Name: Produkcja ekstraktu z zarodków piskląt do hodowli mysich komórek macierzystych grzebienia nerwowego (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-11-27T17:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 12 s
Description: Poznaj metodę przygotowania ekstraktu z zarodków piskląt do hodowli mysich komórek macierzystych grzebienia nerwowego. Procedura obejmuje izolację, homogenizację, wirowanie i filtrację, zapewniając wysoką jakość CEE.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Wsparcie i rady Markusa Pajtlera oraz Roberta Bohrera były nieocenione przy wizualizacji niniejszego protokołu.

Autorzy oświadczają, że eksperymenty na zwierzętach zostały przeprowadzone zgodnie z dyrektywą Rady Wspólnot Europejskich (86/609/EEC), według wytycznych NIH dotyczących opieki i wykorzystania zwierząt w procedurach eksperymentalnych oraz zgodnie z regulacjami ustalonymi przez Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) na Uniwersytecie w Duisburgu-Essen (Niemcy).

Część 1: Przygotowanie (nie pokazano w filmie)
PRZYGOTOWANIE MATERIAŁÓW I ROZTWIORÓW (przed wyjęciem jaj z inkubatora)
<ul>
<li>Jaja należy inkubować w inkubatorze z nawilżaniem przez 11 dni w temperaturze 37°C (100°F).</li>
<li>Spray z 70% etanolem, czyste płytki, precyzyjne czyste pęsety, sterylne DMEM schłodzone do 4°C (40°F) w lodzie oraz sterylne strzykawki o pojemności 60 mL.</li>
<li>Sterylne probówki Corning o pojemności 50 mL należy wypełnić w połowie zimnym DMEM (4°C), aby wymieszać zmacerowane zarodki w stosunku 1:1 (masa zmacerowana: DMEM). Disekcję zarodków kurczęt należy rozpocząć niezwłocznie po wyjęciu jaj z inkubatora.</li>
<li>Narzędzia do dysekcji należy wysterylizować w autoklawie lub, w dniu zabiegu, zanurzyć je w 70% etanolu na 20 minut.</li>
</ul>
Część 2: Disekcja zarodków kurczaka (zaprezentowana na wideo)
<ol>
<li>Zwilż inkubowane jaja rozpylonym 70% etanolem przez co najmniej 30 sekund, a następnie ostrożnie osusz je czystymi, miękkimi ręcznikami papierowymi, unikając nadmiernego wstrząsania jaj. 
Uwaga: Zaleca się, aby nie przeprowadzać sekcji więcej niż 60 embrionów kurzych jednocześnie.</li>
<li>Ostrożnie otwórz jaja, uderzając je o ostrą krawędź, a następnie ostrożnie wyjmij embrion, dbając o to, aby nie uszkodzić pęcherzyka żółtkowego ani samego embrionu kurczaka.</li>
<li>Szybko zlokalizuj początek pępowiny i otwórz przezroczystą błonę otaczającą, nie niszcząc pęcherzyka żółtkowego ani małych naczyń krwionośnych. Następnie przetnij pępowinę za pomocą precyzyjnej, czystej pęsety.</li>
<li>Wyjmij embrion z pęcherzyka żółtkowego. 
Uwaga: Embriony należy szybko zdekapitować (nie pokazano tego na filmie).</li>
<li>Zbierz embriony do minimalnego medium niezbędnego (minimal essential medium) w temperaturze 4°C.</li>
</ol>
Część 3: Maceracja zarodków kurzych
<ol>
<li>Wyjmij tłok ze sterylnej strzykawki 60 mL.</li>
<li>Przenieś około 10 embrionów do jednej strzykawki 60 mL.</li>
<li>Ostrożnie włóż tłok z powrotem do strzykawki, aby uniknąć ryzyka utraty zmacerowanego materiału.</li>
<li>Przeprowadź macerację, naciskając tłok.</li>
<li>Zbierz zmacerowaną masę do przygotowanych probówek Corning wypełnionych w połowie DMEM w stosunku 1:1 (masa zmacerowana: DMEM). Przy zastosowaniu 10 embrionów uzyskuje się objętość około 25 mL.</li>
<li>Umieść mieszaninę na wytrząsarce na 45 min w temperaturze 4°C.</li>
</ol>
Część 4: Centryfugowanie zarodka kurczaka - zawiesina w DMEM
<ol>
<li>Przenieś zawiesinę zarodka kurczaka w DMEM do probówek do wirowania.</li>
<li>Dodaj sterylną hialuronidazę w stężeniu 1 mg na 25 mg zarodka.</li>
<li>Bardzo precyzyjnie wytaruj probówki do wirowania. 
Uwaga: Ten krok należy wykonać z ostrożnością, ponieważ wirowanie odbywa się przy bardzo wysokiej sile g, a użycie niezrównoważonych probówek może doprowadzić do uszkodzenia materiału lub wirówki. Za pomocą wagi o wysokiej dokładności należy uzyskać zgodność trzech miejsc po przecinku dla wszystkich probówek, uzupełniając brakującą ilość za pomocą DMEM.</li>
<li>Obniż temperaturę wirówki do 4°C. 
Uwaga: Rotor wirówki powinien również być przechowywany przez noc w komorze chłodniczej lub lodówce.</li>
<li>Wiruj przez 6 godzin przy wartości co najmniej 180.000 x g x h. Uwaga: Aby uzyskać lepsze wyniki w zakresie rozdziału poszczególnych faz, zastosuj 266.000 x g x h. Jeśli to możliwe, użyj regulacji próżniowej.</li>
</ol>
Część 5: Filtracja ekstraktu z zarodka kurczaka
Po wirowaniu można zaobserwować trzy fazy: górną mętną fazę ciekłą z fragmentami tłuszczowymi, przejrzystą fazę ciekłą w środku oraz osad na dnie probówki do wirowania. Uwaga: Należy ściśle unikać wstrząsania lub gwałtownego poruszania odwirowaną mieszaniną, ponieważ mogłoby to zniweczyć efekt etapu wirowania poprzez utratę przejrzystej środkowej fazy ciekłej.
Uwaga: Wszystkie kolejne kroki muszą być wykonane w warunkach sterylnych przy użyciu dygestorium z laminarnym przepływem powietrza:
<ol>
<li>Pipetujemy przejrzystą fazę ciekłą do systemu filtrującego z porami o wielkości 0.45 μm. Następnie włączamy podłączoną pompę próżniową. 
Uwaga: Nie należy naruszać osadu na dnie. Mogłoby to doprowadzić do zanieczyszczenia ekstraktu i zapchania systemu filtrującego.</li>
<li>Przenosimy pre-ekstrakt do systemu filtrującego z porami o wielkości 0.22 μm i ponownie włączamy podłączoną pompę próżniową. </li>
<li>Otrzymany ekstrakt z zarodka kurczaka dzielimy na aalikwoty w sterylnych probówkach Corning o pojemności 15 mL.</li>
<li>Aliquoty szybko mrozimy w temperaturze -80°C (-62°F). Uwaga: Ekstrakt z zarodka kurczaka (CEE) zachowuje trwałość do dwóch lat przy przechowywaniu w -80°C.</li>
</ol>

