Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Chirurgiczne wszczepienie bezprzewodowego systemu do monitorowania ciśnienia w żyle wrotnej w przewlekłym modelu owczego Fontana

477 wyświetleń

⸱

DOI:

10.3791/68936

⸱

24 października 2025

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Center for Regenerative Medicine, Abigail Wexner Research Institute at Nationwide Children's Hospital, 2Department of Surgery, The Ohio State University Wexner Medical Center, 3Biomedical Sciences Graduate Program, The Ohio State University College of Medicine, 4Department of Pediatric Cardiology, Nationwide Children's Hospital, 5Department of Pediatric Surgery, Nationwide Children's Hospital

* These authors contributed equally

W tym artykule

Podsumowanie

Protokół ten opisuje metodologię chirurgiczną implantacji bezprzewodowego urządzenia telemetrycznego obejmującego kaniulację żyły wrotnej w celu umieszczenia cewnika wykrywającego ciśnienie, aby umożliwić ciągłe i długotrwałe pobieranie ciśnienia w żyle wrotnej w modelu owczym Fontana.

Streszczenie

Krążenie Fontana charakteryzuje się niepulsacyjnym przepływem krwi w płucach i przewlekłym ogólnoustrojowym przekrwieniem żylnym, co wiąże się z kilkoma późnotrwałymi powikłaniami, w tym chorobą wątroby związaną z Fontanem (FALD). Przewlekłe modele zwierzęce są cennym narzędziem do badania patofizjologii leżącej u podstaw takich procesów chorobowych. Jednak uzyskanie danych hemodynamicznych od swobodnie poruszających się dużych zwierząt wiąże się z kilkoma wyzwaniami. Zastosowanie bezprzewodowych wszczepialnych systemów telemetrycznych może zapewnić nowatorski sposób pozyskiwania pomiarów ciśnienia z krążenia wątrobowego w czasie rzeczywistym. Poniższy protokół opisuje metodologię chirurgiczną implantacji urządzenia do bezprzewodowej telemetrii z kaniulacją żyły wrotnej w modelu owczym Fontana, umożliwiając ciągłe i długoterminowe pobieranie ciśnień w żyle wrotnej oraz ułatwiając przyszłe badania nad zmianami hemodynamicznymi związanymi z przewlekłą chorobą wątroby u pacjentów z chorobą Fontana.

Wprowadzenie

Pojedyncza komora to szerokie pojęcie obejmujące różne wady rozwojowe serca, które skutkują anatomiczną lub funkcjonalną utratą jamy komorowej. Te wady wrodzone stanowią jedne z najbardziej złożonych problemów z sercem, często wymagających wielu operacji w celu złagodzenia objawów. Procedura Fontana jest częstym wyborem do interwencji i zazwyczaj operacją wieńczącą w serii etapowych operacji 1,2,3. Opracowanie tej procedury doprowadziło do znacznego skrócenia oczekiwanej długości życia4. Na przykład 80-90% pacjentów poddawanych paliatywnie metodą Fontana dożywa dorosłości 5,6. W związku z tym obserwuje się wzrost wskaźnika późnego wykorzystania szpitala przez pacjentów z fizjologią pojedynczej komory 7,8.

Pomimo korzyści płynących z zabiegu Fontana dla całkowitego przeżycia, wynikające z tego krążenie, charakteryzujące się niepulsacyjnym przepływem krwi w płucach i przewlekłym ogólnoustrojowym przekrwieniem żylnym, wiąże się ze znaczną zachorowalnością długoterminową 9,10,11,12,13. Choroba wątroby związana z Fontanem (FALD), wynikająca z hepatopatii zastoinowej jest jednym z najczęściej opisywanych zaburzeń ogólnoustrojowych występujących po operacji, dotykającym około jednej trzeciej pacjentów podczas długotrwałej obserwacji 13,14,15,16. Rozwój marskości serca może wymagać ewentualnego przeszczepu wątroby w podgrupie pacjentów17. Wiąże się to również ze zwiększonym ryzykiem raka wątrobowokomórkowego18,19. FALD jest zatem ważnym obszarem badań wśród naukowców dążących do poprawy wyników leczenia pacjentów z chorobą Fontana.

