięśni pozaprzeponowych.

Aktywacja pozaprzeponowych mięśni oddechowych może chronić przeponę przed zmęczeniem16. Jednak wczesna aktywacja (początek) i przedłużona aktywacja są związane z ostrą i przewlekłą niewydolnością wentylacji14,17,18. Celem jest opisanie protokołu do pozyskiwania i analizowania zarówno czasu, jak i wielkości sygnałów EMG mięśni oddechowych zarówno u zdrowych osób dorosłych, jak i pacjentów z podejrzeniem lub potwierdzoną patofizjologią układu oddechowego. Protokół ten obejmuje wcześniej zweryfikowane etapy od akwizycji danych do ilościowego określenia czasu i wielkości aktywności EMG13,19.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Badania wykorzystujące tę technikę otrzymały etyczne zatwierdzenie od Uniwersytetu w Toronto i Szpitala św. Michała w Toronto, Kanada, oraz Szpitala Uniwersyteckiego Gasthuisberg, Leuven, Belgia. W tym miejscu opisano jeden konkretny protokół. Ogólna dyskusja na temat kilku alternatywnych podejść EMG powierzchniowych (sEMG) została zaproponowana dla mięśni oddechowych i jest opisana w innym miejscu12.

1. Przygotowanie uczestników i rozmieszczenie elektrod sEMG

  1. Aby zapewnić odpowiednią wizualizację, poproś mężczyzn, aby nie nosili koszulki, a kobiety aby nosiły sportowy stanik lub podkoszulek. Używaj fartucha szpitalnego z otworem z przodu, aby zapewnić odpowiedni dostęp i zachować skromność.
  2. Jeśli uczestnik ma długie włosy, zwiąż je z tyłu i przypinaj w miejscu, aby można było ocenić pochyłość i mostkowo-obojczykowo-sutkowe.
  3. Ustaw uczestnika w pozycji siedzącej lub półleżącej.
  4. Jeśli zostanie stwierdzony nadmiar włosów na klatce piersiowej lub szyi, ogol obszar do umieszczenia elektrod do sEMG.
  5. Aby zmniejszyć impedancję skóry, oczyść skórę z sebum i martwego naskórka.
    1. Zrób to, pocierając chusteczką nasączoną alkoholem i pozwalając alkoholowi odparować (tj. wyschnąć na powietrzu) przed przyłożeniem elektrody.
    2. Jeśli skóra jest jaśniejsza, może wydawać się lekko zaczerwieniona, ale co ważniejsze, upewnij się, że w miejscu, w którym zostaną umieszczone elektrody, nie ma widocznych zabrudzeń, tłuszczu ani suchej skóry. Unikaj jednak nadmiernego pocierania, aby zapobiec uszkodzeniom skóry. Unikaj stosowania elektrod na obszarach uszkodzonej skóry lub innych zmian skórnych.
  6. Zlokalizuj interesujące Cię mięśnie za pomocą punktów orientacyjnych, badania palpacyjnego i/lub ultrasonografii.
    UWAGA: Ultradźwięki mogą być przydatne do oznaczania punktów orientacyjnych przepony żebrowej20. Rysunek 1 pokazuje przykłady miejsc, w których można umieścić elektrody do sEMG mięśni oddechowych.
  7. Umieść elektrody sEMG po prawej stronie klatki piersiowej, dalej od serca, aby zmniejszyć amplitudę sygnału EKG i zminimalizować jego zanieczyszczenie.
  8. Zastosuj sparowane elektrody EMG z odstępem 2 cm między elektrodami w środku brzucha mięśniowego wzdłuż podłużnego ułożenia włókien mięśniowych.
    1. W przypadku przepony żebrowej/międzyżebrowej oznacz przednią linię pachową i linię środkową obojczyka i umieść sparowane elektrody pionowo między tymi dwiema liniami na poziomie siódmej lub ósmej przestrzeni międzyżebrowej.
    2. W przypadku scaleny zaznacz tylny trójkąt szyi i umieść sparowane elektrody wzdłuż osi podłużnej mięśnia na poziomie wyrostka sercowego.
    3. W przypadku międzyżeber przymostkowych zaznacz drugą przestrzeń międzyżebrową 1-2 cm w bok po prawej stronie mostka i umieść sparowane elektrody wzdłuż osi podłużnej mięśnia.
    4. W przypadku mostka obojczykowo-obojczykowo-sutkowego zwróć uwagę na wcięcie nadmostkowe i wyrostek sutkowaty. Zaakcentuj brzuch prawego mięśnia mostkowo-obojczykowo-sutkowego, kładąc rękę operatora po lewej stronie podbródka uczestnika i prosząc uczestnika o delikatne wykonanie izometrycznego obrotu w lewo względem dłoni. Umieść sparowane elektrody w środku brzucha mięśniowego wzdłuż jego osi podłużnej.
  9. Niektóre systemy EMG mogą wymagać czujnika gruntu. W razie potrzeby umieść czujnik naziemny na strukturze kostnej w pobliżu mięśni oddechowych (np. obojczyk, wyrostek kolczysty szyjny C7).
  10. Przymocuj klipsy czujnika EMG do elektrod EMG. Upewnij się, że przewody z czujników EMG z dwóch różnych mięśni (nawet jeśli są bezprzewodowe) nie zachodzą na siebie i nie zanieczyszczają ani nie zapewniają przesłuchów między dwoma mięśniami.
    UWAGA: Przewody z tego samego czujnika mogą się na siebie nakładać, ale przewody z dwóch różnych czujników nie powinny.
  11. Zastosuj dalsze mocowanie elektrod i czujników EMG za pomocą dwustronnych taśm, które mocują spód czujnika do skóry.
  12. Nałóż hipoalergiczną taśmę klasy medycznej na górną część czujników, aby dodatkowo przymocować każdy czujnik do skóry. Unikaj wywierania nadmiernego nacisku i, jak wspomniano powyżej, upewnij się, że przewody z różnych czujników nie zachodzą na siebie.

