-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

PL

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

pl_PL

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Cancer Research
Implantacja kaniuli wewnątrzczaszkowej do seryjnych infuzji limfocytów T lokoregionalnego recepto...
Implantacja kaniuli wewnątrzczaszkowej do seryjnych infuzji limfocytów T lokoregionalnego recepto...
JoVE Journal
Cancer Research
This content is Free Access.
JoVE Journal Cancer Research
Intracranial Cannula Implantation for Serial Locoregional Chimeric Antigen Receptor (CAR) T Cell Infusions in Mice

Implantacja kaniuli wewnątrzczaszkowej do seryjnych infuzji limfocytów T lokoregionalnego receptora chimerycznego antygenu (CAR) u myszy

Full Text
4,364 Views
05:22 min
February 24, 2023

DOI: 10.3791/64886-v

Kyra Harvey1, Peter J. Madsen2,3, Tiffany Smith2, Crystal Griffin1,2, Luke Patterson1,2, Nicholas A. Vitanza4,5, Phillip B. Storm2,3, Adam C. Resnick2,3, Jessica B. Foster1,2

1Division of Oncology,Children’s Hospital of Philadelphia, 2Center for Data Driven Discovery in Biomedicine,Children’s Hospital of Philadelphia, 3Division of Neurosurgery,Children’s Hospital of Philadelphia, 4Ben Towne Center for Childhood Cancer Research,Seattle Children’s Research Institute, 5Department of Pediatrics, Seattle Children’s Hospital,University of Washington

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines a method for locoregional cannula implantation in mice, facilitating the preclinical evaluation of immunotherapeutic infusions targeting central nervous system tumors. The technique allows for repeated doses of CAR T-cell therapy without the need for multiple invasive surgeries.

Key Study Components

Area of Science

  • Neuroscience
  • Oncology
  • Immunotherapy

Background

  • CNS tumors are the leading cause of cancer-related deaths in children.
  • Locoregional immune-based therapies are being tested in clinical trials.
  • CAR T-cell therapy shows promise in targeting CNS tumors.
  • This protocol replicates an intraventricular catheter system used in ongoing clinical trials.

Purpose of Study

  • To evaluate the effectiveness of CAR T-cell therapy in a preclinical model.
  • To provide a method for local regional delivery of therapeutics.
  • To minimize the invasiveness of repeated treatments in animal models.

Methods Used

  • Implantation of a cannula using a stereotactic apparatus.
  • Administration of CAR T-cell therapy through the implanted cannula.
  • Use of anesthesia and surgical techniques to ensure animal welfare.
  • Monitoring of tumor response and survival outcomes post-treatment.

Main Results

  • The GPC2-directed CAR T-cell therapy induced significant tumor regression.
  • Significantly prolonged survival was observed in the thalamic diffuse midline glioma model.
  • The method allows for precise delivery of treatment to targeted areas.
  • Insights gained may inform future research in neuroscience and oncology.

Conclusions

  • This protocol provides a valuable tool for studying CNS tumors.
  • It enhances the understanding of CAR T-cell therapy efficacy.
  • The approach may lead to improved therapeutic strategies for CNS tumors.

Frequently Asked Questions

What is the main advantage of this cannula implantation technique?
The main advantage is the ability to provide multiple doses of therapy without repeated invasive surgeries.
How does CAR T-cell therapy work?
CAR T-cell therapy involves engineering T-cells to target and destroy cancer cells.
What types of tumors are targeted in this study?
The study focuses on central nervous system tumors, particularly medulloblastoma and diffuse midline glioma.
What are the implications of this research?
The research may lead to improved treatment options and understanding of CNS tumors in pediatric patients.
What is the role of anesthesia in this protocol?
Anesthesia is used to ensure the welfare of the mice during the surgical procedures.
How is the effectiveness of the treatment measured?
Effectiveness is measured by tumor regression and survival rates in the treated mice.

Guzy ośrodkowego układu nerwowego (OUN) są główną przyczyną zgonów związanych z rakiem u dzieci, a lokoregionalne terapie immunologiczne są coraz częściej testowane dla pacjentów w badaniach klinicznych. Protokół ten opisuje metody lokoregionalnej implantacji kaniuli u myszy w celu przedklinicznej oceny infuzji immunoterapeutycznych ukierunkowanych na guzy OUN.