W tym celu modele zwierzęce Fontana są cennym narzędziem do badania późnych zmian fizjologicznych leżących u podstaw takich powikłań20,21. Jednak długoterminowe gromadzenie danych hemodynamicznych stanowi poważne wyzwanie w przypadku swobodnie poruszających się dużych zwierząt. Inwazyjne techniki oparte na cewnikach są ograniczone ze względu na ich przejściowy charakter, a także związane z nimi ryzyko zabiegowe. Co więcej, z naszego doświadczenia wynika, że dostęp do układu żyły wrotnej może być szczególnie trudny do osiągnięcia podczas poruszania się po zrekonstruowanym układzie naczyniowym krążenia Fontana. Alternatywnie, czterowymiarowe obrazowanie metodą rezonansu magnetycznego z kontrastem fazowym (MRI) zostało wykorzystane jako nieinwazyjny sposób oceny hemodynamiki w wątrobie22. Jednak proces ten jest kosztowny i wymaga sedacji, gdy jest stosowany na modelach zwierzęcych. Co więcej, obrazowanie MRI nie jest w stanie dostarczyć informacji na temat ciśnienia wewnątrznaczyniowego. Takie problemy w ocenie pooperacyjnej przewlekłych modeli zwierzęcych Fontana wymagają opracowania nowatorskiego podejścia do gromadzenia danych.

W artykule opisano metodologię udanej implantacji i wykorzystania bezprzewodowego systemu telemetrycznego do monitorowania ciśnienia w żyle wrotnej w modelu owczym Fontana. Technika ta zapewnia opłacalny i łatwo dostępny sposób uzyskiwania długoterminowych danych hemodynamicznych z krążenia żyły wrotnej. Zastosowanie tej technologii w modelach przedklinicznych może być przydatne do badania patofizjologii wątroby Fontana i identyfikowania nowych strategii terapeutycznych mających na celu leczenie lub zapobieganie FALD.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Protokół

Ten eksperymentalny protokół został zatwierdzony przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Użytkowania Zwierząt Nationwide Children's Hospital Abigail Wexner Research Institute (AR20-00121). Wszystkie procedury były zgodne z wytycznymi określonymi w Przewodniku Narodowego Instytutu Zdrowia dotyczącym użytkowania i opieki nad zwierzętami laboratoryjnymi. Badania te były zgodne z wytycznymi Animal Research: Reporting of In Vivo Experiments. Owce rasy Dorset w wieku od 3 do 13 miesięcy i o wadze 24,5-40,5 kg były trzymane w środowisku wolnym od patogenów co najmniej tydzień przed operacją, kiedy to przeszły ocenę weterynaryjną w celu uzyskania zezwolenia chirurgicznego. Sprzęt i odczynniki użyte w badaniu są wymienione w Tabeli Materiałów.

1. Znieczulenie i przygotowanie przedoperacyjne

  1. Przygotuj zwierzęta do operacji zgodnie z wcześniejszym opisem23.
  2. Podawać sedację, wstrzykując kombinację ketaminy (4 mg/kg) i diazepamu (0,5 mg/kg) przez żyłę szyjną wewnętrzną (IJ).
  3. Wprowadzić jednostrumieniową rurkę intubacyjną o średnicy 8-9 mm do tchawicy, aby utrzymać drogi oddechowe, i przesunąć rurkę ustno-żołądkową, aby ułatwić dekompresję żołądka i żwacza.
  4. Ustalić dostęp żylny za pomocą cewnika jednokanałowego 16-18 G umieszczonego w prawej żyle odpiszczelowej lub bocznej żyle odpiszczelowej, aby umożliwić ciągłe dostarczanie płynów, ciągły wlew propofolu (CRI) i podawanie leku w razie potrzeby.
  5. Umieść linię tętniczą 22-24 G w tętnicy usznej, aby umożliwić ciągłe monitorowanie ciśnienia krwi.
  6. Przez cały czas trwania zabiegu należy utrzymywać znieczulenie za pomocą wziewnego izofluranu w stężeniach 1-3% w 100% tlenu i/lub propofolu w dawce 20-45 mg/kg/h.
  7. Profilaktykę antybiotykową należy stosować poprzez podawanie cefazoliny w dawce 25 mg/kg mc. na około 30 minut przed nacięciem chirurgicznym, z powtarzaniem dawkowania co 8 godzin śródoperacyjnie, w razie potrzeby.
  8. Ułóż owcę w lewej bocznej pozycji odleżynowej na stole operacyjnym.
  9. Ogolić owce na szerokim obwodzie od uda do dolnej klatki piersiowej w kierunku głowowo-ogonowym i od kręgosłupa do środkowej części brzucha tuż nad łóżkiem w kierunku grzbietowo-brzusznym (ryc. 1A).
  10. Przygotuj urządzenie telemetryczne zgodnie z wcześniejszym opisem23. Wyzeruj urządzenie do ciśnienia atmosferycznego na płaskiej powierzchni, gdy znajduje się w oryginalnym opakowaniu przed implantacją.

