Name: Obrazowanie rezonansu magnetycznego z kontrastem dynamicznym ortotopowego modelu myszy z rakiem trzustki (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-18T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 24 s
Description: Poznaj zastosowanie dynamicznego rezonansu magnetycznego z kontrastem DCE-MRI do obrazowania mikrokrążenia w ortotopowych modelach raka trzustki u myszy. Ta metoda pozwala ocenić odpowiedź naczyniową nowotworu na terapię.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Autorzy dziękują Jeffreyowi Sellersowi za pomoc w modelowaniu ortotopowego raka trzustki u myszy. Prace te były wspierane przez Research Initiative Pilot Awards z Wydziału Radiologii UAB oraz granty NIH 2P30CA013148 i P50CA101955.

Wszystkie procedury zostały zatwierdzone przez Instytucjonalny Komitet ds. Opieki i Korzystania ze Zwierząt (Institutional Animal Care and Use Committee) na Uniwersytecie Alabama w Birmingham.
1. Ortotopowe modelowanie nowotworu trzustki u myszy
<ol>
	<li>Hodować standardowe linie komórkowe raka trzustki człowieka w pożywce Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM) uzupełnionej o 10% płodowej surowicy bydlęcej. Wszystkie hodowle utrzymywać w temperaturze 37 °C w atmosferze nawilżonej z dodatkiem 5% CO2.</li>
	<li>Użyć samic myszy z ciężkim złożonym niedoborem odporności (severe combined immunodeficient) w wieku 8-10 tygodni. Klatki z zwierzętami umieścić w cyklu 12 h światła i 12 h ciemności w temperaturze pokojowej (21 ± 2 °C) i przy 60% wilgotności.</li>
	<li>Wszystkie zwierzęta poddać znieczuleniu poprzez wentylację 2% izofluranu zmieszanego z tlenem (2 L/min) przez cały czas trwania operacji. Głębokość znieczulenia potwierdzić za pomocą odruchuu na uciśnięcie palca stopy. Umieścić zwierzęta na macie grzewczej (37 °C) w celu utrzymania temperatury ciała. Nanieść weterynaryjną maść oftalmiczną na oczy, aby zapobiec ich wysychaniu podczas znieczulenia.</li>
	<li>Usunąć sierść w lewym górnym kwadrancie brzucha każdej myszy i podać w ten obszar lek przeciwbólowy (karprofen, 5 mg/kg masy ciała podskórnie). Na odsłoniętą skórę nanieść roztwór betadyny. Przygotować autoklawowane narzędzia chirurgiczne.</li>
	<li>Wyciąć nacięcie o długości 1 cm w skórze i otrzewnej, używając prostych nożyczek irydowych. Delikatnie wypreparować trzustkę z jamy brzusznej za pomocą pęsety chirurgicznej.</li>
	<li>Wprowadzić igłę 28 G strzykawki insulinowej o pojemności 0,5 ml do ogona trzustki, a następnie powoli wstrzyknąć zawiesinę 2,5 miliona komórek raka trzustki człowieka w 30 µl DMEM. Potwierdzić powstanie niewielkiego pęcherzyka z roztworu w głowie trzustki.</li>
	<li>Delikatnie umieścić trzustkę z powrotem w jamie brzusznej za pomocą pęsety chirurgicznej. Zamknąć otrzewną i skórę w jednej warstwie za pomocą 2 przerwanym szwów Prolene 5-0, a następnie przerwać znieczulenie. Nie zwracać zwierzęcia po operacji do grupy innych zwierząt aż do pełnego wyzdrowienia. Usunąć szwy 7~10 dni po operacji.</li>
	<li>Podać kolejną dawkę leku przeciwbólowego (karprofen, 5 mg/kg masy ciała podskórnie) 24 h po operacji.</li>
	<li>Sprawdzać wielkość guza poprzez palpację miejsca operacji dwoma palcami. Guzy są zazwyczaj gęstsze i bardziej nierówne niż otaczające tkanki i organy. Zazwyczaj wyczuwalność guza pojawia się po około 1 - 2 tygodniach.</li>
	<li>Codziennie monitorować zwierzęta pod kątem objawów choroby. W przypadku wystąpienia objawów choroby (brak normalnej pielęgnacji i zachowań unikowych), zwierzęta poddawano eutanazji poprzez zwichnięcie karku w stanie znieczulenia.</li>
</ol>
2. Obrazowanie rezonansem magnetycznym
<ol>
	<li>Wykonaj badanie MRI, gdy średnica guza wyniesie około 5 – 7 mm, zazwyczaj od 2 do 4 tygodni po implantacji komórek. Użyj skanera MR przeznaczonego do obrazowania małych zwierząt lub klinicznego skanera MR wyposażonego w specjalistyczną cewkę do obrazowania małych zwierząt. 
	UWAGA: Wykorzystaliśmy skaner MR dla małych zwierząt o natężeniu 9,4T z kombinacją rezonatora/nadajnika objętościowego 1H i odbiornika z cewką powierzchniową (średnica 30 mm) (Bruker BioSpin Corp., Billerica, MA). Cewka powierzchniowa zapewnia lepszy stosunek sygnału do szumu (SNR)14.</li>
	<li>Przygotuj kontrast MRI na bazie gadolinu, aby wstrzyknąć ~0,1 – 0,2 mmol/kg każdemu zwierzęciu w ~0,1 – 0,2 ml PBS (soli fizjologicznej buforowanej fosforanem). 
	UWAGA: Użyliśmy gadoteridolu i wstrzyknęliśmy 0,2 mmol/kg w 0,15 ml PBS w czasie 15 s (0,1 ml/s).</li>