Protokół ten replikuje system cewnika dokomorowego stosowany w trwających badaniach klinicznych w celu przetestowania lokalnego regionalnego dostarczania terapii limfocytami T CAR skierowanej przeciwko nowotworom ośrodkowego układu nerwowego. Główną zaletą tej techniki jest możliwość podania wielu powtarzanych dawek lokalnej terapii regionalnymi komórkami T CAR bez wykonywania wielu inwazyjnych zabiegów chirurgicznych. System ten może być wykorzystany do badania różnych środków terapeutycznych w różnych miejscach porodu, a tym samym może zapewnić wgląd w niezliczone obszary badawcze w neurobiologii.

Na początek połóż znieczuloną mysz z ogoloną głową na stole operacyjnym i delikatnie otwórz dolną część ramienia stereotaktycznego za pomocą szpatułki. Włóż kaniulę za pomocą kleszczyków i zabezpiecz ją, dokręcając na ramieniu, aż połowa do dwóch trzecich białej plastikowej części i pięć milimetrów kaniuli będą wystawać z dna otworu. Włóż i zabezpiecz górne zęby myszy w belce zgryzowej aparatu stereotaktycznego.

Pociągnij stożek nosowy do przodu i dokręć go, upewniając się, że mysz wdycha izofluran. Następnie zamontuj mysz na rozgrzanym aparacie stereotaktycznym za pomocą nauszników lub nauszników, unikając nadmiernego nacisku. Zdezynfekuj miejsce operacji i wykonaj cięcie równoległe do czaszki, jak opisano w rękopisie.

Użyj wacików z bawełnianą końcówką, aby odepchnąć powięź. Zidentyfikuj punkty orientacyjne, bregmę i lambdę na czaszce odpowiadające przednim i tylnym znakom, w których spotykają się płytki czaszkowe. Aby stworzyć powierzchnię do mocowania akrylu, delikatnie wykonaj kilka nacięć w poprzek czaszki za pomocą skalpela.

Za pomocą ramienia stereotaktycznego zlokalizuj kaniulę w interesującym Cię punkcie orientacyjnym. Podnieś końcówkę kaniuli o jeden do dwóch milimetrów ponad powierzchnię czaszki i przejdź do żądanych współrzędnych. Używając igły o rozmiarze 18 lub wiertarki chirurgicznej, wykonaj dwa otwory na w odsłoniętej czaszce z dala od miejsca, w którym wchodzi kaniula, zapewniając wystarczająco dużo miejsca na kaniulę.

Przekręć wiertło przez otwór na, aż przymocuje się do czaszki. Za pomocą śrubokręta z płaską końcówką włóż i dokręć dwie w otworach. Następnie delikatnie pociągnij do góry, aby upewnić się, że jest dobrze dokręcona.

Aby wprowadzić kaniulę, utwórz otwór w czaszce w określonych współrzędnych za pomocą igły o rozmiarze 18 lub wiertła chirurgicznego. Za pomocą ramienia stereotaktycznego opuść kaniulę do żądanej współrzędnej DV. Mając około 0,3 grama żywicy akrylowej w proszku i 10 do 15 kropli płynu na porcelanowej 12-dołkowej płytce, załaduj przygotowany lepki biały materiał do jednomililitrowej strzykawki.

Pokryj czaszkę i wypełnij przestrzenie wokół kaniuli i przykręć. Poluzuj na ramieniu stereotaktycznym, gdy cement jest elastyczny. Delikatnie użyj szpatułki, aby zwolnić kaniulę z uchwytu w dolnym otworze i schuj ramię stereotaktyczne z dala od myszy.

Po wyschnięciu cementu włóż atrapę kaniuli do kaniuli prowadzącej i obróć zgodnie z ruchem wskazówek zegara, aby ją mocno zabezpieczyć. Po zakończeniu procedury umieść mysz z powrotem w ogrzanej klatce domowej w celu odzyskania sprawności. Aby przygotować kaniulę zabiegową, należy włożyć jej górną część do rurki PKG.

Następnie napełnij strzykawkę leczniczą zawiesiną limfocytów T CAR i wprowadź ją przez drugi koniec rurki PKG, zakrywając górną część kaniuli zabiegowej. Po znieczuleniu myszy przymocuj kaniulę prowadzącą do podstawy za pomocą kleszczy. Odkręć i wyjmij atrapę kaniuli, umożliwiając dostęp do kaniuli prowadzącej.

