Name: Pomiar ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów za pomocą cewnikowania prawego serca (Wideo) | JoVE Journal
Uploaded: 2025-12-16T14:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 21 s
Description: Poznaj zoptymalizowaną metodę cewnikowania prawego serca do pomiaru ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów. Protokół zwiększa skuteczność i bezpieczeństwo procedury dla początkujących badaczy.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Prace te były wspierane przez Fundację Nauk Przyrodniczych Chin (nr 81971784, 81830062).

Wszystkie procedury były przeprowadzane zgodnie z wytycznymi Komitetu ds. Opieki nad Zwierzętami Instytucjonalnego Uniwersytetu Medycznego Armii. Procedury zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi. Ze względu na inwazyjność cewnikowania prawego serca, zwierzęta powinny zostać uśpione natychmiast po zebraniu danych. Eutanazja powinna być przeprowadzana zgodnie z wytycznymi instytucji dotyczącymi badań nad zwierzętami. Wykorzystano tu zdrowe samce szczurów Sprague-Dawley (SD), o specyficznym stopniu wolnym od patogenów (SPF), masie ciała 300 ± 20 g.
1. Przygotowanie cewnika
<ol>
	<li>Wybierz igłę do infuzji żylnej (rurkę PVC) o średnicy zewnętrznej 1,6 mm, średnicy wewnętrznej 1,0 mm i długości 25 cm. Odetnij końcówkę igły. Włóż do rury miedziany przewód o średnicy mniejszej niż 1,0 mm.</li>
	<li>Zrób koniec ogona w okrąg o średnicy 7 mm (Rysunek 1A). Eksperymentator może użyć cylindrycznego przedmiotu o odpowiednim rozmiarze (takiego jak ołówek), aby wspomóc zgięcie cewnika. Zanurz okrągły koniec w wodzie w temperaturze 100 °C na 10 minut, a następnie wyjmij go. Usuń miedziany przewód. Koniec ogon jest podobny do warkoczyka, a drugi koniec można podłączyć do trójdrożnego zaworu odcinkowego (Rysunek 1B).</li>
</ol>
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig1.jpg" /> 
Rysunek 1: Wykonanie cewnika. (A) Przeciągnij miedziany przewód przez rurkę PVC i wygiń koniec rurki w okrąg o średnicy 7 mm. (B) Po zanurzeniu końca koła w wodzie o temperaturze 100 °C na 10 minut usuń drut miedziany. Rurka ma kształt przypominający kucyk. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig1large.jpg" target="_blank">Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.</a>
2. Przygotowanie zwierząt
<ol>
	<li>Kontrola temperatury: Włącz termofor i ustaw temperaturę na 37 °C. Utrzymuj temperaturę na poziomie 37°C przez cały zabieg.</li>
	<li>Znieczulaj szczura, podając 0,3 mL 2% pentobarbitalu sodu na 100 g masy ciała dootrzewnej. Aby sprawdzić, czy zwierzę jest znieczulone, sprawdź, czy nie reaguje na uszczypnięcie łapy lub ogonu. Unikaj sytuacji, w których zwierzęta budzą się podczas operacji z powodu niewystarczającej znieczulenia, a także zgonów lub innych skutków niepożądanych spowodowanych nadmierną narkozą. Podczas operacji nieustannie monitoruj, czy tętno i oddech szczura są prawidłowe.</li>
	<li>Ułóż szczura w pozycji leżącej na termoforze stołu operacyjnego i przymocuj jego siekacze oraz tylne kończyny do stołu operacyjnego za pomocą gumek recepturki.</li>
</ol>
3. Procedura operacyjna
<ol>
	<li>Ogol właściwą część szyjki i zdezynfekuj ją patyczką namoczoną w spitrusie. Użyj nożyczek do tkanek, aby zrobić 2 cm nacięcie na skórze po prawej stronie szyi. Użyj zakrzywionych kleszczy okulistycznych, aby tępo rozciąć żyłę szyjną zewnętrzną po prawej stronie.</li>
	<li>Uwolnij około 1 cm żyły. Podwiązuj dalszy koniec żyły nitką szwową 5-0. Zawiąż węzeł na najbliższym końcu. Zacisnij nitkę stehu na dalszym końcu hemostatem i delikatnie pociągnij ją w stronę główki, aby umiarkowanie zaciąć naczynie krwionośne.</li>