	<li>Przygotuj mikro rurkę polietylenową (długość: 7,62 mm, średnica wewnętrzna: 0,28 mm, średnica zewnętrzna: 0,64 mm). Wsuń igłę 30 G (długość 12,7 mm) do jednego końca rurki, a igłę tępą 30 G (długość 9,5 mm) do drugiego końca. Podłącz strzykawkę o pojemności 1 ml zawierającą kontrast MR do tępej igły i powoli wypchnij zawartość strzykawki, aby wypełnić całą rurkę kontrastem MR.</li>
	<li>Znieczul zwierzęta, stosując wentylację z mieszanką ~1 – 2% izofluranu z tlenem (2 L/min) podczas przygotowania i obrazowania. Głębię znieczulenia potwierdź za pomocą odruchuu zaciśnięcia palca u stopy. Na oczy nałóż weterynaryjną maść okulistyczną, aby zapobiec wysuszeniu podczas znieczulenia. Przed wprowadzeniem igły rozszerz żyłę ogonową za pomocą lampy grzewczej. Chwyć środek igły 30 G kleszczykami Kelly'ego i wprowadź ją do żyły ogonowej. Przyklej ogon i rurkę taśmą do kawałka plastiku lub tektury (szerokość 10 mm x długość 100 mm), aby utrzymać ogon w pozycji wyprostowanej.</li>
	<li>Umieść zwierzę w pozycji na plecach w podkładce dla zwierząt wyposażonej w system cyrkulacji ciepłej wody (lub ciepłego powietrza) w celu regulacji temperatury ciała podczas obrazowania. Ustaw temperaturę podkładki na 37 °C. Wprowadź rektalną sondę temperatury, aby monitorować temperaturę ciała podczas obrazowania.</li>
	<li>Umieść ortogonalnie zgiętą plastikową płytkę w obszarze jamy brzusznej. Upewnij się, że guz znajduje się za górną krawędzią płytki, a następnie lekko dociśnij płytkę (~2 mm), aby upewnić się, że guz jest przez nią przytrzymywany. Mocno przyklej płytkę do podkładki dla zwierzęcia.</li>
	<li>Przyklej przetwornik oddechowy (SA Instrument, Inc., Stony Brook, NY) w okolicy klatki piersiowej, aby monitorować oddychanie zwierzęcia podczas obrazowania. Umieść cewkę powierzchniową na górze obszaru guza i mocno przyklej ją do podkładki dla zwierzęcia. Wsuń podkładkę do skanera MR, aby umieścić obszar guza w centrum cewki objętościowej (średnica wewnętrzna: 72 mm).</li>
	<li>Wykonaj dopasowanie i strojenie zarówno dla odbiornika, jak i nadajnika, a następnie przeprowadź shimming.</li>
	<li>Rozpocznij od anatomicznej sekwencji MR w celu zlokalizowania guza. Użyj sekwencji turbo spin-echo ważonej w obrazach T2 (T2W), aby uzyskać obrazy osiowe z następującymi parametrami akwizycji: czas repetycji (TR)/czas echa (TE) = 3 000/34 msec, macierz 128 x 128, pole widzenia (FOV) 30 x 30 mm, liczba uśrednień = 1, długość pociągu ech = 4 oraz 20 sąsiednich warstw o grubości 1 mm w trybie przeplatanym, aby objąć cały obszar guza (całkowity czas skanowania: 1,6 min). 
	UWAGA: Ponieważ ortotopowe guzy trzustki są trudniejsze do zlokalizowania niż guzy podskórne, konwencjonalne obrazy lokalizacyjne o niższej rozdzielczości mogą być nieprzydatne.</li>
	<li>Nabyj obrazy ważone w T1 (T1W) z różnymi kątami przechyłu w celu uzyskania mapy T1. W tym celu zastosuj podejście gradient echo z wieloma kątami przechyłu (multiflip angle) z następującymi parametrami: czas repetycji (TR)/czas echa (TE) = 115/3 msec, macierz 128 x 128, pole widzenia 30 x 30 mm, liczba uśrednień = 4, ~5 – 7 sąsiednich warstw o grubości 1 mm w trybie przeplatanym, aby objąć obszar guza, oraz siedem kątów przechyłu: 10, 20, 30, 40, 50, 60 i 70 (całkowity czas skanowania dla jednego kąta przechyłu: 1 min). 
	UWAGA: Podejście z wieloma kątami przechyłu jest efektywne tylko przy wysokiej homogeniczności pola B1. W przeciwnym razie mapy T1 można uzyskać za pomocą podejścia z wieloma TR15.</li>
	<li>Nabyj obrazy T1W przed i po wstrzyknięciu kontrastu MR na bazie gadolinu. Użyj tych samych parametrów akwizycji i geometrii co w mapowaniu T1, ale ze stałym kątem przechyłu 30. Zastosuj kodowanie liniowe, aby zapewnić stan stacjonarny podczas uzyskiwania centrum przestrzeni k, szczególnie przy krótkim TR i niskim kącie przechyłu. Nabyj 5 obrazów bazowych przed wstrzyknięciem kontrastu. Następnie nabyj 40 obrazów po wstrzyknięciu kontrastu (całkowity czas skanowania: 45 min). Użyj pompy strzykawkowej do wstrzykiwania środka kontrastowego ze stałą prędkością (0,01 ml/s).</li>
	<li>Ciągle monitoruj oddychanie zwierzęcia i dostosuj stężenie izofluranu, aby utrzymać częstotliwość oddechów na poziomie 50 – 100 na minutę. Monitoruj temperaturę ciała zwierzęcia przez cały czas trwania obrazowania.</li>
	<li>Po zakończeniu badania DCE-MRI wyjmij igłę oraz pozostałe sondy i umieść zwierzę w pustej klatce wyłożonej ręcznikami papierowymi. Delikatnie masuj dolną część jamy brzusznej. Klatkę należy ustawić częściowo pod lampą grzewczą, aby zwierzę mogło przemieszczać się w obrębie gradientu temperatury podczas wybudzania. Nie pozostawiaj zwierzęcia bez nadzoru, dopóki nie odzyska wystarczającej świadomości, aby utrzymać pozycję sternalną.</li>
