Immunizacja śródskórna żywymi atenuowanymi sporozoitami w modelu mysim

0 wyświetleń2:19 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od znieczulonej myszy pod mikroskopem stereoskopowym, z dolną stroną jednego z uszu myszy przymocowaną do stolika za pomocą taśmy klejącej.

Oczy pokryte są maścią, aby zapobiec ich wysuszeniu.

Przynieś strzykawkę wypełnioną sporozoitowym stadium Plasmodium, pasożyta malarii. Żywe sporozoity są tłumione promieniowanie, dzięki czemu nie są zakaźne.

Za pomocą mikroskopu stereoskopowego wstrzyknąć w górną część ucha, penetrując najbardziej zewnętrzną warstwę naskórka i uwalniając sporozoity do skóry właściwej.

Trzymać igłę na miejscu przez krótki czas, aby zapobiec cofaniu się wstrzykniętej zawiesiny przed jej usunięciem.

Widoczny obrzęk w miejscu wstrzyknięcia, zwany grudką, potwierdza udane wstrzyknięcie.

Wykonać kilka wstrzyknięć do tego samego ucha.

Zwolnić ucho, w które wykonano wstrzyknięcie, i powtórzyć wstrzyknięcia do drugiego ucha.

Po wstrzyknięciu pozwól myszy dojść do siebie.

Wstrzyknięte sporozoity wywołują odpowiedź immunologiczną, przygotowując układ odpornościowy do walki z pasożytem.

Przed wstrzyknięciem sporozoitów należy potwierdzić prawidłowy poziom uspokojenia zwierzęcia doświadczalnego poprzez uszczypnięcie palca u nogi i nałożenie maści do oczu, aby zapobiec wysuszeniu rogówki. Następnie, pracując szybko, za pomocą przezroczystej taśmy delikatnie zamocuj brzuszną stronę małżowiny usznej pod mikroskopem stereoskopowym i załaduj strzykawkę o pojemności 10 mikrolitrów wyposażoną w igłę o rozmiarze 35 z 0,6 mikrolitra zawieszonych pasożytów.

Następnie ostrożnie wbij igłę skośną stroną do góry, pod naskórek po grzbietowej stronie ucha i wstrzyknij w to miejsce 0,15 mikrolitra sporozoitów. W miejscu wstrzyknięcia będzie obserwowana charakterystyczna grudka. Po wstrzyknięciu skóry właściwej jeszcze trzy razy, jak właśnie pokazano, ostrożnie usuń taśmę i monitoruj mysz, aż w pełni wyzdrowieje.

09:57

Pomiar naturalnie nabytych przeciwciał indukujących fagocytozę przeciwko pasożytom Plasmodium falciparum za pomocą testu opartego na cytometrii przepływowej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

05:28

Standardowy test karmienia membranowego do wykrywania zakażenia Plasmodium falciparum u wektorów komarów Anopheles

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:20

In vitro Test zabijania krwinek czerwonych zakażonych zarodźcem przez limfocyty cytotoksyczne

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

13:39

Protokół otrzymywania krzyżówki genetycznej pasożytów malarii gryzoni

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:33

Technika rozwoju infekcji pasożytniczej w organoidach jelitowych za pomocą mikroiniekcji

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:28

Wygenerowanie mysiego modelu eksperymentalnej malarii mózgowej z wykorzystaniem sporozoitów pochodzących od komarów gospodarzy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:16

Immunizacja donosowa BCG w modelu mysim

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:02

Model eksperymentalny do badania koinfekcji gruźlicą i malarią po naturalnym przenoszeniu Mycobacterium tuberculosis i Plasmodium berghei

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:33

Immunoterapia dolimfatyczna i szczepienie u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

08:46

Izolacja komórek szpikowych ze skóry myszy i drenaż węzłów chłonnych po szczepieniu śródskórnym żywymi atenuowanymi sporozoitami zarodźca

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026