2. Odsłonięcie żyły wrotnej

  1. Wykonaj około 20 cm nacięcie podżebrowe 3 cm ogonowo do prawej dolnej klatki piersiowej.
  2. Użyj elektrokoagulacji, aby podzielić mięśnie skośne zewnętrzne, skośne wewnętrzne i poprzeczne brzucha.
  3. Podnieś i ostro naciąć otrzewną nożyczkami, aby wejść do jamy brzusznej, uważając, aby nie spowodować enterotomii.
  4. Cofnij głowo wątroby i żwacz, żołądek, jelito cienkie i okrężnicę w kierunku przyśrodkowym i ogonowym, aby odsłonić triadę wrotną w więzadle wątrobowo-żuplowym.
  5. Często można zidentyfikować węzeł chłonny znajdujący się na żyle wrotnej. Podwiązać naczynia limfatyczne powyżej i poniżej tego węzła i wyciąć węzeł (ryc. 1B).
  6. Używając kombinacji i ostrego rozwarstwienia, kontynuuj sekcję wokół żyły wrotnej w kierunku głowa wątroby i trzustki doogonowo, aby stworzyć miejsce na umieszczenie bocznego zacisku naczyniowego.

3. Stworzenie kieszeni na urządzenie

  1. Stwórz kieszeń podskórną do umieszczenia korpusu urządzenia telemetrycznego, wykonując osobne 6 cm poprzeczne nacięcie przez skórę po prawej stronie dolnej części brzucha, około 15-20 cm ogonowo i równolegle do nacięcia podżebrowego.
  2. Ostrożnie oddziel podskórną tkankę tłuszczową i tkankę łączną, aby utworzyć kieszeń o długości 6 × 4 cm nad zewnętrznym mięśniem skośnym, stosując zarówno elektrokoagulację, jak i rozwarstwienie.
  3. Włóż urządzenie telemetryczne do kieszeni podskórnej i zabezpiecz je na miejscu za pomocą jedwabnego szwu 2-0.
  4. Uformuj podskórny tunel rozciągający się od kieszeni urządzenia do nacięcia podżebrowego i przeprowadź cewnik ciśnieniowy odpowiadający kanałowi ciśnienia krwi (BP) przez tę ścieżkę.
  5. Umieść nieużywane odprowadzenia EKG i cewnik ciśnieniowy implantu telemetrycznego w kieszonce podskórnej wzdłuż korpusu urządzenia (ryc. 1C).