2. Akwizycja sygnału

  1. Wybierz wstępnie ustawiony szablon w oprogramowaniu do akwizycji danych i naciśnij Otwórz. Szablon będzie miał następujące wstępnie ustawione parametry: Filtr górnoprzepustowy (0,5-20 Hz) w sygnale EMG w celu redukcji artefaktów o niskiej częstotliwości, aby ułatwić wizualizację w czasie rzeczywistym.
  2. Ustaw częstotliwość próbkowania sygnału EMG na co najmniej 1 kHz.
  3. Ustaw wzmocnienie sygnału EMG na 1000.
  4. Ustaw szablon, aby uzyskać zsynchronizowany zapis EKG i przepływu oddechowego.
  5. Pozyskiwanie danych sEMG i EKG zgodnie z protokołem, np. podczas próby oddychania spontanicznego u pacjenta z wentylacją mechaniczną.
  6. Po zakończeniu działania protokołu przerwij nagrywanie i zapisz plik danych.
    UWAGA: Rysunek 2 pokazuje zrzuty ekranu oprogramowania pokazujące zastosowane filtrowanie.

3. Przetwarzanie wstępne po akwizycji danych

  1. Otwórz oprogramowanie i potwierdź parametry, które mają być użyte do analizy sygnału EMG (dwukierunkowy filtr górnoprzepustowy 5 Hz, filtr adaptacyjny najmniejszej średniej kwadratowej (LMS) do usuwania zanieczyszczeń EKG, transformacja średnia kwadratowa z ruchomym oknem przez 0,02 s) i naciśnij Kontynuuj.
  2. Wybierz plik do analizy i naciśnij OK.
  3. Zdefiniuj przedział czasu, który ma być analizowany (jeśli całkowity czas trwania pliku ma być analizowany, będzie to czas od 0 s do czasu maksymalnego), naciśnij Wybierz zakres i kontynuuj, a następnie naciśnij Kondycjonowanie.
  4. Naciśnij przycisk Analizuj, aby zastosować wstępnie wybrane parametry (patrz krok 3.1). Wizualizacja analizowanego sygnału EMG. Naciśnij przycisk Rescaled on 1, aby wyświetlić sygnał EMG znormalizowany o jego maksymalną wartość w rejestrowanym okresie.
  5. Naciśnij przycisk Kontynuuj obliczanie przy wyłączaniu. Opierając się na funkcji pochodnej sygnału EMG, wykryje czas rozpoczęcia aktywności EMG. Naciśnij przycisk włączania i wyłączania.
  6. Wybierz sygnał EMG z mięśnia, który ma zostać zobrazowany. Wizualizacja może być zmieniana między mięśniami, aby umożliwić wizualną kontrolę wszystkich zarejestrowanych sygnałów EMG. Naciśnij przycisk PRZESTAŃ szukać i przejdź do zapisywania. Naciśnij przycisk Zapisywanie.
  7. Wybierz dane, które mają zostać zapisane. Możliwe jest zredukowanie sygnałów przed zapisem (np. z 1000Hz do 100Hz). Naciśnij przycisk Zapisz przetworzone dane, wybierz folder komputera, w którym ma zostać zapisany plik, i nadaj mu nazwę. Naciśnij ponownie Zapisz, aby potwierdzić.