<ol><li>Bronner-Fraser, M., Fraser, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+analysis+reveals+multipotency+of+some+avian+neural+crest+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cell lineage analysis reveals multipotency of some avian neural crest cells.</a> Nature. 335, 161-164 (1988).</li>
<li>Stemple, D. L., Anderson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+a+stem+cell+for+neurons+and+glia+from+the+mammalian+neural+crest%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Isolation of a stem cell for neurons and glia from the mammalian neural crest.</a> Cell. 71, 973-985 (1992).</li>
<li>Rao, M. S., Anderson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immortalization+and+controlled+in+vitro+differentiation+of+murine+multipotent+neural+crest+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Immortalization and controlled in vitro differentiation of murine multipotent neural crest stem cells.</a> J Neurobiol. 32, 722-746 (1997).</li>
<li>Paratore, C., Goerich, D. E., Suter, U., Wegner, M., Sommer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Survival+and+glial+fate+acquisition+of+neural+crest+cells+are+regulated+by+an+interplay+between+the+transcription+factor+Sox10+and+extrinsic+combinatorial+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Survival and glial fate acquisition of neural crest cells are regulated by an interplay between the transcription factor Sox10 and extrinsic combinatorial signaling.</a> Cell. 128, 3949-3961 (2001).</li>
<li>Kim, J., Lo, L., Dormand, E., Anderson, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SOX10+maintains+multipotency+and+inhibits+neuronal+differentiation+of+neural+crest+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">SOX10 maintains multipotency and inhibits neuronal differentiation of neural crest stem cells.</a> Neuron. 38, 17-31 (2003).</li>
<li>Anderson, D. J., Groves, A., Lo, L., Ma, Q., Rao, M., Shah, N. M., Sommer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+determination+and+the+control+of+neuronal+identity+in+the+neural+crest%5BTitle%5D)+AND+%22Review+Cold+Spring+Harb+Symp+Quant+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell lineage determination and the control of neuronal identity in the neural crest.</a> Review Cold Spring Harb Symp Quant Biol. 62, 493-504 (1997).</li>
<li>Dorsky, R. I., Moon, R. T., Raible, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Environmental+signals+and+cell+fate+specification+in+premigratory+neural+crest%5BTitle%5D)+AND+%22Review+Bioessays%22%5BJournal%5D)">Environmental signals and cell fate specification in premigratory neural crest.</a> Review Bioessays. 22, 708-716 (2000).</li>
<li>Sieber-Blum, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factors+controlling+lineage+specification+in+the+neural+crest%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Rev+Cytol%22%5BJournal%5D)">Factors controlling lineage specification in the neural crest.</a> Int Rev Cytol. 197, 1-33 (2000).</li>
<li>Dupin, E., Real, C., Ledouarin, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+neural+crest+stem+cells%3A+control+of+neural+crest+cell+fate+and+plasticity+by+endothelin-3%5BTitle%5D)+AND+%22Int+Rev+Cytol%22%5BJournal%5D)">The neural crest stem cells: control of neural crest cell fate and plasticity by endothelin-3.</a> Int Rev Cytol. 73, 533-545 (2001).</li>
<li>Maurer, J., Fuchs, S., Jäger, R., Kurz, B., Sommer, L., Schorle, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+and+controlled+differentiation+of+neural+crest+stem+cell+lines+using+conditional+transgenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%22%5BJournal%5D)">Establishment and controlled differentiation of neural crest stem cell lines using conditional transgenesis.</a> Differentiation. 75, 890-891 (2007).</li>
<li>Wu, Y. Y., Mujtaba, T., Rao, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+stem+and+precursor+cells+from+fetal+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of stem and precursor cells from fetal tissue.</a> Methods Mol Biol. 198, 29-40 (2002).</li>
</ol>

