RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
pl_PL
Menu
Menu
Menu
Menu
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Weźmy znieczuloną mysz z odsłoniętymi zwojami korzenia grzbietowego L4 i L5 zawierającymi ciała komórek neuronów czuciowych.
Załaduj pipetę do mikroiniekcji znakowanymi fluoroforem konstruktami RNA, które regulują regenerację aksonów, oraz barwnikiem znacznikowym.
Wstrzyknąć mieszaninę do DRG.
Za pomocą elektrod elektroporacyjnych przyłóż impulsy elektryczne do DRG.
Powoduje to rozerwanie błon ciał komórkowych neuronów czuciowych, tworząc pory, które umożliwiają konstruktom wejście do cytoplazmy, ułatwiając transfekcję.
Zszyj nacięcie i pozwól myszy dojść do siebie.
Po kilku dniach ponownie znieczul i zabezpiecz mysz.
Wykonaj nacięcie boczne do linii środkowej po lewej stronie. Wypreparuj mięśnie, aby odsłonić nerw kulszowy.
Zmiażdż nerw, aby uszkodzić aksony neuronów czuciowych. Zaznacz miejsce węzłem szwowym.
Zszyj nacięcie i pozwól myszy dojść do siebie.
Transfekowane konstrukty docelowe mRNA w ciałach komórek neuronów czuciowych DRG, przejściowo modulując produkcję białek w celu poprawy regeneracji aksonów czuciowych po urazie.
W celu wstrzyknięcia DRG należy załadować plazmidy DNA lub oligonukleotydy RNA do szklanej pipety kapilarnej. Następnie ostrożnie włóż końcówkę szklanej pipety kapilarnej do DRG. I stopniowo wstrzykiwać 1 mikrolitr roztworu plazmidów DNA lub oligonukleotydów RNA za pomocą wewnątrzkomórkowego systemu dozowania mikroiniekcji.
W celu elektroporacji delikatnie ściśnij docelowy DRG elektrodami i zastosuj 5-kwadratowe impulsy elektryczne za pomocą systemu elektroporacji. Następnie zamknij mięsień, a następnie warstwy skóry za pomocą nylonowych szwów. Dwa lub trzy dni po elektroporacji DRG znieczulij mysz dootrzewnowo, przyklej jej kończyny do tablicy korkowej i wykonaj 1-centymetrowe nacięcie 0,5 centymetra po lewej stronie wzdłuż linii środkowej.
Następnie przetnij podłużnie mięśnie, takie jak mięsień pośladkowy wielki i mięsień gruszkowaty. Następnie odsłoń odcinek nerwu kulszowego między otworem kulszowym większym a wcięciem kulszowym. Zmiażdż nerw kleszczami mikrochirurgicznymi przez 12 sekund i zaznacz miejsce zmiażdżenia nylonowym szwem epinalnym. Następnie zamknij warstwy mięśni i skóry nylonowym szwem.
Related Videos
05:40
Related Videos
9.2K Views
09:48
Related Videos
18.6K Views
10:45
Related Videos
3.8K Views
05:26
Related Videos
15.9K Views
09:41
Related Videos
16.5K Views
09:42
Related Videos
27.1K Views
02:30
Related Videos
108 Views
02:40
Related Videos
179 Views
04:38
Related Videos
389 Views
02:59
Related Videos
252 Views