4. Przetwarzanie końcowe

  1. Otwórz zapisany plik za pomocą oprogramowania zapewniającego możliwość obliczania obliczeń (np. Excel, R, Phyton, Matlab). Określ każdy oddech na podstawie czasu włączenia i wyłączenia sygnału przepływu i oblicz szczytową wartość skuteczną EMG oraz średnią wartość skuteczną EMG dla każdego oddechu.
  2. W przypadku początku EMG oblicz bezwzględną różnicę (w milisekundach) między początkiem EMG a początkiem przepływu wdechowego (INSP, początek):
    figure-protocol-1
  3. Dla przesunięcia EMG oblicz bezwzględną różnicę (w milisekundach) między przesunięciem EMG a końcem przepływu wdechowego (INSP,offset)
    figure-protocol-2
  4. Dla początku EMG w stosunku do czasu trwania wdechu oblicz względną różnicę (w stosunku do czasu trwania Ti) między początkiem EMG a INSP,początku:
    figure-protocol-3
  5. Dla przesunięcia EMG w stosunku do czasu trwania wdechu oblicz względną różnicę (do czasu trwania Ti) między przesunięciem EMG a INSP, przesunięcie:
    figure-protocol-4
    gdzie dP jest różnicą czasu między EMG, początkiem a początkiem przepływu wdechowego (INSP,początek) lub między EMG, przesunięciem i przesunięciem przepływu wdechowego (INSP,przesunięcie).)

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Dane są podane dla uczestnika płci męskiej (22 lata; waga: 100 kg; wzrost: 185 cm; BMI: 29 kg/m2) przy prawidłowej spirometrii i sile mięśni wdechowych (FEV1: 4,89 L/s [97% przewidywanej]; maksymalne ciśnienie wdechowe: 151 cmH2O [136% przewidywanego]). Przeprowadził on przyrostowe obciążenie progu wdechu (ITL) aż do niepowodzenia zadania przy użyciu wcześniej opisanego protokołu21,22,23. Przeglą...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Usuwanie artefaktów czynności serca z sygnału EMG jest skomplikowane ze względu na ich nakładające się spektrum pasma. Większość spektrum częstotliwości EMG mieści się w zakresie od 20 do 250 Hz, podczas gdy widmo częstotliwości EKG wynosi od 0 Hz do 100 Hz. W przypadku niektórych analiz (tj. pomiaru czasu) konieczne jest uzyskanie sygnału EMG bez zanieczyszczenia EKG, aby osiągnąć dokładność i możliwość interpretacji wielkości i czasu EMG. Filtr adaptacyjny najmniejszej średniej kwadratowej (LMS) wykorzystujący częstotl...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy oświadczają, że nie mają do ujawnienia konfliktu interesów.