Nie zadeklarowano żadnych konfliktów interesów.

Niniejszy protokół opiera się na modyfikacjach procedur opisanych w przeszłości10,11. Oprócz wcześniejszych publikacji przedstawiamy tutaj poszczególne kroki procesu w bardziej rozbudowanej formie. Wspiera to osobę przeprowadzającą eksperyment, dostarczając istotnych szczegółów zapewniających prawidłowy przebieg i wiarygodne wyniki. Ponadto, ponieważ proces sekcji jest niezbędną częścią ekstrakcji CEE, szczegółowo opisujemy procedurę wyjmowania embrionów z worka żółtkowego. Poniżej omówiono kilka ważnych punkt...

<table><tbody><tr><td>jaja kurze inkubowane przez 11 dni</td><td>Sorries-Trockels Vermehrungszucht GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alkoholowy spray do dezynfekcji</td><td>Sch&amp;#252;lke Mayr GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEMGlutamax</td><td>GIBCO, by Life Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Strzykawka sterylna (60 ml)</td><td>BD Biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Probówki sterylne (50; 15 ml)</td><td>Greiner Bio-One</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Końcówki do pipet sterylne</td><td>Starlab GmbH</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hialuronidaza typu IV-S</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stericupy Milipore sterylne (0,45; 0,22 &amp;mu;l)</td><td>Fisher Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pipety sterylne (25; 10; 5 ml)</td><td>Greiner Bio-One</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wirówka L5-50</td><td>Rotor typu Ti-45</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

wytwarzanie ekstraktu z zarodka kurczaka do hodowli mysich komórek macierzystych grzebienia neuronalnego

Production of Chick Embryo Extract for the Cultivation of Murine Neural Crest Stem Cells