4. Kaniulacja żyły wrotnej

  1. Wracając do głównego pola operacyjnego, na powierzchni żyły wrotnej w miejscu kaniulacji należy założyć ścieg torebkowo-sznurkowy za pomocą szwu polipropylenowego 6-0 i zabezpieczyć szew plastikową opaską uciskową.
  2. Napełnij żelową końcówkę cewnika ciśnieniowego nieściśliwym żelem o wysokiej lepkości, aby zapobiec krzepnięciu wewnątrz końcówki, upewniając się, że nie ma pęcherzyków powietrza.
  3. Podać dożylnie dawkę heparyny (100 jednostek/kg) 3 minuty przed zaciśnięciem naczyń i kaniulacją.
  4. Nałożyć boczny zacisk naczyniowy wzdłuż osi podłużnej żyły wrotnej otaczającej szew sznurkowy torebki.
  5. Za pomocą ostrza skalpela #11 wykonaj precyzyjne nacięcie w naczyniu w środku ściegu sznurka torebkowego, a następnie delikatnie powiększ otwór końcówką zakrzywionego hemostatu.
  6. Włóż cewnik wykrywający ciśnienie do żyły wrotnej, a następnie zaciśnij opaskę uciskową i zdejmij boczny zacisk.
  7. Przesunąć cewnik o około 3 cm w kierunku wątroby, a następnie zacisnąć i zawiązać szew ze sznurka do torebki.
  8. W osobnym miejscu wzdłuż żyły wrotnej umieść kolejny ścieg sznurkowy z torebki za pomocą polipropylenu 6-0.
  9. Włóż igłę angiocewnika 18 G do środka tego szwu torebkowego i podłącz do przetwornika linii tętniczej, aby uzyskać bezpośrednie ciśnienie w żyle wrotnej.
  10. Ponownie skalibruj urządzenie telemetryczne, wprowadzając różnicę w ciśnieniu w żyle wrotnej uzyskanym z igły angiocewnika i cewnika urządzenia jako wartość przesunięcia w oprogramowaniu telemetrycznym.
  11. Wyjmij igłę i zawiąż szew ze sznurka do torebki.
  12. Nałóż kilka kropel kleju do skóry w miejsce wprowadzenia cewnika urządzenia, aby upewnić się, że pozostaje on stabilny w żyle wrotnej.

5. Zamknięcie i zakończenie procedury

  1. Ponownie przybliżyć mięsień ściany brzucha i powięź za pomocą wchłanialnego szwu 0-0 z cewnikiem wykrywającym ciśnienie wychodzącym z jamy brzusznej przez nacięcie.
  2. Podawać domięśniowe wstrzyknięcia zawiesiny liposomów bupiwakainy (5,3 mg/kg) w celu kontroli bólu pooperacyjnego.
  3. Zamknij skórę w obu nacięciach głębokimi szwami skórnymi i podskórnymi, używając odpowiednio szwów wchłanialnych 3-0 i 4-0.
  4. Odzwyczaj zwierzęcia od sedacji i powrót do zdrowia w sposób opisany wcześniej23.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Wyniki chirurgiczne
Łącznie 6 owiec poddano bezprzewodowemu wszczepieniu urządzenia telemetrycznego z kaniulacją żyły wrotnej (Tabela 1). U żadnego zwierzęcia nie wystąpiły poważniejsze powikłania pooperacyjne związane z implantacją urządzenia. Wszystkie 6 owiec przeszło jednoetapową procedurę Fontana, która obejmowała całkowite połączenie jamy jamowo-płucnej z odłączeniem zarówno SVC, jak i żyły głównej dolnej (IVC) od prawego przedsionka, bezpośrednie zespolenie końca do boku SVC z ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Opracowaliśmy nowatorską metodę chirurgiczną polegającą na wszczepieniu bezprzewodowego urządzenia telemetrycznego, aby ułatwić ciągłe i długoterminowe pobieranie ciśnień w żyle wrotnej w przewlekłym modelu owcy Fontana. Urządzenie udało się wszczepić sześciu owcom bez większych komplikacji. Dane zebrane przy użyciu tej techniki mogą stanowić podstawę przyszłych badań nad związkiem między zlokalizowanymi zmianami hemodynamicznymi w krążeniu wątrobowym a rozwojem FALD.

Podczas gdy modele zwierz...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Autorzy nie mają do ujawnienia żadnych konfliktów interesów.