Podawaj limfocyty T CAR przez jedną minutę i przytrzymaj kaniulę leczniczą na miejscu przez dodatkową minutę. Po wyjęciu kaniuli zabiegowej należy mocno przykręcić atrapę kaniuli. Następnie podawaj meloksykam podskórnie w celu kontroli bólu.

Terapia limfocytami T CAR ukierunkowana na GPC2 spowodowała znaczną regresję guza w rdzeniaku zarodkowym i znacznie wydłużyła przeżycie w modelu rozlanego glejaka w linii środkowej wzgórza. Podczas wprowadzania kaniuli prowadzącej do miejsca wewnątrznowotworowego ważne jest, aby zrozumieć, że współrzędne grzbietowo-brzuszne mogą być bardziej powierzchowne niż wstrzyknięcie guza, aby uwzględnić długość projekcji manekina i kaniuli terapeutycznej.

Explore More Videos

Kaniula wewnątrzczaszkowa terapia komórkami T CAR poród lokoregionalny nowotwory ośrodkowego układu nerwowego zabieg chirurgiczny aparat stereotaktyczny znieczulona mysz wprowadzenie kaniuli wiertło chirurgiczne punkty orientacyjne czaszki akrylowe mocowanie badania neurologiczne wielokrotne dawki techniki inwazyjne

Related Videos

Wewnątrzczaszkowy ortotopowy alloprzeszczep komórek rdzeniaka zarodkowego u myszy z obniżoną odpornością

05:10

Wewnątrzczaszkowy ortotopowy alloprzeszczep komórek rdzeniaka zarodkowego u myszy z obniżoną odpornością

Related Videos

12.7K Views

Chirurgiczne wstrzyknięcie Cisterna Magna: metoda podawania komórek nowotworowych bezpośrednio do ośrodkowego układu nerwowego modelu mysiego

04:10

Chirurgiczne wstrzyknięcie Cisterna Magna: metoda podawania komórek nowotworowych bezpośrednio do ośrodkowego układu nerwowego modelu mysiego

Related Videos

11.5K Views

Wewnątrzczaszkowa implantacja kanularna u myszy w celu dostarczenia środków terapeutycznych do guzów mózgu

04:48

Wewnątrzczaszkowa implantacja kanularna u myszy w celu dostarczenia środków terapeutycznych do guzów mózgu

Related Videos

2.2K Views

Nowatorska technika obrazowania in vivo o wysokiej rozdzielczości do badania dynamicznej odpowiedzi struktur wewnątrzczaszkowych na wzrost guza i terapie

12:09

Nowatorska technika obrazowania in vivo o wysokiej rozdzielczości do badania dynamicznej odpowiedzi struktur wewnątrzczaszkowych na wzrost guza i terapie

Related Videos

12K Views

Implantacja kaniuli do Cisterna Magna gryzoni

10:13

Implantacja kaniuli do Cisterna Magna gryzoni

Related Videos

49.4K Views

Stereotaktyczny transfer adoptywny cytotoksycznych komórek odpornościowych w mysich modelach ortotopowego ludzkiego glejaka wielopostaciowego ksenoprzeszczepów

11:15

Stereotaktyczny transfer adoptywny cytotoksycznych komórek odpornościowych w mysich modelach ortotopowego ludzkiego glejaka wielopostaciowego ksenoprzeszczepów

Related Videos

8.5K Views

Mysi model ksenoprzeszczepu Ommaya do badania terapii ukierunkowanej na chorobę opon mózgowo-rdzeniowych

07:17

Mysi model ksenoprzeszczepu Ommaya do badania terapii ukierunkowanej na chorobę opon mózgowo-rdzeniowych

Related Videos

6.7K Views

Ułatwienie powtórnych iniekcji do tętnicy szyjnej w modelach mysich za pomocą nowatorskiej techniki naprawy miejsca wstrzyknięcia

09:08

Ułatwienie powtórnych iniekcji do tętnicy szyjnej w modelach mysich za pomocą nowatorskiej techniki naprawy miejsca wstrzyknięcia

Related Videos

3.2K Views

Immunokompetentny mysi model do laserowej śródmiąższowej terapii termicznej glejaka

09:10

Immunokompetentny mysi model do laserowej śródmiąższowej terapii termicznej glejaka

Related Videos

1K Views

Syngeniczny model chłoniaka z komórek B myszy do przedklinicznej oceny limfocytów T CD19 CAR

12:16

Syngeniczny model chłoniaka z komórek B myszy do przedklinicznej oceny limfocytów T CD19 CAR

Related Videos

15.7K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code