</ol>
3. Przetwarzanie i analiza obrazu
<ol>
	<li>Segmentuj obszar guza na obrazach T2W. Na obrazach T2W intensywność sygnału w obszarze guza jest wyższa niż w tkankach otaczających, dzięki czemu granicę guza można wyznaczyć ręcznie. 
	UWAGA: Można stosować techniki segmentacji półautomatycznej, takie jak globalne progowanie lub kontury aktywne16,17, jednak należy skorygować nierównomierną intensywność tła, szczególnie w przypadku zastosowania cewki powierzchniowej.</li>
	<li>Utwórz mapy T1 i gęstości protonów. Na obrazach T1W nabytych za pomocą sekwencji echo gradientowego, przy założeniu, że czas echa (TE) jest znacznie krótszy niż wartość T2*, wartość piksela jest określana przez 
	<img alt="Równanie intensywności sygnału S(θ) w MRI, uwzględniające TR i T1, ilustrujące magnetyzację jądra." fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq1.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 1"> 
	gdzie S0 to gęstość protonów, T1 to stała czasu relaksacji T1, TR to czas repetycji, a θ to kąt odchylenia. Równanie (1) można zapisać w formie 
	<img alt="Równanie wykładniczego zaniku, Y=exp(-TR/T1)X+S0(1-exp(-TR/T1)), powiązane z intensywnością sygnału MRI." fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq2.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 2"> 
	gdy S(θ)/sinθ zostanie zastąpione przez Y, a S(θ)/tanθ zostanie zastąpione przez X. Równanie (2) jest równaniem liniowym, a jego nachylenie i punkt przecięcia mogą posłużyć odpowiednio do wyznaczenia wartości T1 i S0.</li>
	<li>Oblicz stężenie środka kontrastowego MR na obrazach DCE-MR. Po wstrzyknięciu środka kontrastowego MR na bazie gadolinu stała czasu relaksacji T1 zmienia się w czasie. Zatem równanie (1) można zapisać jako 
	<img alt="Równanie intensywności sygnału MRI, formuła S(t), schemat analizy czasu relaksacji." fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq3.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 3"> 
	T1(t) jest powiązane ze stężeniem środka kontrastowego MR, C(t), w następujący sposób, 
	<img alt="Równanie kinetyki reakcji; formuła 1/T(t)=1/T(0)+r1C(t); koncepcja matematyczna." fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq4.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 4"> 
	gdzie r1 to relaksywność podłużna środka kontrastowego MR. Łącząc równania (3) i (4), stężenie środka kontrastowego MR określa się za pomocą 
	<img alt="Równanie podatności pełzania; formuła obejmująca funkcje sinus i cosinus; stosowane w nauce o materiałach." fo:content-width="3in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq5.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 5"></li>
	<li>Ilościowo określ parametry farmakokinetyczne środka kontrastowego MR. Cp(t) przedstawia stężenie środka kontrastowego MR w osoczu krwi w czasie t po rozpoczęciu wstrzykiwania kontrastu. Cp(t) nazywa się tętniczą funkcją wejściową (AIF). Jeśli AIF jest dostępna, parametry farmakokinetyczne środka kontrastowego MR można obliczyć za pomocą 
	<img alt="Schemat równania transportu dla analizy stężenia w badaniach dyfuzji chemicznej." fo:content-width="4in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq6.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 6"> 
	gdzie Ct(t) to stężenie środka kontrastowego MR w tkance docelowej, vp to frakcyjna objętość osocza krwi, ve to frakcyjna objętość zewnątrz혈관owa zewnątrzkomórkowa, a Ktrans to stała transferu objętości. Stała szybkości przepływu, kep, jest równa Ktrans podzielonej przez ve. Jeśli AIF nie jest dostępna, można zamiast niej zastosować model regionu referencyjnego18,19. Model regionu referencyjnego opiera się na modelu Kety ograniczonym przepływem20 i wykorzystuje stężenie kontrastu w regionie referencyjnym, aby wyeliminować potrzebę stosowania AIF, zgodnie z poniższym 
	<img alt="Równanie różniczkowe; dynamika \(C_{ROI}(t)\); model matematyczny; schemat procesu." fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/52641/52641eq7.jpg" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="Równanie 7"> 
	gdzie Ct,ROI(t), Ktrans,ROI oraz ve,ROI to odpowiednio stężenie kontrastu, stała transferu objętości i frakcyjna objętość zewnątrz혈관owa-zewnątrzkomórkowa w obszarze zainteresowania (ROI), natomiast Ct,RR(t), Ktrans,RR i ve,RR to te same parametry w regionie referencyjnym. Jako region referencyjny często wybiera się mięśnie przykręgosłupowe, a wartość ve,RR w mięśniach przykręgosłupowych myszy przyjmuje się za stałą i równą 0,08 21. W badaniu zastosowano model regionu referencyjnego.</li>
</ol>