Podziękowania

Wyrażamy nasze uznanie dla oddanego personelu weterynaryjnego w Animal Research Core. Pragniemy również wyrazić naszą wdzięczność Mary Walker, DVM, MS za jej nieocenioną wiedzę i czujną opiekę przez cały czas trwania badania. Projekt ten został sfinansowany przez Additional Ventures Cures Collaborative (Palo Alto, Kalifornia), The Brett Boyer Foundation (Laguna Beach, Kalifornia) oraz American Heart Association (Oakland, Kalifornia).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
0,9% roztwór chlorku soduKorporacja Baxter HealthcareAptekaŚródoperacyjna resuscytacja płynowa i płukanie rany
Cewnik dożylny 16 GBD382259Do podawania płynów i leków oraz potwierdzania ciśnienia w żyle wrotnej
Cewnik wewnątrznaczyniowy 22 GBD381423Do tętnic  Monitorowanie ciśnienia krwi 
70% alkoholu izopropylowegoWeterynarz osiki11795782Roztwór do czyszczenia miejscowego
Kaseta ACTDiagnostyka AbbotNumer katalogowy: 03P86-25Aktywowany czas krzepnięcia
Zacisk do ręczników BackhausLinia medlineMDS1411111Do mocowania sterylnej serwety 
BanaminaHospira FarmaceutykiAptekaKontrola bólu pooperacyjnego: stężenie 50 mg/mL, dawka 2,2 mg/kg
Mankiet do pomiaru ciśnienia krwiKrólewski Philips9.89803E+11Nieinwazyjne monitorowanie ciśnienia krwi
Chlorowodorek bupiwakainyHospira FarmaceutykiAptekaZnieczulenie miejscowe: stężenie 2,5 mg/mL, dawka 2,5 mg/kg
BuprenorfinaHospira FarmaceutykiAptekaKontrola bólu pooperacyjnego: stężenie 0,3 mg/mL, dawka 0,03 mg/kg
Uchwyt na igłę CastroviejoLinia medlineMDS0750386Uchwyt igły podczas szycia naczyń krwionośnych
Podkładka do czyszczenia kauteryzacjiKardynalne zdrowie300-2SSDo czyszczenia końcówki ołówka kauterycznego
Ołówek kauteryzacyjnyLinia medlineESRK3002LDo preparacji za pomocą elektrokoagulacji
CefazolinaHospira FarmaceutykiAptekaProfilaktyka antybiotykowa
CetacainaCetylit220Spray znieczulający miejscowo do intubacji
Chloraprep (Chloraprep)BD930825Miejscowy środek antyseptyczny
Debakey atraumatyczne kleszczeLinia medlineMDS1130630FDo pracy z tkankami
Zacisk naczyniowy Debakey SatinskyLinia medlineMDS1438413Aby odizolować punkt dostępu do żyły wrotnej
DiazepamHospira FarmaceutykiAptekaŚrodek uspokajający: stężenie 5 mg/mL, dawka 0,5 mg/kg
Odprowadzenia EKG3 mln2570Monitorowanie EKG
Rurka dotchawicza, rozmiar 8-9Wirus Covidien86452, 86114 lub 86454Aby zabezpieczyć drogi oddechowe
Kleszcze hemostatyczne HartmannLinia medlineMDS1221109Do zaciskania naczyń krwionośnych i przytrzymywania małych szwów
HeparynaHospira FarmaceutykiAptekaAntykoagulant: 1,000 jednostek USP / ml
IzofluranKorporacja Baxter HealthcareAptekaZnieczulenie: dawka 1-3%
Kleszcz Kantrowitza (kąt prosty)Linia medlineMDS1243528Do rozwarstwienia wokół żyły wrotnej
KetaminaHospira FarmaceutykiAptekaŚrodek uspokajający: stężenie 100 mg/mL, dawka 4mg/kg
Serweta do laparotomiiLinia medlineDYNJP3008Sterylna serweta
Galaretka smarującaLinia medlineMDS0322273ZSmar do rurki dotchawiczej