Grzebień neuronalny powstaje z neuroektodermy podczas embriogenezy i utrzymuje się jedynie tymczasowo. Wczesne eksperymenty dowiodły już, że pluripotencjalne komórki progenitorowe stanowią integralną część grzebienia neuronalnego1. Fenotypowo komórki macierzyste grzebienia neuronalnego (NCSC) definiuje jednoczesna ekspresja p75 (receptor czynnika wzrostu nerwów o niskim powinowactwie, LNGFR) oraz SOX10 podczas ich migracji z grzebienia neuronalnego2,3,4,5. Komórki progenitorowe te mogą różnicować się w komórki mięśni gładkich, komórki chromafinne, neurony i komórki glejowe, a także w melanocyty, chrząstkę i kości6,7,8,9. Do hodowli NCSC in vitro wymagane jest specjalne medium dla komórek macierzystych grzebienia neuronalnego (NCSCM)10. Najbardziej złożonym elementem NCSCM jest przygotowanie ekstraktu z zarodka kurczaka (CEE), który stanowi kluczowe źródło czynników wzrostu dla NCSC oraz innych rodzajów eksplantów neuronalnych. Pozostałe składniki NCSCM, poza CEE, są dostępne w sprzedaży. Przy produkcji CEE z wykorzystaniem standardowego sprzętu laboratoryjnego niezwykle istotna jest znajomość wymagających szczegółów dotyczących procesów izolacji, maceracji, wirowania i filtracji. W niniejszym protokole opisujemy precyzyjne techniki pozwalające na uzyskanie maksymalnej ilości czystego i wysokiej jakości CEE.

Do hodowli komórek macierzystych grzebienia neuronalnego (NCSC) in vitro wymagane jest specjalne medium (NCSCM). Niezbędnym składnikiem NCSCM jest ekstrakt z embrionu kurczaka (CEE). Opisujemy tutaj precyzyjne techniki pozwalające na uzyskanie maksymalnej ilości czystego i wysokiej jakości CEE, w tym szczegóły dotyczące procesów izolacji, maceracji, wirowania oraz filtracji.

Wytwarzanie ekstraktu z zarodka kurczaka do hodowli mysich komórek macierzystych grzebienia neuronalnego

Grzebień neuronalny powstaje z neuroektodermy podczas embriogenezy i utrzymuje się jedynie tymczasowo. Wczesne eksperymenty udowodniły już pluripotencję...