<ol><li>Ergul, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+multifocality+and+axillary+nodal+involvement+in+early-stage+breast+cancer+patients+using+18F-FDG+PET%2FCT+compared+to+contrast-enhanced+and+diffusion-weighted+magnetic+resonance+imaging+and+sentinel+node+biopsy%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Radiol%22%5BJournal%5D)">Assessment of multifocality and axillary nodal involvement in early-stage breast cancer patients using 18F-FDG PET/CT compared to contrast-enhanced and diffusion-weighted magnetic resonance imaging and sentinel node biopsy.</a> Acta Radiol. , (2014).</li>
<li>Park, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+early+response+to+concurrent+chemoradiotherapy+in+cervical+cancer%3A+value+of+diffusion-weighted+and+dynamic+contrast-enhanced+MR+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Assessment of early response to concurrent chemoradiotherapy in cervical cancer: value of diffusion-weighted and dynamic contrast-enhanced MR imaging.</a> Magn Reson Imaging. , (2014).</li>
<li>Nguyen, H. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prediction+of+chemotherapeutic+response+in+bladder+cancer+using+K-means+clustering+of+dynamic+contrast-enhanced+%28DCE%29-MRI+pharmacokinetic+parameters%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Prediction of chemotherapeutic response in bladder cancer using K-means clustering of dynamic contrast-enhanced (DCE)-MRI pharmacokinetic parameters.</a> J Magn Reson Imaging. 10, (2014).</li>
<li>Teo, Q. Q., Thng, C. H., Koh, T. S., Ng, Q. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+Contrast-enhanced+Magnetic+Resonance+Imaging%3A+Applications+in+Oncology%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Oncol+%28R+Coll+Radiol%29%22%5BJournal%5D)">Dynamic Contrast-enhanced Magnetic Resonance Imaging: Applications in Oncology.</a> Clin Oncol (R Coll Radiol). , (2014).</li>
<li>Zhang, X., Pagel, M. D., Baker, A. F., Gillies, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reproducibility+of+magnetic+resonance+perfusion+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Reproducibility of magnetic resonance perfusion imaging.</a> PLoS One. 9 (2), e89797(2014).</li>
<li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pancreatic+adenocarcinoma%3A+a+pilot+study+of+quantitative+perfusion+and+diffusion-weighted+breath-hold+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Abdominal+imaging%22%5BJournal%5D)">Pancreatic adenocarcinoma: a pilot study of quantitative perfusion and diffusion-weighted breath-hold magnetic resonance imaging.</a> Abdominal imaging. , (2014).</li>
<li>Derosier, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Combination+Treatment+with+TRA-8+Anti+Death+Receptor+5+Antibody+and+CPT-11+Induces+Tumor+Regression+in+an+Orthotopic+Model+of+Pancreatic+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Combination Treatment with TRA-8 Anti Death Receptor 5 Antibody and CPT-11 Induces Tumor Regression in an Orthotopic Model of Pancreatic Cancer.</a> Clin Cancer Res. 13 (18), 5535s-5543s (2007).</li>
<li>Derosier, L. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((TRA-8+anti-DR5+monoclonal+antibody+and+gemcitabine+induce+apoptosis+and+inhibit+radiologically+validated+orthotopic+pancreatic+tumor+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Ther%22%5BJournal%5D)">TRA-8 anti-DR5 monoclonal antibody and gemcitabine induce apoptosis and inhibit radiologically validated orthotopic pancreatic tumor growth.</a> Mol Cancer Ther. 6 (12), 3198-3207 (2007).</li>
<li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+therapy+evaluation+of+combined+anti-death+receptor+5+antibody+and+gemcitabine+in+orthotopic+pancreatic+tumor+xenografts+by+diffusion-weighted+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Early therapy evaluation of combined anti-death receptor 5 antibody and gemcitabine in orthotopic pancreatic tumor xenografts by diffusion-weighted magnetic resonance imaging.</a> Cancer Res. 68 (20), 8369-8376 (2008).</li>
<li>Klein, S., Staring, M., Murphy, K., Viergever, M. A., Pluim, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((elastix%3A+a+toolbox+for+intensity-based+medical+image+registration%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Med+Imaging%22%5BJournal%5D)">elastix: a toolbox for intensity-based medical image registration.</a> IEEE Trans Med Imaging. 29 (1), 196-205 (2010).</li>
<li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+therapy+evaluation+of+combined+cetuximab+and+irinotecan+in+orthotopic+pancreatic+tumor+xenografts+by+dynamic+contrast-enhanced+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Imaging%22%5BJournal%5D)">Early therapy evaluation of combined cetuximab and irinotecan in orthotopic pancreatic tumor xenografts by dynamic contrast-enhanced magnetic resonance imaging.</a> Mol Imaging. 10 (3), 153-167 (2011).</li>
<li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antagonistic+effects+of+anti-EMMPRIN+antibody+when+combined+with+chemotherapy+against+hypovascular+pancreatic+cancers%5BTitle%5D)+AND+%22M+Mol+Imaging+Biol%22%5BJournal%5D)">Antagonistic effects of anti-EMMPRIN antibody when combined with chemotherapy against hypovascular pancreatic cancers.</a> M Mol Imaging Biol. 16 (1), 85-94 (2014).</li>
<li>Kim, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dual+combination+therapy+targeting+DR5+and+EMMPRIN+in+pancreatic+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cancer+Ther%22%5BJournal%5D)">Dual combination therapy targeting DR5 and EMMPRIN in pancreatic adenocarcinoma.</a> Mol Cancer Ther. 11 (2), 405-415 (2012).</li>
<li>Moyher, S. E., Vigneron, D. B., Nelson, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Surface+coil+MR+imaging+of+the+human+brain+with+an+analytic+reception+profile+correction%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Surface coil MR imaging of the human brain with an analytic reception profile correction.</a> J Magn Reson Imaging. 5 (2), 139-144 (1995).</li>
<li>Voigt, T., Nehrke, K., Doessel, O., Katscher, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((T1+corrected+B1+mapping+using+multi-TR+gradient+echo+sequences%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">T1 corrected B1 mapping using multi-TR gradient echo sequences.</a> Magn Reson Med. 64 (3), 725-733 (2010).</li>
<li>Liu, H., Liu, Y., Zhao, Z., Zhang, L., Qiu, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+background+distribution-based+active+contour+model+for+three-dimensional+lesion+segmentation+in+breast+DCE-MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Medical+physics%22%5BJournal%5D)">A new background distribution-based active contour model for three-dimensional lesion segmentation in breast DCE-MRI.</a> Medical physics. 41 (8), 082303(2014).</li>
<li>Sarkar, S., Das, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilevel+image+thresholding+based+on+2D+histogram+and+maximum+Tsallis+entropy--a+differential+evolution+approach%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Image+Process%22%5BJournal%5D)">Multilevel image thresholding based on 2D histogram and maximum Tsallis entropy--a differential evolution approach.</a> IEEE Trans Image Process. 22 (12), 4788-4797 (2013).</li>
<li>Yankeelov, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+pharmacokinetic+analysis+of+DCE-MRI+data+without+an+arterial+input+function%3A+a+reference+region+model%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Quantitative pharmacokinetic analysis of DCE-MRI data without an arterial input function: a reference region model.</a> Magn Reson Imaging. 23 (4), 519-529 (2005).</li>
<li>Cardenas-Rodriguez, J., Howison, C. M., Pagel, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+linear+algorithm+of+the+reference+region+model+for+DCE-MRI+is+robust+and+relaxes+requirements+for+temporal+resolution%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">A linear algorithm of the reference region model for DCE-MRI is robust and relaxes requirements for temporal resolution.</a> Magn Reson Imaging. 31 (4), 497-507 (2013).</li>
<li>Tofts, P. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimating+kinetic+parameters+from+dynamic+contrast-enhanced+T%281%29-weighted+MRI+of+a+diffusable+tracer%3A+standardized+quantities+and+symbols%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson+Imaging%22%5BJournal%5D)">Estimating kinetic parameters from dynamic contrast-enhanced T(1)-weighted MRI of a diffusable tracer: standardized quantities and symbols.</a> J Magn Reson Imaging. 10 (3), 223-232 (1999).</li>
<li>Yankeelov, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+a+reference+region+model+with+direct+measurement+of+an+AIF+in+the+analysis+of+DCE-MRI+data%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Comparison of a reference region model with direct measurement of an AIF in the analysis of DCE-MRI data.</a> Magn Reson Med. 57 (2), 353-361 (2007).</li>
<li>Cao, R. Y., Amand, T., Ford, M. D., Piomelli, U., Funk, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Murine+Angiotensin+II-Induced+Abdominal+Aortic+Aneurysm+Model%3A+Rupture+Risk+and+Inflammatory+Progression+Patterns%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">The Murine Angiotensin II-Induced Abdominal Aortic Aneurysm Model: Rupture Risk and Inflammatory Progression Patterns.</a> Front Pharmacol. 1 (9), (2010).</li>
<li>Parker, G. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimentally-derived+functional+form+for+a+population-averaged+high-temporal-resolution+arterial+input+function+for+dynamic+contrast-enhanced+MRI%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Experimentally-derived functional form for a population-averaged high-temporal-resolution arterial input function for dynamic contrast-enhanced MRI.</a> Magn Reson Med. 56 (5), 993-1000 (2006).</li>
<li>Tseng, W., Leong, X., Engleman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orthotopic+mouse+model+of+colorectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Orthotopic mouse model of colorectal cancer.</a> J Vis Exp. (10), 484(2007).</li>
<li>Bhullar, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+true+orthotopic+gastric+cancer+murine+model+using+electrocoagulation%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Surg%22%5BJournal%5D)">A true orthotopic gastric cancer murine model using electrocoagulation.</a> J Am Coll Surg. 217 (1), 64-70 (2013).</li>
</ol>