Uchwyt na igły Mayo HegarLinia medlineMDS2418420FUchwyt na igłę podczas szycia tkanek miękkich
Nożyczki majonezoweLinia medlineMDS0816121Aby przeciąć szew
Nożyczki zakrzywione MetzenbaumLinia medlineMDS3223226Do ostrego rozwarstwienia
Igły i strzykawkiKardynalne zdrowie309604Do podawania leków dożylnie i podskórnie 
Opieka OptixcareAventix (Aventix)OPX-4252 (wersja angielska)Smar do rogówki
Zgłębnik ustno-żołądkowyJorgensen Lab, Inc.J0348RDo dekompresji żołądka i żwacza
Szew jedwabny Perma-HandEtykaZobacz materiał C016DDo podwiązania naczyń krwionośnych i podskórnego podłączenia urządzenia telemetrycznego
Cyfrowe bezprzewodowe urządzenie telemetryczne PhysioTelMiędzynarodowa Nauka o DanychModel L21Implant bezprzewodowego urządzenia telemetrycznego
Przekłuwanie mikrokleszczyLinia medlineMDG384908Obsługa małych igieł 
Plastikowa opaska uciskowa i werbel do szwówFirma Medtronic 79013Aby ułatwić hemostazę podczas kaniulacji naczynia
Worek ciśnieniowyZabieg Carefusion64-10029Do monitorowania ciśnienia tętniczego krwi
Zestaw przetwornika ciśnieniaEdwards Nauki PrzyrodniczeVSYPX12NDo tętnic  monitorowanie ciśnienia krwi
Szew Prolene 6-0Etyka8307HŚcieg sznurkowy do torebki do kaniulacji naczyń
PropofolFresenius KabiAptekaŚrodek znieczulający: stężenie 10 mg/ml, dawka 20-45 mg/kg/godz.
Klips językowy pulsoksymetruNellcor powiedział:Zobacz materiał PO736Do pulsoksymetrii
Ostrze skalpela #10Linia medlineMDS15310Do nacięć skóry
Ostrze skalpela #11Linia medlineCISION11CSDo wbicia w żyłę wrotną
Kleszczyki migdałkowe SchnidtaLinia medlineMDS5018719Do wycinka przez tkankę podskórną
Nosze SoftCarryCztery flagi nad osikąSSTR-4 (wersja angielska)Do transportu zwierząt
Sterylna miskaBranże LSL5232Do przechowywania roztworu soli fizjologicznej
Sterylna bawełniana gąbka z gazy wykrywająca promieniowanie rentgenowskieLinia medlineNON21430LFAbsorpcja płynów
Sterylny jednorazowy ręcznik operacyjnyLinia medlineMDT2168201Sterylna serweta
Miejscowy klej do skóryEtykaDHVM12 powiedział:Aby zamocować cewnik urządzenia telemetrycznego na miejscu w miejscu wprowadzenia do żyły wrotnej
Złącze TLinia medlineDYNDTN0001Łącznik rurki cewnika dożylnego
Worek do drenażu moczuWirus Covidien3512Łączy się z rurką ustno-żołądkową w celu zbierania płynów żołądkowych
Trokar weterynaryjny ze styletemBraintree Scientific, Inc.TRO-STY 7B-12Aby przeprowadzić cewnik urządzenia telemetrycznego przez tkankę podskórną
Szew Vicryl 0EtykaZobacz materiał J346HZamknięcie powięzi ściany brzucha
Szew Vicryl 2-0EtykaVCPB269HZamknięcie podskórnej tkanki miękkiej
Szew Vicryl 3-0EtykaVCPB416HZamknięcie głębokiej warstwy skóry właściwej
Szew Vicryl 4-0EtykaZobacz materiał J494HBliżej warstwy podskórnej
Koc ocieplającyJorgensen Lab, Inc.Zobacz materiał J1034BAby utrzymać temperaturę ciała zwierzęcia
Ssanie końcówki żarówki YankauerLinia medlineDYND50138Gospodarka odpadami sterylnymi

