Współhodowla brzusznego hipokampa i jądra półleżącego

0 wyświetleń5:13 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Zacznij od pourodzeniowej sekcji koronalnej mózgu myszy zawierającej brzuszny obszar hipokampa, obszar w dolnej części mózgu.

Przeciąć brzuszną tkankę hipokampa i przenieść ją do odpowiedniego podłoża.

Pokrój tkankę na mniejsze kawałki i pozwól im przymocować się do szkiełka nakrywkowego pokrytego matrycą w płytce wielodołkowej.

Neurony z tkanki zaczynają wydłużać projekcje.

Następnie weźmy jądro półleżące pochodzące z zarodka myszy, małą tkankę głęboko wewnątrz przodomózgowia.

Pokrój tkankę jądra półleżącego na małe kawałki. Przenieś je do tuby.

Dodaj enzymy trawiące, aby zdysocjować białka macierzy zewnątrzkomórkowej. Umyj, aby obniżyć poziom enzymów.

Pipetuj kawałki tkanki w górę i w dół, aby wygenerować pojedyncze komórki.

Odwirować komórki. Usunąć supernatant i ponownie zawiesić komórki.

Dodać tę zawiesinę do szkiełka nakrywkowego z brzusznymi tkankami hipokampa i rozpocząć inkubację.

Zakończenia nerwowe z brzusznego fragmentu tkanki hipokampa łączą się z komórkami neuronalnymi jądra półleżącego, tworząc połączenie komunikacyjne zwane synapsą.

Przed pobraniem tkanek należy wstępnie inkubować 12-milimetrowe szkiełka nakrywkowe z powłoki szklanej laminowanej poli-D-lizyną na 24-dołkowych płytkach do hodowli tkankowych z 500 mikrolitrami pożywki hodowlanej w temperaturze 37 stopni Celsjusza przez co najmniej 30 minut. Następnie usuń podłoże przed poszyciem mikroplasterków. Aby pobrać tkankę do hodowli, usuń górną część czaszki, aby odsłonić cały mózg każdego złożonego w ofierze młodego.

Pod mikroskopem preparacyjnym, zaczynając od miejsca, w którym kora mózgowa oddziela się od siebie doogonowo, uzyskaj sekcję koronalną zawierającą tylną korę, w tym brzuszne hipokampy. Następnie wypreparuj brzuszne tkanki hipokampa zawierające regiony CA1-subiculum. Następnie przenieś tkanki do 35-milimetrowego naczynia hodowlanego zawierającego zimne podłoże hodowlane.

Następnie pokrój tkanki dalej na małe, cienkie plasterki. Pokryj plastry wypolerowaną ogniowo pipetą Pasteura na środku szkiełka nakrywkowego z 50 mikrolitrami pożywki, aby ułatwić przymocowanie eksplantatów. Następnie ułóż brzuszne mikroplastry hipokampa na szkiełku nakrywkowym.

Po tym, jak eksplantaty osiądą na szkiełku nakrywkowym, delikatnie dodaj 100 mikrolitrów dodatkowych pożywek przy ścianie, tak aby poziom podłoża był wystarczająco wysoki, aby całkowicie pokryć eksplantaty na obrzeżach, ale nie te w środku szkiełka nakrywkowego. Następnie inkubuj eksplantaty przez noc w 5% CO2 w temperaturze 37 stopni Celsjusza przed dyspersją neuronów jądra półleżącego. Teraz uzyskaj tkanki jądra półleżącego od 18 dnia embrionalnego do pierwszego dnia po urodzeniu myszy typu dzikiego.

Pokrój je na małe kawałki. Następnie przenieś je do 15-mililitrowej tuby. Traktuj tkanki dwoma mililitrami 0,25% trypsyny przez 15 minut w temperaturze 37 stopni Celsjusza. Następnie umyj chusteczki trzykrotnie pięcioma mililitrami środka myjącego o czterech stopniach Celsjusza i pozostaw zawiesinę na pięć minut na każdym etapie prania.

Następnie umyj tkanki w pięciu mililitrach pożywki hodowlanej o temperaturze czterech stopni Celsjusza. Następnie rozdziel komórki przez delikatne rozcieranie w dwóch mililitrach pożywki hodowlanej za pomocą lekko wypolerowanej pipety Pasteura. Następnie przenieś zawiesinę komórek do innej 15-mililitrowej probówki i odwiruj z prędkością 2,000 obr./min przez pięć minut.

Po pięciu minutach usuń supernatant i ponownie zawieś komórki w pożywce hodowlanej w ilości jednego mililitra na sześć młodych. Następnie rozproszyć komórki, delikatnie odpipetowując pożywkę kilka razy za pomocą wypolerowanej ogniowo pipety Pasteura. Na koniec dodaj 0,25 mililitra rozproszonych komórek jądra półleżącego do każdego szkiełka nakrywkowego z brzusznymi eksplantatami hipokampa. Umieść płytki hodowlane na wilgotnych i sterylnych gazikach, aby mechanicznie ustabilizować i utrzymać wilgotność w celu ułatwienia tworzenia synaps. Następnie inkubować płytki w 5% CO2 w temperaturze 37 stopni Celsjusza.

11:58

Pierwotna hodowla mysich neuronów dopaminergicznych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:53

Wykorzystanie pierwotnych hodowanych neuronów hipokampa do badania składania początkowych segmentów aksonów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:26

Łatwa i powtarzalna hodowla pierwotna o niskiej gęstości przy użyciu zamrożonego materiału embrionalnych neuronów hipokampa

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:18

Pierwotna hodowla neuronów hipokampa od nowonarodzonych szczurów P0

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

15:40

Nukleofekcja i hodowla pierwotna embrionalnych neuronów hipokampa i kory mózgowej myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:50

Neuromodulacja i transport mitochondrialny: obrazowanie na żywo w neuronach hipokampa przez długi czas

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:27

Izolacja i hodowla neuronów hipokampa od myszy prenatalnych

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:48

Technika hodowli neuronów hipokampa myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

04:53

Technika pośredniej kohodowli neuronów i astrocytów do badania interakcji neuron-glej

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:41

Obrazowanie wapnia in vitro w krótko- i długoterminowych hodowlach hipokampa szczurów

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 1 sierpnia 2026