Autorzy nie mają żadnych konfliktów interesów, które mogliby zadeklarować.

Wprowadziliśmy szczegółowe metody ortotopowego modelowania guza trzustki na myszach z niedoborem odporności, DCE-MRI guzów jamy brzusznej u myszy oraz ilościowe określenie jego parametrów kinetycznych. W ortotopowym modelowaniu guza trzustki należy zachować ostrożność podczas wprowadzania igły do ogona trzustki. Jeśli się powiedzie, komórki zostaną przeniesione do głowy trzustki, tworząc mały pęcherzyk. Podczas nakładania ortogonalnie wygiętej plastikowej deski ważne jest, aby potwierdzić, że guz znajduje się poniżej gór...

Ogólnym celem tej metody jest zastosowanie dynamicznego rezonansu magnetycznego wzmocnionego kontrastem (DCE-MRI) dla ortotopowych ksenoprzeszczepów guza trzustki u myszy. DCE-MRI to nieinwazyjna metoda oceny mikrokrążenia w tkance docelowej poprzez monitorowanie zmiany kontrastu MR w określonym czasie po wstrzyknięciu. DCE-MRI jest wykorzystywany do diagnozowania nowotworów złośliwych i oceny odpowiedzi guza na różne terapie1-4. Ilościowe DCE-MRI wykazało wysoką odtwarzalność5. Aby określić ilościowo parametry farmakokinetyczne środka kontrastowego MR w tkance docelowej, wszystkie obrazy DCE-MR uzyskane w różnych punktach czasowych i mapa T1 uzyskane przed wstrzyknięciem kontrastu muszą być zarejestrowane6. Jednak ze względu na ruchy oddechowe i perystaltyczne w okolicy brzucha, ilościowe DCE-MRI ma ograniczone zastosowanie w przypadku nowotworów przewodu pokarmowego.
Modele ortotopowych guzów trzustki zostały wykorzystane do oceny odpowiedzi guza trzustki po terapiach biologicznych i chemioterapii7,8. Ortotopowe modele guzów są uważane za lepsze od konwencjonalnych modeli podskórnych, ponieważ mikrośrodowisko w pierwotnym miejscu guza jest odbijane, a tym samym można dokładniej przewidzieć odpowiedź guza człowieka na terapię. Jednak trzustka myszy znajduje się w lewym górnym kwadrancie jamy brzusznej, więc ilościowe DCE-MRI ksenoprzeszczepów ortotopowego guza trzustki u myszy nie zostało łatwo wdrożone.
Ustaliliśmy protokół DCE-MRI guzów jamy brzusznej u myszy, naprawiając guzy za pomocą ortogonalnie wygiętej plastikowej deski, aby zapobiec przenoszeniu ruchu z obszaru klatki piersiowej9. Nacisk wywierany przez tę deskę był zlokalizowany w okolicy brzucha i nie spowodował trudności w oddychaniu. Technika automatycznej korejestracji obrazu została zwalidowana pod kątem DCE-MRI narządów jamy brzusznej w trybie swobodnego oddychania, ale działa skutecznie tylko wtedy, gdy obszary docelowe poruszają się powoli i regularnie10. Częstość oddechów zwierząt jest zmienna podczas obrazowania, dlatego konieczne będzie fizyczne ograniczenie w okolicy brzucha, aby uzyskać wiarygodne parametry farmakokinetyczne w ortotopowych modelach mysich guzów trzustki. Udało nam się określić ilościowo parametry farmakokinetyczne środka kontrastowego MR w ortotopowych ksenoprzeszczepach guza trzustki przy użyciu ortogonalnie wygiętej płytki z tworzywa sztucznego w DCE-MRI11-13. W tym miejscu przedstawiono szczegółową procedurę ortotopowego modelowania guza trzustki, DCE-MRI ksenoprzeszczepów guza u myszy oraz ilościowe określenie parametrów farmakokinetycznych .