Witam, nazywam się Annaa z laboratorium profesor Iki Egar w Zakładzie Onkologii Dziecięcej w Uniwersyteckim Szpitalu dla Dzieci w Essen w Niemczech. Dzisiaj zaprezentujemy procedurę przygotowania ekstraktów z 11-dniowych prenatalnych embrionów kurzych. Umieść DMEM na lodzie, aby schłodzić go do temperatury co najmniej czterech stopni Celsius.Używamy pożywki DMEM z glutaminianem z GIB, przygotowując sterylne probówki poprzez wypełnienie ich do połowy. Za pomocą MEM przemywamy jaja 70% etanolem, używając osobników, które były inkubowane przez 11 dni w temperaturze 100 stopni Fahrenheita w inkubatorze z nawilżaczem. Należy upewnić się, że etanol wniknął w tkanki przez co najmniej 30 sekund.Po aplikacji należy ostrożnie osuszyć jaja miękkimi ręcznikami papierowymi. Oczyścić szklaną lub plastikową płytkę etanolem. Otworzyć jaja.Ostrożnie umieść embrion na płytce. Nie uszkadzaj EC ani żadnych małych naczyń. Do wypreparowania embrionów użyj ostrych, czystych zestawów igieł precyzyjnych.Najpierw zlokalizuj pępowinę. Ponownie. Podczas poszukiwania pępowiny nie uszkodź żółtka ani żadnych małych naczyń. Po zlokalizowaniu pępowiny prześledź ją do jej początku i przeprowadź dysekcję.Po otwarciu przezroczystej osłonki nad embrionem, ostrożnie wyjmij embrion z EC, uważając, aby go nie uszkodzić. Umieść embriony w sterylnym, minimalnym medium niezbędnym na lodzie. Stosujemy DMEM z glutaminą firmy gyp Co. Wyjmij tłok ze sterylnej strzykawki o pojemności 60 ml.Umieść w strzykawce około 10 embrionów jednocześnie. Włóż tłok do strzykawki. Przeprowadź maturację embrionów, naciskając tłok.Należy uważać, aby nie wywierać zbyt dużego nacisku, w przeciwnym razie dojdzie do utraty dojrzałego materiału. Dojrzałe embriony należy zebrać do przygotowanych probówek w stosunku jednego embrionu na 10 embrionów MEM. Powinno to dać objętość około 25 mililitrów.Mieszaninę zarodków i EMEM w stosunku 1:1 wstrząsać przez 45 minut w temperaturze 4 °C. Ostrożnie przenieść mieszaninę do probówek do wirowania. Dodać hialuronidazę.Używamy odczynnika R Hay days z jąder byka (Boin testis) firmy Sigma. Odważamy probówki do wirowania przy użyciu specjalnej wagi analitycznej o wysokiej dokładności. Bardzo ważne jest zachowanie trzech miejsc po przecinku.Muszą one być równe. W przeciwnym razie ryzykujesz wystąpienie problemów z wirówką ze względu na wysoką prędkość niezbędną do odwirowania mieszaniny. W razie potrzeby wyrównaj różnice, dopipetowując brakującą ilość MEM. Rotor powinien znajdować się w lodówce lub komorze chłodzącej przez noc, aby schłodzić go do czterech stopni Celsius.Probówki do wirowania muszą być bardzo szczelnie zamknięte. W przeciwnym razie istnieje ryzyko wystąpienia problemów z ich wyjęciem z rotora. Po wirowaniu wypełnij rotor probówkami i zamknij go wcześniej bardzo szczelnie.Schłodź wirówkę do czterech stopni Celsius. W każdym przypadku stosuj próżnię. Poczekaj, aż wirnik osiągnie docelową prędkość.W przypadku wystąpienia jakichkolwiek nieprawidłowości należy natychmiast zatrzymać wirówkę. Naciśnij przycisk hamulca, aby przerwać wirowanie. Dzieje się to po sześciogodzinnym uruchomieniu rotora TI I 45 z prędkością 45 000 obr./min.Ostrożnie wyjmij probówki. Nie wstrząsaj nimi, ponieważ może to spowodować zwiększenie górnej, mętnej warstwy cieczy wewnątrz probówek. Zwróć uwagę na trzy fazy.Na górze znajduje się mętny płyn z tłustymi fragmentami. W środku znajduje się klarowny płyn, a na dnie widoczny jest osad. Należy zachować szczególną ostrożność, aby pobrać fazę klarowną ze środkowej części probówki.W żadnym wypadku nie należy dotykać osadu, ponieważ doprowadziłoby to do zanieczyszczenia ekstraktu oraz do zapchania systemu filtracyjnego. W pierwszym kroku należy użyć filtra o wielkości porów 0,45 µm podłączonego do pompy próżniowej. W drugim kroku uzyskaną ciecz należy przefiltrować przez filtr o wielkości porów 0,22 µm, również podłączony do pompy próżniowej, przelewając ekstrakt do probówek.Na koniec przechowywać probówki w temperaturze -80 °C.

production-chick-embryo-extract-for-cultivation-murine-neural-crest

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neuronauka

Produkcja ekstraktu z zarodków kurcząt do hodowli mysich komórek macierzystych grzbietu nerwowego

W tym filmie opisano metodę izolacji neuroprekursorów z rozwijającej się kory zarodków myszy. Przedstawiono procedurę usuwania zarodków z macicy, wycinania tkanki korowej oraz trawienia wyizolowanej kory mózgu.

Hodowla prekursorów neuronalnych komórek macierzystych myszy

Indukcja neuralna jest pierwszym etapem formowania się mózgu. Jest to mechanizm, dzięki któremu węzeł Hensen’a (organizator) instruuje sąsiednie tkanki do przyjęcia losu neuralnego, tzn. do przekształcenia się w układ nerwowy. Niniejszy film prezentuje test indukcji neuralnej w embrionie kurczaka.

Analiza indukcji neuralnej w embrionie kurczaka

Izolacja embrionalnej grzebieni neuralnej z rurki neuralnej umożliwia zastosowanie metod in vitro do badania migracji, samoodnawiania oraz multipotencji grzebieni neuralnej.