Bibliografia

  1. Fontan, F. Surgical repair of tricuspid atresia. Thorax. 26 (3), 240-248 (1971).
  2. Bove, E. L. Staged reconstruction for hypoplastic left heart syndrome: Contemporary results. Ann Surg. 224 (3), 387-394 (1996).
  3. Attanavanich, S., et al. Single-stage versus two-stage modified Fontan procedure. Asian Cardiovasc Thorac Ann. 15 (4), 327-331 (2007).
  4. Akintoye, E., et al. National trends in Fontan operation and in-hospital outcomes in the USA. Heart. 105 (9), 708-714 (2019).
  5. Poh, C. L., d'Udekem, Y. Life after surviving Fontan surgery: A meta-analysis of the incidence and predictors of late death. Heart Lung Circ. 27 (5), 552-559 (2018).
  6. Warnes, C. A., et al. Task force 1: The changing profile of congenital heart disease in adult life. J Am Coll Cardiol. 37 (5), 1170-1175 (2001).
  7. Collins, R. T., et al. Risk factors for increased hospital resource utilization and in-hospital mortality in adults with single ventricle congenital heart disease. Am J Cardiol. 118 (3), 453-462 (2016).
  8. Veldtman, G. R., et al. Fontan circulation and systemic disease: A retrospective cohort analysis over 35 years of follow-up. Am Heart J. 279, 40-49 (2025).
  9. Al Balushi, A., Mackie, A. S. Protein-losing enteropathy following Fontan palliation. Can J Cardiol. 35 (12), 1857-1860 (2019).
  10. Mazza, G. A., Gribaudo, E., Agnoletti, G. The pathophysiology and complications of Fontan circulation. Acta Biomed. 92 (5), e2021260(2021).
  11. Schwartz, I., et al. Late outcomes after the Fontan procedure in patients with single ventricle: A meta-analysis. Heart. 104 (18), 1508-1514 (2018).
  12. Zafar, F., et al. Long-term kidney function after the Fontan operation: JACC review topic of the week. J Am Coll Cardiol. 76 (3), 334-341 (2020).
  13. Emamaullee, J., et al. Fontan-associated liver disease: Screening, management, and transplant considerations. Circulation. 142 (6), 591-604 (2020).
  14. Kiesewetter, C. H., et al. Hepatic changes in the failing Fontan circulation. Heart. 93 (5), 579-584 (2007).
  15. Inuzuka, R., et al. Predictors of liver cirrhosis and hepatocellular carcinoma among perioperative survivors of the Fontan operation. Heart. 109 (4), 276-282 (2023).
  16. Bradley, E., Hendrickson, B., Daniels, C. Fontan liver disease: Review of an emerging epidemic and management options. Curr Treat Options Cardiovasc Med. 17 (11), 51(2015).
  17. Levitte, S., et al. Pediatric combined heart-liver transplantation: A single-center long-term experience. Transplant Direct. 10 (9), e1696(2024).
  18. Asrani, S. K., Warnes, C. A., Kamath, P. S. Hepatocellular carcinoma after the Fontan procedure. N Engl J Med. 368 (18), 1756-1757 (2013).
  19. Ghaferi, A. A., Hutchins, G. M. Progression of liver pathology in patients undergoing the Fontan procedure: Chronic passive congestion, cardiac cirrhosis, hepatic adenoma, and hepatocellular carcinoma. J Thorac Cardiovasc Surg. 129 (6), 1348-1352 (2005).
  20. Van Puyvelde, J., et al. Creation of the Fontan circulation in sheep: A survival model. Interact Cardiovasc Thorac Surg. 29 (1), 15-21 (2019).
  21. Kelly, J. M., et al. Investigation of a chronic single-stage sheep Fontan model. JTCVS Open. 21, 268-278 (2024).
  22. Salehi Ravesh, M., et al. Quantifying and visualizing abdominal hemodynamics in patients with Fontan circulation by 4D phase-contrast flow magnetic resonance imaging at 1.5 T. Int J Cardiol. 413, 132391(2024).
  23. Guo, M., et al. Wireless telemetry device implantation in a Fontan ovine model for continuous and long-term hemodynamic monitoring. J Vis Exp. (219), e68068(2025).
  24. Oldhafer, F., et al. Long-term functional maintenance of exteriorized portal venous catheters in a porcine animal model. J Surg Res. 251, 187-194 (2020).
  25. Hsia, T. Y., et al. Subdiaphragmatic venous hemodynamics in the Fontan circulation. J Thorac Cardiovasc Surg. 121 (3), 436-447 (2001).
  26. Oka, T., et al. Noninvasive estimation of central venous pressure after Fontan procedure using biochemical markers and abdominal echography. J Thorac Cardiovasc Surg. 146 (1), 153-157 (2013).
  27. Sethasathien, S., et al. Magnetic resonance elastography is useful to determine the severity of liver fibrosis according to liver biopsy in post-Fontan patients. Int J Cardiovasc Imaging. 41 (1), 15-25 (2025).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Tagi

Telemetria bezprzewodowaprzewlekła choroba wątrobydane hemodynamicznekaniulacja żyły wrotnejkrążenie Fontanamodel zwierzęcy

Ten artykuł został opublikowany

Film wkrótce dostępny

Skontaktuj się z nami
Poleć bibliotece

Prywatność

Warunki korzystania z usługi

Zasady

Prawa autorskie © 2026 MyJoVE Corporation. Wszelkie prawa zastrzeżone.