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td>11965-118</td><td></td></tr><tr><td>Surowica bydlęca płodu</td><td>Harlan Laboratories</td><td>BT-9501</td><td></td></tr><tr><td>Produkty Betadine</td><td>Purdue</td><td>67618-153-01</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Nici prolenowe</td><td>Skaner MR Ethicon</td><td>8720H</td><td></td></tr><tr><td>9.4T</td><td>Bruker Biospin Corporation</td><td>BioSpec 94/20 USR</td><td></td></tr><tr><td>Gadoteridol</td><td>Bracco Diagnostics Inc</td><td>NDC 0270-1111-03</td><td></td></tr><tr><td>Rurka z mikropolietylenu</td><td>Strategic Applications, Inc</td><td>#PE-10-25</td><td></td></tr><tr><td>Igła 30 G z końcówką</td><td>Zastosowania strategiczne, Inc</td><td>89134-194</td><td></td></tr><tr><td>System monitorowania i bramkowania</td><td>SA instruments, Inc</td><td>Model 1030</td><td>Jest to system kompatybilny z MR do jednoczesnego pomiaru temperatury ciała małych zwierząt.</td></tr><tr><td>Pompa strzykawkowa</td><td>New Era Pump Systems, Inc.</td><td>NE-1600</td><td></td></tr></tbody></table>

obrazowanie rezonansu magnetycznego z kontrastem dynamicznym ortotopowego modelu myszy z rakiem trzustki

Dynamic Contrast Enhanced Magnetic Resonance Imaging of an Orthotopic Pancreatic Cancer Mouse Model

Dynamiczne obrazowanie rezonansu magnetycznego wzmocnionego kontrastem (DCE-MRI) było ograniczone do ksenoprzeszczepów ortotopowych guzów trzustki z powodu silnego artefaktu ruchu oddechowego w okolicy brzucha. Ortotopowe modele guzów mają przewagę nad modelami podskórnymi, ponieważ mogą odzwierciedlać pierwotne mikrośrodowisko guza wpływające na dopływ krwi, neowaskularyzację i inwazję komórek nowotworowych. Niedawno opracowaliśmy protokół DCE-MRI ksenoprzeszczepów ortotopowego guza trzustki w modelach mysich, zabezpieczając guzy ortogonalnie wygiętą płytką z tworzywa sztucznego, aby zapobiec przenoszeniu ruchu z okolicy klatki piersiowej podczas obrazowania. Ucisk tej deski był zlokalizowany w okolicy brzucha i nie spowodował trudności w oddychaniu zwierząt. W artykule przedstawiono szczegółową procedurę ortotopowego modelowania guza trzustki przy użyciu małych zwierząt i DCE-MRI ksenoprzeszczepów guza. Przedstawiono również metodę kwantyfikacji parametrów farmakokinetycznych w DCE-MRI. Procedura opisana w tym artykule pomoże badaczom w zastosowaniu DCE-MRI w ortotopowych modelach myszy raka przewodu pokarmowego.

Ludzkie komórki guza trzustki pomyślnie rosną w trzustce myszy, tworząc guz lity. Rycina 1 przedstawia fotografie (A) prawidłowej trzustki, do której wstrzyknięto zawiesinę komórek nowotworowych, oraz (B) reprezentatywnej myszy z ortotopowym ksenoprzeszczepem guza trzustki (MIA PaCa-2). Guz znajduje się w lewej górnej ćwiartce jamy brzusznej, obok śledziony. Zazwyczaj po implantacji komórek guzy rosną do średnicy 5 - 7 mm w ciągu 2 - 4 tygodni.
Ruchy ortotopowych ksenograftów ...

Celem tego protokołu jest zastosowanie dynamicznego rezonansu magnetycznego wzmocnionego kontrastem (DCE-MRI) dla ortotopowych ksenoprzeszczepów guza trzustki u myszy. DCE-MRI jest nieinwazyjną metodą analizy mikrokrążenia w tkance docelowej i przydatną do oceny odpowiedzi naczyniowej w guzie po nowej terapii.

Obrazowanie rezonansu magnetycznego z kontrastem dynamicznym ortotopowego modelu myszy z rakiem trzustki

Dynamic contrast enhanced magnetic resonance imaging (DCE-MRI) has been limitedly used for orthotopic pancreatic tumor xenografts due to severe ...

