-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
Ocena poziomu neuroprzekaźników pobudzających u szczurów z przewlekłą padaczką
Ocena poziomu neuroprzekaźników pobudzających u szczurów z przewlekłą padaczką
Encyclopedia of Experiments
Neuroscience
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Encyclopedia of Experiments Neuroscience
Assessment of Excitatory Neurotransmitter Levels in Chronic Epilepsy-Induced Rats

Ocena poziomu neuroprzekaźników pobudzających u szczurów z przewlekłą padaczką

Protocol
379 Views
05:52 min
July 8, 2025
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Transcript

Weźmy szczura kontrolnego i szczura z przewlekłą epilepsją, którym wszczepiono kaniulę prowadzącą i elektrodę elektroencefalogramową lub EEG w hipokampie.

Indukcja padaczki zwiększa uwalnianie neuroprzekaźników pobudzających, powodując napływ jonów do komórek postsynaptycznych, co generuje ciągłe potencjały pobudzające. Prowadzi to do zsynchronizowanych wybuchów aktywności elektrycznej, zwanych napadami, rejestrowanych za pomocą elektrody.

Włóż do kaniuli sondę do mikrodializy z półprzepuszczalną membraną.

Przywiąż szczura do klatki systemu rejestracji EEG.

Wprowadź fizjologiczny bufor do tkanki mózgowej przez wlot sondy.

Upewnij się, że nie ma napadów padaczkowych i zbierz płyn zewnątrzkomórkowy przez wylot sondy, aby ocenić poziom neuroprzekaźników.

Podwyższony poziom podstawowy u szczura z padaczką wskazuje na wzrost spowodowany padaczką.

Wprowadzić bufor o wysokiej zawartości potasu i zebrać próbki.

Zwiększony poziom potasu przedłuża pobudliwość neuronów, wywołując ciągłe uwalnianie neuroprzekaźników.

Tymczasowy wzrost poziomu neuroprzekaźników zarówno u szczurów z padaczką, jak i u szczurów kontrolnych wskazuje na wysoki wzrost wywołany przez potas

.

Zacznij od przygotowania sond do mikrodializy do pierwszego użycia zgodnie z instrukcją obsługi producenta i napełnij je roztworem Ringera. Następnie wytnij 10-centymetrowe kawałki rurki FEP i podłącz je do kaniul wlotowych i wylotowych sondy za pomocą adapterów rurek w różnych kolorach. Upewnij się, że rurka styka się z adapterami bez martwych przestrzeni we wszystkich połączeniach.

Wyjmij atrapę kaniuli z prowadnicy za pomocą pęsety, mocno trzymając głowę zwierzęcia. Włóż sondę do mikrodializy do kaniuli prowadzącej i użyj plasteliny, aby jeszcze bardziej ujędrnić kaniulę. Następnie podłącz zwierzę do systemu rejestracji EEG na uwięzi. Następnie włóż zwierzę do cylindra z pleksiglasu i pozwól mu eksplorować nowe środowisko. Śledź obudzone i swobodnie poruszające się ruchy szczurów.

Następnie podłącz wlot sondy do strzykawki o pojemności 2,5 mililitra za pomocą igły o rozmiarze 22 zawierającej roztwór Ringera za pomocą adapterów rurek. Wepchnij jeden mililitr roztworu Ringera do sondy w ciągu 10 sekund, naciskając w sposób ciągły tłok strzykawki o pojemności 2,5 mililitra. Sprawdź, czy na wylocie nie pojawiła się kropla płynu, aby oznaczyć, kiedy sonda jest gotowa do użycia. Na koniec napełnij strzykawki o pojemności 2,5 mililitra podłączone do rurki FEP za pomocą adapterów rurek roztworem Ringera i zamontuj je na pompie infuzyjnej. Uruchom pompę z prędkością dwóch mikrolitrów na minutę i pozwól jej pracować przez noc.

Po zweryfikowaniu za pomocą zapisów wideo EEG, braku napadów w ciągu trzech godzin poprzedzających pobranie próbki, należy zatrzymać pompę przenoszącą rurki FEP, kaniulowane strzykawki wypełnione roztworem Ringera. Zamontuj kolejny zestaw strzykawek o pojemności 2,5 mililitra połączonych z rurką FEP za pomocą adapterów rurek wypełnionych zmodyfikowanym roztworem Ringera zawierającym 100 milimolowy roztwór potasu. Uruchom pompę z prędkością 2 mikrolitrów na minutę i pozwól jej pracować. Sprawdź, czy w systemie nie ma pęcherzyków powietrza i upewnij się, że rurki stykają się z adapterami bez martwych przestrzeni we wszystkich połączeniach.