Izolacja i hodowla komórek grzebienia neuronalnego z zarodkowej rurki nerwowej myszy

Ten film demonstruje metodę generowania in vitro nerwowych komórek progenitorowych (NPC) z embrionalnych komórek macierzystych myszy (mESC). MESC są hodowane w zawiesinie w celu wytworzenia ciał embrionalnych (EB), które są następnie kierowane do różnicowania się w NPC poprzez traktowanie kwasem retinowym w kulturze adherentnej.

Technika generowania nerwowych komórek progenitorowych z embrionalnych komórek macierzystych myszy

Ten film ilustruje technikę izolowania fałdów nerwowych czaszki od śródmózgowia zarodków piskląt. Przedstawiono szczegółowy proces rozwarstwiania fałdów nerwowych, ich rozmieszczenia i mocowania na szkiełkach nakrywkowych pokrytych fibronektyną, a następnie obserwację migracji komórek grzebienia nerwowego z fałdów nerwowych.

Izolowanie fałdów nerwowych czaszki od zarodka kurcząt w celu hodowli komórek grzebienia nerwowego

Ten protokół szczegółowo opisuje metodę generowania neuronalnych komórek progenitorowych z embrionalnych komórek macierzystych przy użyciu metody monowarstwowej bez surowicy. Te progenitory mogą być wykorzystywane do uzyskiwania dojrzałych typów komórek nerwowych lub do badania procesu specyfikacji neuronalnej i są podatne na skalowanie w formacie wielodołkowym w celu przeprowadzenia badań przesiewowych związków.

Różnicowanie neuronalne embrionalnych komórek macierzystych myszy w hodowli jednowarstwowej bez surowicy

Przejście nabłonkowe do mezenchymalnego (EMT) pozwala nowotworom stać się inwazyjnymi. W celu zbadania EMT opisano model in vitro oparty na neuronalnych komórkach macierzystych (NSC) pozbawiony surowicy i enzymów. Ten ustandaryzowany system umożliwia ilościową i jakościową ocenę migracji komórek, ekspresji genów i białek. Model nadaje się do odkrywania leków.

Wolny od enzymów i surowicy model hodowli nerwowych komórek macierzystych do badań EMT, odpowiedni do odkrywania leków

Ten artykuł opisuje protokół efektywnego pozyskiwania i hodowli pluripotencjalnych linii komórek macierzystych z embrionów myszy w stadium blastocysty.

Pozyskiwanie linii komórek macierzystych z zarodków myszy przed implantacją

Tutaj wprowadzamy nowatorską technikę mikrochirurgiczną do izolacji nerwowych komórek macierzystych z wyniosłości zwojowej zarodka myszy E13.

Izolacja i hodowla embrionalnych mysich nerwowych komórek macierzystych

Ten protokół opisuje sekcję i hodowlę komórek grzebienia nerwowego czaszki z modeli mysich, głównie do badania migracji komórek. Opisujemy stosowane techniki obrazowania na żywo oraz analizę zmian prędkości i kształtu komórek.

Sekcja, hodowla i analiza pierwotnych komórek grzebienia nerwowego czaszki od myszy w celu zbadania delaminacji i migracji komórek grzebienia nerwowego

Ten wszechstronny protokół opisuje izolację premigrujących komórek grzebienia nerwowego (NCC) poprzez wycięcie fałdów nerwowych czaszki z zarodków piskląt. Po posiewie i inkubacji migrujące NCC wyłaniają się z eksplantatów fałdów nerwowych, co pozwala na ocenę morfologii i migracji komórek w uproszczonym środowisku 2D.

Przygotowanie i analiza morfologiczna kultur komórek grzebienia nerwowego czaszki piskląt

Poznaj metodę przygotowania ekstraktu z zarodków piskląt do hodowli mysich komórek macierzystych grzebienia nerwowego. Procedura obejmuje izolację, homogenizację, wirowanie i filtrację, zapewniając wysoką jakość CEE.

Wytwarzanie ekstraktu z zarodka kurczaka do hodowli mysich komórek macierzystych grzebienia neuronalnego

Przeglądaj więcej filmów