Ogólnym celem niniejszej procedury jest zastosowanie dynamicznego obrazowania rezonansem magnetycznym z kontrastem (D-C-E-M-R-I) w przypadku ORTOTOPICZNYCH ksenoprzeszczepów guzów trzustki u myszy. Jest to realizowane poprzez najpierw usunięcie trzustki z jamy brzusznej, a następnie powolną infuzję ludzkich komórek raka trzustki do ogona trzustki. Następnie trzustka jest przywracana do jamy brzusznej, a gdy guz osiągnie średnicę od pięciu do siedmiu milimetrów, na wierzchu masy tkankowej humas umieszcza się plastikową płytkę oraz cewkę powierzchniową.Ostatecznie mikrokrążenie ksenoprzeszczepu guza można zwizualizować za pomocą D-C-E-M-R-I. Główną zaletą tej techniki w porównaniu z konwencjonalnymi metodami, takimi jak D-C-M-R-I stosowane przy podskórnych ksenoprzeszczepach guzów, jest to, że ortotopowe modele guzów trzustki umożliwiają ocenę mikrośrodowiska guza pierwotnego, w tym unaczynienia neowaskularnego oraz inwazji komórek nowotworowych. Procedura zostanie zaprezentowana przez Sharon Samuel, pracownika naukowego, oraz Marie Warren, technikę laboratoryjną, obie z naszego laboratorium.Zacznij od umieszczenia znieczulonej ośmiotygodniowej samicy myszy morskiej linii skid valve na podgrzewaczce, po uprzednim potwierdzeniu odpowiedniego poziomu sedacji poprzez test uścisku palca stopy. Następnie usuń sierść z lewego górnego kwadrantu brzucha zwierzęcia i podaj lek przeciwbólowy podskórnie, używając prostych nożyczek tęczówkowych. Wykonaj nacięcie skóry i otrzewnej o długości 1 cm, a następnie delikatnie wyciągnij trzustkę przez nacięcie.Następnie za pomocą strzykawki insulinowej o objętości 0,5 mililitra, wyposażonej w igłę o rozmiarze 28 G, należy powoli wstrzyknąć 2,5 miliona komórek raka trzustki człowieka w 30 µL DMEM do ogona trzustki. Należy potwierdzić, że pod wpływem roztworu w głowie trzustki powstał mały pęcherzyk. Następnie ostrożnie umieścić trzustkę z powrotem w jamie brzusznej i zamknąć otrzewną oraz skórę jednym warstwowym szwem za pomocą dwóch przerwanym szwów z Prolene 5-0.Codziennie sprawdzaj wielkość guza, badając palpacyjnie obszar operacyjny dwoma palcami. Guzy są zazwyczaj gęstsze i bardziej nierówne w dotyku niż otaczające tkanki i organy. Codziennie monitoruj również zwierzęta pod kątem objawów choroby.Gdy guz osiągnie średnicę od pięciu do siedmiu milimetrów, włóż ostrą igłę 30 G do jednego końca mikro rurki polietylenowej, a tępą końcówkę igły 30 G do drugiego. Podłącz strzykawkę o pojemności jednego mililitra zawierającą świeżo przygotowany kontrast do MRI do tępej końcówki igły i powoli wciśnij tłok, aby wypełnić całą rurkę. Następnie rozszerz żyły ogonowe zwierzęcia pod lampą grzewczą i użyj kleszczy Kelly’ego, aby uchwycić trzon ostrej igły 30 G.Ostrożnie wprowadź igłę do jednej z rozszerzonych żył ogonowych, a następnie przymocuj taśmą ogon oraz rurkę do kawałka plastiku o wymiarach 10 na 100 milimetrów, aby utrzymać ogon w linii prostej. Następnie umieść mysz w pozycji grzbietnej w legowisku dla zwierząt wyposażonym w krążącą ciepłą wodę, aby regulować temperaturę ciała zwierzęcia podczas obrazowania. W tym samym czasie wprowadź rektalną sondę temperatury.Gdy zwierzę znajduje się w odpowiedniej pozycji, przyłóż prostopadle zgiętą plastikową płytkę do obszaru brzusznego, upewniając się, że guz znajduje się za górnym końcem płytki, a następnie przesuń płytkę w dół o około dwa milimetry, aby mieć pewność, że guz jest mocno unieruchomiony. Przymocuj płytkę do podłoża zwierzęcia za pomocą taśmy. Następnie przyklej przetwornik podkładki oddechowej do obszaru klatki piersiowej, aby monitorować oddychanie zwierzęcia podczas obrazowania. Teraz umieść cewkę powierzchniową na górze obszaru guza, mocno przytwierdzając ją taśmą do podłoża zwierzęcia.Następnie wsuń posłanie dla zwierzęcia do skanera MR, aż obszar guza znajdzie się w centrum cewki objętościowej. Wykonaj obrazowanie MR w czasie T2, aby zlokalizować guz, a następnie obrazowanie MR w czasie T1 z różnymi kątami odchylenia w celu mapowania T1. Następnie, w przypadku obrazowania D-C-E-M-R-I, wykonaj obrazowanie MR w czasie T1 ze stałym kątem odchylenia w sposób ciągły przed, w trakcie i po wstrzyknięciu kontrastu MR na bazie gadolinu.Podczas obrazowania należy stale monitorować oddech oraz temperaturę ciała zwierzęcia. Po zakończeniu obrazowania należy usunąć igłę i pozostałe sondy, a następnie umieścić zwierzę pod lampą grzewczą, delikatnie masując obszar dolnej części brzucha, aż do momentu przebudzenia zwierzęcia. Metoda D-C-E-M-R-I może być skutecznie zastosowana w przypadku ortotopowych ksenoprzeszczepów guzów trzustki.Korzystając z modelu obszaru referencyjnego, niniejsze mapy kontrastu przedstawiają obszar guza w skali kolorystycznej na jedną minutę przed wstrzyknięciem środka kontrastowego do MR, a także w piątej i czterdziestej minucie po wstrzyknięciu, nałożone na obrazy MR ważone T2 w skali szarości. Mysz w tym doświadczeniu posiadała ortotopowy ksenoprzeszczep ludzkiego guza trzustki.Krzywe wzmocnienia kontrastowego zostały uśrednione z obszaru guza oraz obszaru mięśni przykręgosłupowych. Mapy kts i KEP dla guza obrazują szybkość napływu i wypłukiwania środka kontrastowego. Podczas przeprowadzania procedury TCMI należy upewnić się, że guz znajduje się za górną krawędzią płyty.

dynamic-contrast-enhanced-magnetic-resonance-imaging-an-orthotopic

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Dynamiczne wzmocnione kontrastowo obrazowanie rezonansem magnetycznym ortotopowego modelu mysiego raka trzustki

Film wyjaśnia krokową metodę chirurgiczną do ortotopowego wszczepienia fragmentu guza od dawcy nowotworowego do trzustki myszy z nienowotworowym biorcą w celu rozwoju raka trzustki. Ortotopowo wszczepiony PDAC może dokładniej uchwycić mikrośrodowisko tkanek ludzkiego raka trzustki niż konwencjonalne modele podskórne (SC).

