Elektroforetyczne dostarczanie GABA do ogniska padaczkowego znieczulonej myszy

0 wyświetleń4:17 min • June 17th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Weźmy znieczuloną mysz przygotowaną do wszczepienia implantu mózgowego.

Mysz ma uziemiającą mocowaną w czaszce w kontakcie z móżdżkiem do nagrywania sygnału referencyjnego.

Włóż sondę podłączoną do stopnia głównego i uziemiającą do hipokampa, aby zarejestrować aktywność neuronalną.

Zidentyfikuj zsynchronizowane wybuchy aktywności neuronalnej, potwierdzając umieszczenie sondy w warstwie piramidalnej hipokampa.

Następnie włóż mikroprzepływową pompę jonową wypełnioną GABA do hipokampa, z elektrodą źródłową w jej kanale. Śruba uziemiająca mocowana na czaszce działa jak elektroda docelowa.

Na koniec włóż mikropipetę do hipokampa i wstrzyknij bloker kanału potasowego, aby wywołać nadpobudliwość neuronów, wywołując drgawki.

Natychmiast przyłóż napięcie do pompy, aby wytworzyć pole elektryczne, kierując jony GABA przez błonę jonowymienną do ogniska padaczkowego.

GABA indukuje napływ chlorków, zmniejszając pobudliwość neuronów i zapobiegając napadom, potwierdzając skuteczność dostarczania elektroforetycznego.

W celu włożenia wielokanałowej sondy silikonowej umieść sondę na ramieniu stereotaktycznym przymocowanym do uchwytu magnetycznego. I umieść ramię obok ramy stereotaktycznej. Ustaw ramiona stereotaktyczne pod niewielkim kątem 20 stopni do przodu i do tyłu, aby pozostawić wystarczająco dużo miejsca na ustawienie pozostałych dwóch implantów. I podłącz sondę do stopnia głowicy i uziemiającej.

Użyj mikronowego precyzyjnego ramienia stereotaktycznego, aby powoli opuścić sondę krzemową do hipokampa. I zainicjuj oprogramowanie do nagrywania, aby rejestrować elektryczne sygnały neuronalne, jednocześnie przesuwając wielokanałową sondę krzemową od góry kory mózgowej, aż do osiągnięcia docelowej pozycji grzbietowo-brzusznej.

Następnie jednocześnie zapisz sygnał potencjału pola lokalnego z warstw kory mózgowej i hipokampa podczas penetracji na ekranie komputera i wykorzystaj aktywność tętnienia w warstwie piramidalnej formacji hipokampa w zarejestrowanym potencjale pola lokalnego jako marker strefy docelowej.

Aby napełnić mikroprzepływową pompę jonową, podłącz rurki do wlotu pompy i napełnij sondę 0,05 molowym roztworem GABA. Wyjmij rurki i zamknij wlot folią parafinową i upewnij się, że mikroprzepływowa pompa jonowa jest dobrze przymocowana do uchwytu. Zachowaj ostrożność podczas montażu uchwytu na ramieniu mikromanipulatora przed podłączeniem przewodów elektrycznych do źródłowej jednostki pomiarowej.

Trzymając ramię stereotaktyczne pod kątem przyśrodkowym 20 stopni, opuść pompę powoli, wykonując ruchy osiowe jak najbliżej sondy, nie pozwalając pompie zginać się, aż pompa osiągnie współrzędną grzbietowo-brzuszną, ujemną 1,200 mikrometrów od powierzchni kory mózgowej. Przygotowując się do indukcji napadu padaczkowego, należy zdjąć metalową igłę ze strzykawki o pojemności 10 mikrolitrów i przymocować mikropipetę borokrzemianową do końcówki strzykawki. Umieść piastę nad końcówką mikropipety i ustaw strzykawkę pod kątem bocznym i przyśrodkowym pod kątem 20 stopni.

Za pomocą automatycznej pompy do mikroiniekcji załadować do strzykawki od 500 do 1000 nanolitrów 50-milimolowej pełnej aminopirydyny w sztucznym płynie mózgowo-rdzeniowym i opuścić szklaną mikropipetę do pozycji współrzędnych grzbietowo-brzusznych. Wstrzyknij 250 nanolitrów roztworu do mózgu i rozpocznij nagrywanie w oprogramowaniu. Następnie obserwuj ekran i poczekaj, aż pojawi się pierwszy skok międzyogniskowy, zanim zastosujesz 1 wolt między źródłem a celem przez 100 sekund i 1 sekundę wyłącz przez 30 cykli, aby dostarczyć roztwór GABA.

09:39

Stymulacja prądem stałym i wieloelektrodowa rejestracja aktywności podobnej do napadów w przygotowaniu do wycinka mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:32

Prądy całokomórkowe wywołane przez zaciągnięcie GABA w wycinkach mózgu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:45

Wytwarzanie i inicjacja na żądanie ostrej aktywności ictal w tkankach gryzoni i ludzkich

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:59

Rejestracja EEG o wysokiej gęstości u swobodnie poruszających się myszy z wykorzystaniem mikroelektrod na bazie poliamidu

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

03:09

Wpływ stymulacji prądem stałym na wywołane napady padaczkowe w wycinkach mózgu myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

02:15

Ustalenie modelu napadów padaczkowych indukowanych pentylenotetrazolem u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

07:52

Jednoczesny zapis elektrofizjologiczny i mikroiniekcja środków hamujących do mózgu gryzonia

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

06:58

Nieskrępowana radiotelemetria EEG: zewnątrzoponowe i głębokie śródmózgowe stereotaktyczne umieszczenie elektrod EEG

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

09:06

Manipulacja elektrokortykogramem padaczkowym (ECoG) i snem u szczurów i myszy za pomocą akupunktury

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

10:08

Pilokarpinowy model padaczki skroniowej i monitorowanie EEG z wykorzystaniem systemu radiotelemetrycznego u myszy

Powiązane filmy

0 Wyświetlenia

Ostatnia aktualizacja: 22 sierpnia 2026