Podziękowania

AR jest wspierany przez Canadian Institutes of Health Research (CIHR) Fellowship (#187900), a UM był finansowany przez Mitacs (IT178-9 -FR101644).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Regulowany stół AmazonVIVO Elektryczna regulacja wysokości 102 cm x 61 cm Biurko stojąceUmożliwia precyzyjną regulację pozycji tułowia i ustnika
Filtry powietrzaCardinalhttps://cardinalfilters.com/
Analogowy wyjściowy A-Tech Instruments Sp. z o.o.25-pinowe złącze żeńskie D-sub na męskie 16xBNC; 16xRG-174 -16 x 3ftDo podłączenia EMG (Noroxan) do systemu akwizycji danych (PowerLab)
Bioamp doaparaturyML138
Komputer stacjonarny lub laptop Nie dotyczydotyczyZdolność do systemu akwizycji danych, w tym EMG 
Podwójne drążki do sond EMGNoraxonhttps://shop.noraxon.com/products/dual-emg-electrodes
ElektromiografiaNoraxonNoraxon Ultium Myomuscle z 8 inteligentnymi odprowadzeniami. https://www.noraxon.com/our-products/ultium-emg/
Elektrody EMGDuotrodeN/A
Analizator gazówADInstrumentsML206
RękawiceMedlinehttps://www.medline.com/jump/category/x/cat1790003
Metryka lub protokół dezynfekcji zaworów i ustnikówMedlinehttps://www.medline.com/product/MetriCide-28-Disinfectant/Disinfectants/Z05-PF27961?question=metricide
Czujnik pulsoksymetruADInstrumentsML320/Fhttps://www.adinstruments.com/products/oximeter-pods
PneumotachADInstrumentsMLT3813H-Vhttps://www.adinstruments.com/products/heated-pneumotach-800-l-heater-controller
Powerlab i Labchart Data Acquisition SystemADInstruments, Inc.https://m-cdn.adinstruments.com/brochures/Research_PowerLab
_Brochure_V2-1.pdf
Rejestruje ciśnienie w ustach, EKG, koniec oddechu CO2, przepływ (w celu określenia częstości oddechów, objętości oddechowej, minuty wentylacja) i EMG.
Przetwornik ciśnienia z demodulatorem jedno- lub dwukanałowymValidyne.comWww.Validyne.Com/Product/Dp45_Low_Pressure_
Variable_Reluctance_Sensor/
zakres zależy od badanej populacji, tj. pacjentów lub zdrowych (Www.Validyne.Com/Product/Cd280_Multi_Channel_Carrier_
Demodulator/; www.Validyne.Com/Product/Cd15_General_Purpose_Basic
_Carrier_Demodulator/)
Silikonowe ustnikiHans Rudolph  https://www.rudolphkc.com/Mały rozmiar kęsa
Model stołowy podbródekSacor Inc.Model 600700https://sacor.ca/products/head-chin-rest-table-model-with-white-chin-rest-cup
Dwudrogowy trójnik bez ponownego oddychania z portem do pobierania próbekHans Rudolph1410 Małe
ultradźwięki   GE Healthcare Układ kardiologiczny Vivid i BT12 z oddychaniem i przetwornikiem liniowym 12L-RSWymaga rozdzielczości do charakterystycznych mięśni oddechowych, w tym obszaru apozycyjnego przepony
EKG Nie