Ortotopowy przeszczep guza homograftu: technika generowania mysich modeli guza trzustki

Ten film opisuje technikę DCE-MRI dla ortotropowych ksenoprzeszczepów guza trzustki u myszy. DCE-MRI to nieinwazyjna metoda analizy mikrokrążenia w tkance docelowej i przydatna do oceny odpowiedzi naczyniowej w guzie po nowej terapii. Metoda ta pomoże badaczom w zastosowaniu DCE-MRI do ortotopowych mysich modeli raka przewodu pokarmowego.

DCE-MRI ortotopowych ksenoprzeszczepów guza trzustki: metoda oceny mikrokrążenia w docelowej tkance nowotworowej

Ten film demonstruje ortotopowy model raka trzustki, który wykorzystuje Matrigel do miejscowego dostarczania komórek i obrazowania bioluminescencji in vivo do nieinwazyjnego monitorowania progresji guza. Model ortotopowy jest odpowiedni zarówno dla modeli syngenicznych, jak i ksenoprzeszczepów i może być wykorzystany w badaniach przedklinicznych w celu zbadania wpływu nowych terapii przeciwnowotworowych na wzrost pierwotnego guza trzustki i przerzuty.

Bioluminescencyjny ortotopowy model myszy raka trzustki: nieinwazyjna technika monitorowania progresji raka u myszy

Lepsze zrozumienie biologii raka trzustki jest niezwykle potrzebne, aby umożliwić opracowanie lepszych opcji terapeutycznych w leczeniu raka trzustki. Aby odpowiedzieć na tę potrzebę, demonstrujemy ortotopowy model raka trzustki, który umożliwia nieinwazyjne monitorowanie progresji raka za pomocą obrazowania bioluminescencyjnego in vivo.

Bioluminescencyjny ortotopowy model progresji raka trzustki

Procedura ortotopowego wszczepienia komórek raka trzustki z ekspresją białka zielonej fluorescencji (PANC-1 GFP) do trzustki myszy Balb-c Ola Hsd-Fox1nu w celu oceny progresji guza i przerzutów jest przedstawiona tutaj.

Fluorescencyjny ortotopowy model raka trzustki u myszy

Ten artykuł opisuje wykorzystanie ultradźwięków o wysokiej rozdzielczości u genetycznie modyfikowanych myszy z rakiem trzustki. Podstawowym celem jest dostarczenie szczegółowej instrukcji wykrywania i oceny endogennych nowotworów trzustki.

Wykorzystanie ultradźwięków o wysokiej rozdzielczości do monitorowania początku i wzrostu guza w genetycznie modyfikowanych modelach raka trzustki

Opisujemy protokół implantacji pod kontrolą ultrasonograficzną linii komórkowych rdzeniakoraka przewodowego trzustki pochodzących od myszy bezpośrednio do natywnego miejsca guza. Takie podejście spowodowało guzy trzustki wykrywalne za pomocą skanowania ultrasonograficznego w ciągu 2-4 tygodni od wstrzyknięcia i znacznie zmniejszyło odsetek wysiewu komórek nowotworowych na ścianie otrzewnej w porównaniu z chirurgiczną implantacją ortotopową.

Ortotopowa implantacja mysiego gruczolakoraka przewodowego trzustki pod kontrolą USG

W kontekście klinicznym, pacjenci z zlokalizowanym rakiem trzustki zostaną poddani pankreatektomii, a następnie leczeniu uzupełniającemu. Przedstawiony tutaj protokół ma na celu ustanowienie bezpiecznej i skutecznej metody modelowania tego scenariusza klinicznego u nagich myszy, poprzez ortotopową implantację raka trzustki, a następnie dystalną pankreatektomię i splenektomię.

Ortotopowy resekcyjny mysi model raka trzustki

Przedstawiamy protokół generowania minimalnie inwazyjnego modelu ortotopowego raka trzustki poprzez wstrzykiwanie ludzkich komórek raka trzustki pod kontrolą ultradźwięków i późniejsze monitorowanie wzrostu guza in vivo za pomocą obrazowania ultradźwiękowego.

Wytwarzanie ortotopowego ksenoprzeszczepu komórek raka trzustki za pomocą iniekcji pod kontrolą ultradźwięków

Syngeneic mysie ortotopowe alloprzeszczepy gruczolakoraka przewodowego trzustki (PDAC) podsumowują biologię, fenotypy i reakcje terapeutyczne podtypów choroby. Ze względu na szybką, powtarzalną progresję nowotworu są szeroko stosowane w badaniach przedklinicznych. Tutaj pokazujemy powszechne praktyki generowania tych modeli, wstrzykiwania syngenicznych mysich kultur PDAC do trzustki.

Syngeniczne ortotopowe alloprzeszczepy myszy do modelowania raka trzustki

Protokół ten wykorzystuje wielokomorowe łóżko do równoległego rezonansu magnetycznego (MRI) do czterech zwierząt do wykrywania guzów gruczolakoraka trzustki w genetycznie modyfikowanych modelach myszy. Ten protokół MRI wielozwierzęcy jest szybki i opłacalny w wykrywaniu i pomiarze guzów, ułatwiając selekcję zwierząt do badań przedklinicznych oraz podłużne monitorowanie wzrostu guzów.

Wielozwierzęce obrazowanie rezonansu magnetycznego do pomiarów guza w myszych modelach raka trzustki

Poznaj zastosowanie dynamicznego rezonansu magnetycznego z kontrastem DCE-MRI do obrazowania mikrokrążenia w ortotopowych modelach raka trzustki u myszy. Ta metoda pozwala ocenić odpowiedź naczyniową nowotworu na terapię.

Obrazowanie rezonansu magnetycznego z kontrastem dynamicznym ortotopowego modelu myszy z rakiem trzustki

Przeglądaj więcej filmów