Następnie sprawdź, czy na wylocie nie pojawiła się kropla płynu, aby oznaczyć, kiedy sonda jest gotowa do użycia. Następnie podłącz rurkę FEP strzykawek wypełnionych roztworem Ringera do kaniuli wlotowej sondy u każdego zwierzęcia i poczekaj na pojawienie się kropli cieczy na końcówce wylotu. Podłącz wylot sondy do rurki FEP, co prowadzi do gromadzenia się w probówce.

Włóż rurkę FEP do zamkniętej probówki o pojemności 0,2 mililitra z perforowaną nakrętką. I upewnij się, że rurka pozostaje na swoim miejscu, mocując ją kawałkiem plasteliny. Po uruchomieniu pompy z prędkością 2 mikrolitrów na minutę przez 60 minut bez pobierania próbek w celu zrównoważenia, system pobiera pięć kolejnych 30-minutowych próbek dializatu w warunkach wyjściowych. I przechowuj próbki na lodzie.

Po 10 minutach przełączyć rurkę ze strzykawek zawierających 100-milimolowy roztwór potasu Ringera na normalny roztwór Ringera i pozwolić pompie pracować. Po zebraniu piątego dialiatu po równowadze, należy zbierać 20 mikrolitrowych frakcji dializatu co 10 minut przez jedną godzinę. Następnie należy pobrać trzy dodatkowe 30-minutowe próbki dializatu i zatrzymać pompę. Na koniec należy przechowywać próbki w temperaturze minus 80 stopni Celsjusza po doświadczeniu do czasu analizy HPLC.

Related Videos

In vivo (in vivo) Metoda mikrodializy do zbierania dużych białek zewnątrzkomórkowych z płynu śródmiąższowego mózgu za pomocą sond odcinających o dużej masie cząsteczkowej

08:17

In vivo (in vivo) Metoda mikrodializy do zbierania dużych białek zewnątrzkomórkowych z płynu śródmiąższowego mózgu za pomocą sond odcinających o dużej masie cząsteczkowej

Related Videos

15.1K Views

Dynamiczne pobieranie w czasie rzeczywistym płynu zewnątrzkomórkowego hipokampa od przytomnych szczurów za pomocą systemu mikrodializy

05:43

Dynamiczne pobieranie w czasie rzeczywistym płynu zewnątrzkomórkowego hipokampa od przytomnych szczurów za pomocą systemu mikrodializy

Related Videos

2.9K Views

Dynamiczna ciągła ekstrakcja krwi z serca szczura za pomocą nieinwazyjnej techniki mikrodializy

04:52

Dynamiczna ciągła ekstrakcja krwi z serca szczura za pomocą nieinwazyjnej techniki mikrodializy

Related Videos

2.7K Views

Elektroencefalograficzny zapis napadów padaczkowych u szczurów z padaczką

02:19

Elektroencefalograficzny zapis napadów padaczkowych u szczurów z padaczką

Related Videos

580 Views

Wywoływanie ostrego napadu elektrowstrząsowego w modelu szczurzym

02:33

Wywoływanie ostrego napadu elektrowstrząsowego w modelu szczurzym

Related Videos

256 Views

Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu systemu nadajników bezprzewodowych Epoch

08:43

Długotrwałe, ciągłe monitorowanie EEG w modelach chorób człowieka u małych gryzoni przy użyciu systemu nadajników bezprzewodowych Epoch

Related Videos

26.1K Views

Manipulacja elektrokortykogramem padaczkowym (ECoG) i snem u szczurów i myszy za pomocą akupunktury

09:06

Manipulacja elektrokortykogramem padaczkowym (ECoG) i snem u szczurów i myszy za pomocą akupunktury

Related Videos

9.9K Views

Wykorzystanie bioczujników opartych na enzymach do pomiaru toniku i glutaminianu fazowego w mysich modelach choroby Alzheimera

10:46

Wykorzystanie bioczujników opartych na enzymach do pomiaru toniku i glutaminianu fazowego w mysich modelach choroby Alzheimera

Related Videos

11.6K Views

Napady elektrowstrząsowe u szczurów i frakcjonowanie ich hipokampów w celu zbadania wywołanych napadami zmian w białkach o gęstości postsynaptycznej

09:07

Napady elektrowstrząsowe u szczurów i frakcjonowanie ich hipokampów w celu zbadania wywołanych napadami zmian w białkach o gęstości postsynaptycznej

Related Videos

12.4K Views

Adaptacja technologii matryc mikroelektrod do badania neurotoksyczności wywołanej znieczuleniem w nienaruszonym mózgu prosiąt

08:23

Adaptacja technologii matryc mikroelektrod do badania neurotoksyczności wywołanej znieczuleniem w nienaruszonym mózgu prosiąt

Related Videos

9.8K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code