Bibliografia

  1. Vaporidi, K., et al. Respiratory drive in critically ill patients. Pathophysiology and clinical implications. Am J Respir Crit Care Med. 201 (1), 20-32 (2020).
  2. Ciumas, C., Rheims, S., Ryvlin, P. fMRI studies evaluating central respiratory control in humans. Front Neural Circuits. 16, 982963(2022).
  3. Domnik, N. J., Walsted, E. S., Langer, D. Clinical utility of measuring inspiratory neural drive during cardiopulmonary exercise testing (CPET). Front Med (Lausanne). 7, 483(2020).
  4. Hudson, A. L., et al. Activation of human inspiratory muscles in an upside-down posture. Respir Physiol Neurobiol. 226, 152-159 (2016).
  5. Hodges, P. W., Gandevia, S. C. Pitfalls of intramuscular electromyographic recordings from the human costal diaphragm. Clin Neurophysiol. 111 (8), 1420-1424 (2000).
  6. Nguyen, D. aT., et al. Differential activation of the human costal and crural diaphragm during voluntary and involuntary breaths. J Appl Physiol (1985). 128 (5), 1262-1270 (2020).
  7. Hudson, A. L., Gandevia, S. C., Butler, J. E. Common rostrocaudal gradient of output from human intercostal motoneurones during voluntary and automatic breathing. Respir Physiol Neurobiol. 175 (1), 20-28 (2011).
  8. Epiu, I., et al. Inspiratory muscle responses to sudden airway occlusion in chronic obstructive pulmonary disease. J Appl Physiol (1985). 131 (1), 36-44 (2021).
  9. Sinderby, C., et al. An automated and standardized neural index to quantify patient-ventilator interaction. Crit Care. 17 (5), R239(2013).
  10. Neural offset time evaluation in surface respiratory signals during controlled respiration. Estrada, L., Sarlabous, L., Lozano-Garcia, M., Jane, R., Torres, A. Annu Int Conf IEEE Eng Med Biol Soc, 2019, 2344-2347 (2019).
  11. Luo, Y. M., Moxham, J. Measurement of neural respiratory drive in patients with COPD. Respir Physiol Neurobiol. 146 (2-3), 165-174 (2005).
  12. Jonkman, A. H., et al. Analysis and applications of respiratory surface EMG: Report of a round table meeting. Crit Care. 28 (1), 2(2024).
  13. Rodrigues, A., et al. Semi-automated detection of the timing of respiratory muscle activity: Validation and first application. Front Physiol. 12, 794598(2021).
  14. Parthasarathy, S., Jubran, A., Tobin, M. J. Cycling of inspiratory and expiratory muscle groups with the ventilator in airflow limitation. Am J Respir Crit Care Med. 158 (5 Pt 1), 1471-1478 (1998).
  15. De Troyer, A., Boriek, A. M. Mechanics of the respiratory muscles. Compr Physiol. 1 (3), 1273-1300 (2011).
  16. Laghi, F., et al. Diaphragmatic neuromechanical coupling and mechanisms of hypercapnia during inspiratory loading. Respir Physiol Neurobiol. 198, 32-41 (2014).
  17. Parthasarathy, S., Jubran, A., Laghi, F., Tobin, M. J. Sternomastoid, rib cage, and expiratory muscle activity during weaning failure. J Appl Physiol (1985). 103 (1), 140-147 (2007).
  18. Parthasarathy, S., Jubran, A., Tobin, M. J. Assessment of neural inspiratory time in ventilator-supported patients. Am J Respir Crit Care Med. 162 (2 Pt 1), 546-552 (2000).
  19. Dacha, S. R. A., Louvaris, Z., Janssens, L., Janssens, W., Gosselink, R., Langer, D. Effects of inspiratory muscle training (IMT) on dyspnea, respiratory muscle function and respiratory muscle activation in patients with COPD during endurance cycling. Eur Respir J. 54 (Suppl 63), PA2199(2019).
  20. Bellissimo, C. A., Morris, I. S., Wong, J., Goligher, E. C. Measuring diaphragm thickness and function using point-of-care ultrasound. J Vis Exp. 201, e65431(2023).
  21. Basoudan, N., et al. Scalene and sternocleidomastoid activation during normoxic and hypoxic incremental inspiratory loading. Physiol Rep. 8 (14), e14522(2020).
  22. Basoudan, N., Shadgan, B., Guenette, J. A., Road, J., Reid, W. D. Effect of acute hypoxia on inspiratory muscle oxygenation during incremental inspiratory loading in healthy adults. Eur J Appl Physiol. 116 (4), 841-850 (2016).
  23. Melo, L. T., et al. Prefrontal cortex activation during incremental inspiratory loading in healthy participants. Respir Physiol Neurobiol. 296, 103827(2022).
  24. Dacha, S., et al. Comparison between manual and (semi-)automated analyses of esophageal diaphragm electromyography during endurance cycling in patients with COPD. Front Physiol. 10, 885(2019).
  25. Hermens, H. J., Freriks, B., Disselhorst-Klug, C., Rau, G. Development of recommendations for SEMG sensors and sensor placement procedures. J Electromyogr Kinesiol. 10 (5), 361-374 (2000).
  26. Petersen, E., Sauer, J., Graßhoff, J., Rostalski, P. Removing cardiac artifacts from single-channel respiratory electromyograms. IEEE Access. 8, 30905-30917 (2020).
  27. Hutten, G. J., van Thuijl, H. F., van Bellegem, A. C., van Eykern, L. A., van Aalderen, W. M. A literature review of the methodology of EMG recordings of the diaphragm. J Electromyogr Kinesiol. 20 (2), 185-190 (2010).
  28. van Leuteren, R. W., Hutten, G. J., de Waal, C. G., Dixon, P., van Kaam, A. H., de Jongh, F. H. Processing transcutaneous electromyography measurements of respiratory muscles, a review of analysis techniques. J Electromyogr Kinesiol. 48, 176-186 (2019).
  29. Jonkman, A. H., Juffermans, R., Doorduin, J., Heunks, L. M. A., Harlaar, J. Estimated ECG subtraction method for removing ECG artifacts in esophageal recordings of diaphragm EMG. Biomed Signal Process Control. 69, 102861(2021).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

EMG mi ni oddechowychnap d oddechowyczas aktywacji mi niakwizycja sygna u EMGusuwanie artefakt w EKGobci enie progiem inspiracyjnymrozmieszczenie elektrodwarto skuteczna RMSkoordynacja oddechowa

Powiązane artykuły