8 listopada 2024
Ten protokół opisuje procedury izolowania wysokiej jakości jąder z zamrożonych wysp trzustkowych naczelnych innych niż ludzkie do użycia w jednojądrowym jednoczesnym sekwencjonowaniu RNA i sekwencjonowaniu ATAC, przy jednoczesnym zachowaniu dużej frakcji cytozolowej do analiz metabolomicznych z tych samych próbek.
Wykorzystujemy wysoce translacyjny model naczelnych innych niż człowiek, aby ocenić, w jaki sposób dieta matki i spożywanie leków w czasie ciąży wpływają na rozwój embrionalny i funkcję pourodzeniową wysp trzustkowych u potomstwa. Zmiany zaprogramowane rozwojowo mogą zmienić podatność na chorobę w późniejszym życiu. Wyzwaniem podczas pracy z trudnymi do pozyskania próbkami, takimi jak te pochodzące od naczelnych, jest skuteczna ocena wielu pytań od tego samego osobnika.
Niestety, jednoczesne wyodrębnienie informacji z metabolomu i genomu może być trudne ze względu na niezgodność odczynnika testowego i wrażliwą na czas degradację cząsteczek, które mają być określone ilościowo. Nasz protokół pozwala na ekstrapolację obfitości metabolitów, dostępności chromatyny i zróżnicowanej ekspresji genów z tego samego materiału wyjściowego. To wielowarstwowe podejście zapewnia wgląd w to, w jaki sposób metabolizm może zmieniać genom wysp trzustkowych.
Na początek rozmrozić izolowaną tkankę wyspy trzustkowej makaka rezusa na lodzie, dodać 500 mikrolitrów 0,1x buforu do lizy do osadu tkankowego. Używając jednorazowego tłuczka z granulkami RNA, delikatnie homogenizuj tkankę 15 razy na lodzie. Inkubować próbkę na lodzie przez 10 minut.
Następnie dodać 500 mikrolitrów buforu do płukania do homogenatu i delikatnie wymieszać pipetą na lodzie. Zalać 30-mikrometrowy filtr wstępnej separacji 300 mililitrami buforu płuczącego i przefiltrować jeden mililitr homogenatu komórkowego do pięciomililitrowej probówki. Wirować przefiltrowany homogenat o stężeniu 500 G przez pięć minut w wirówce z odchylanym wiadrem w temperaturze 4 stopni Celsjusza.
Za pomocą pipety przenieś jeden mililitr supernatantu do kriowialu na lodzie i natychmiast zamroź go w temperaturze 80 stopni Celsjusza do przyszłych eksperymentów metabolomicznych. Dodaj kroplami jeden mililitr buforu do płukania do osadu jądrowego, aby go ponownie zawiesić. Wirować umyty granulat o masie 1000 G przez pięć minut w wirówce z odchylanym wiadrem w temperaturze 4 stopni Celsjusza.
Po powtórzeniu płukania ponownie zawiesić jądra w jednym mililitrze buforu do płukania. Za pomocą pipety wymieszać po 10 mikrolitrów zawiesiny jąder i 0,4% błękitu trypanowego w osobnej probówce i dodać mieszaninę do automatycznego szkiełka licznika komórek. Na koniec, za pomocą licznika komórek, określ stężenie jąder.
Uzyskano idealne, nienaruszone jądro do eksperymentów sekwencjonowania. Na podstawie badań ekspresji genów uzyskano grupowanie UMAP podtypów komórkowych w obrębie izolowanych płodowych wysp trzustkowych naczelnych innych niż ludzie. Obfitość metabolitów wysp trzustkowych, takich jak fosforan dihydroksyacetonu, 3-fosforan glicerolu, 2-oksoglutar, kreatyna i glutation, została uzyskana przy użyciu frakcji cytozolowych.
Niniejszy protokół opisuje metody izolacji wysokiej jakości jąder komórkowych z zamrożonych wysepek trzustkowych naczelnych innych niż człowiek w celu jednoczesnego sekwencjonowania RNA i sekwencjonowania ATAC. Metoda ta pozwala również na zachowanie frakcji cytozolowej do analiz metabolomicznych, co umożliwia kompleksowe zrozumienie interakcji metabolicznych i genomicznych.
Integracja sekwencjonowania RNA pojedynczych jąder (single-nucleus RNA-seq), ATAC-seq oraz metabolomiki masowej (bulk metabolomics) z zamrożonych wysepek niesporczakowców rozwiązuje krytyczny problem wąskiego gardła w odkryciach multiomicznych z wykorzystaniem rzadkich lub cennych próbek. Podejście to umożliwia kompleksowe profilowanie molekularne z ograniczonej ilości materiału, co zwiększa pewność predykcyjną we wczesnej walidacji celów terapeutycznych i ograniczaniu ryzyka mechanistycznego. Protokół ten maksymalizuje uzysk danych z każdej próbki, wspierając decyzje portfelowe skorygowane o ryzyko w badaniach nad chorobami metabolicznymi i rozwojowymi.
Niniejszy protokół łączy wczesne etapy odkryć, walidację celów oraz badania translacyjne, umożliwiając profilowanie multiomiczne z rzadkich próbek tkanek.