$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Pobrać płytkę wielodołkową zawierającą hodowlę komórek nabłonka ssaków.
W studzienkach testowych dodaj patogen bakteryjny wraz z kulkami polimerowymi sprzężonymi z białkami powierzchniowymi bakterii.
W studzienkach kontrolnych dodaj patogen i kulki pozbawione bakteryjnych białek powierzchniowych. Inkubować.
W studzienkach testowych kulki naśladują powierzchnię bakterii i konkurują z patogenem o wiązanie się z kwasem fosfatydowym błony komórkowej nabłonka, zmniejszając przyczepianie się bakterii.
W studzienkach kontrolnych koraliki nie wpływają na przyczepianie się bakterii.
Wyjmij nośnik i umyj go buforem, aby usunąć niezwiązane składniki.
Inkubuj z niejonowym detergentem, aby zlizować komórki, uwalniając bakterie i kulki przyczepione do błony.
Odpipetować lizat w celu uzyskania jednorodnej zawiesiny i seryjnie rozcieńczyć homogenat za pomocą buforu.
Przenieś rozcieńczenia na płytki agarowe, inkubuj, aby umożliwić utworzenie kolonii i policz kolonie.
Płytka testowa wykazuje mniej kolonii niż kontrole, co wskazuje na zmniejszone interakcje bakteria-gospodarz.
Przygotuj pożywkę infekcyjną, rozcieńczając kultury bakteryjne do bezbarwnego DMEM bez dodatków.
Podgrzany do 37 stopni Celsjusza zawierający 10% zawiesiny kulek objętościowych do objętościowych. Aby uzyskać MOI równy 10, przygotuj jeden mililitr na studzienkę i 10 do 20% nadwyżki objętości na próbkę. Usuń starą pożywkę ze studzienek i umyj wyhodowane komórki HeLa, dodając do każdej studzienki jeden mililitr sterylnego PBS podgrzanego do 37 stopni Celsjusza. Usuń PBS i dodaj jeden mililitr pożywki infekcyjnej na studzienkę. Dodać roztwory zawierające kulki kontrolne i bakterie jako kontrole dodatnie i kulki adhezyjne oraz brak bakterii jako kontrole ujemne.
Dodaj DMEM zawierający 0,1% Triton X 100 jako kontrolę lizy.
Inkubować płytkę w inkubatorze do hodowli tkankowych w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez żądany czas.
Pomiary adhezji bakteryjnej wykonuje się godzinę po zakażeniu. Usuń pożywkę z warstwy komórek i dokładnie umyj warstwę komórek sterylnym, wstępnie podgrzanym PBS, aby usunąć wszelkie nieprzyłączone komórki. Umyj co najmniej trzy do czterech razy jednym mililitrem PBS za każdym razem. Poddać lizie komórki gospodarza, dodając do każdej studzienki jeden mililitr sterylnego roztworu Triton X 100 o objętości do objętości w PBS. Inkubować płytkę w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez pięć minut.
Odpipetuj każdą próbkę kilka razy w górę i w dół przed przeniesieniem zawartości każdej studzienki do oddzielnych probówek o pojemności 1,5 mililitra. Przygotować dziesięciokrotne seryjne rozcieńczenia próbek do sterylnego PBS. Umieść 100 mikrolitrów każdej próbki na morskim agarze LB i rozprowadź za pomocą rozsiewacza komórek. Zoptymalizuj rozcieńczenie do płytki w zależności od szczepów bakteryjnych i punktu czasowego.
Dla tego zestawu doświadczalnego rozcieńczenie od 10 do 5 lub od 10 do 6 wielkości da odpowiednią liczbę CFU. Inkubuj płytki w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez noc. Następnego dnia ponumeruj bakterie, licząc kolonie.