	<li>Do venotomii należy nakręcić przygotowaną igłę nr 7 pod kątem 45° w przeciwnym kierunku niż końcówka igły (rysunek 2A) i nakłuć żyłę szyjną zewnętrzną w kierunku końca bliższego (Rysunek 2B). UWAGA: Igły są uważane za ostre narzędzia. Unikaj bezpośredniego kontaktu z ostrym końcem podczas ich używania.</li>
</ol>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig2.jpg" /> 
Rysunek 2: Narzędzie wenotomii. (A) Zgiąć igłę nr 7 pod kątem 45° w przeciwnym kierunku niż końcówka igły. (B) Przebij żyłę szyjną zewnętrzną w kierunku końca bliższego. Ze względu na wcześniejsze zgięcie igły, praca eksperymentatora będzie wygodniejsza. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig2large.jpg" target="_blank">Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.</a>
<ol start="4">
	<li>Napełnij cewnik sercowy podłączony do trójdrożnego zaworu roztworem heparyny sodowej i zamknij zaworek trójdrożny. UWAGA: Heparyna jako lek przeciwzakrzepowy może zapobiegać powstawaniu zakrzepów krwi podczas cewnikowania. Przygotuj 500 ml roztworu sodu heparyny w dawce 1000 IU/mL, mieszając heparynę sodową i sól fizjologiczną.</li>
	<li>Włóż wygięty czubek własnoręcznie wykonanej igły nr 7 do żyły, podnieś go i po drodze włóż zakrzywione kleszcze okulistyczne do żyły, aby ją otworzyć (rysunek 3A). Wyciągnij igłę. Włóż cewnik do żyły przez szczelinę otwartą przez kleszcze (Rysunek 3B).</li>
	<li>Wyciągnij zakrzywione kleszcze okulistyczne. Rozwiąż węzeł, przepchnij cewnik do przodu, a następnie zawiąż nowy węzeł, aby zabezpieczyć cewnik i zapobiec jego spadnięciu (rysunek 3C). Nie wiąż węzła ślizgowego zbyt mocno, aby nie dochodziło do wycieku krwi i żelnik mógł być jednocześnie swobodnie przesuwany.</li>
</ol>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig3.jpg" /> 
Rysunek 3: Cewnikowanie. (A) Włóż zakrzywione kleszcze okulistyczne do żyły, aby ją otworzyć. (B) Wprowadź cewnik do żyły przez szczelinę otwartą przez kleszcze. (C) Zawiąć nowy węzeł ślizgowy, aby naprawić cewnik i zapobiec jego spadkowaniu. Upewnij się, że nie dochodzi do wycieku krwi i żelnik może być jednocześnie swobodnie przesuwany. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig3large.jpg" target="_blank">Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.</a>
<ol start="7">
	<li>Włącz wykrywacz kłamstw, podłącz przetwornik ciśnieniowy i opróżnij go zwykłą solą fizjologiczną, aby upewnić się, że nie ma pęcherzyków powietrza.</li>
	<li>Otwórz oprogramowanie do nagrywania, wyzeruj je przez ekspozycję na atmosferę, a następnie wykonaj dwupunktową kalibrację za pomocą sfigmomanometru rtęciowego. W oprogramowaniu ustaw typ filtra na dolnoprzepustowy, częstotliwość odcięcia na 40 Hz, a częstotliwość próbkowania na 1000 SPS.</li>
	<li>Pomiar przebiegu i ocena położenia: Podłącz trójdrożny zaworek odcinkowy podłączony do cewnika z przetwornikiem ciśnieniowym, zapewniając, że w zaworze nie ma pęcherzyków powietrza. Następnie otwórz i obróć przełącznik trójdrożnego zaworu, aby cewnik komunikował się z przetwornikiem ciśnienia, a przebieg żylny jest widoczny (Rysunek 4A).</li>
	<li>Obróć cewnik, jednocześnie przesuwając go do przodu. Jeśli pojawi się opór, nie zmuszaj go do posunięcia się naprzód. Podnieś podkładkę (wykonaną z ostrza chirurgicznego), lekko wyciągnąć cewnik, a następnie obrócić i ponownie wcisnąć ją do środka, aż nagle poczujesz utratę oporu, co oznacza wejście do większej przestrzeni, wtedy pojawia się fala komorowa (rysunek 4B).</li>
	<li>Naciśnij ją jeszcze raz, aby dotrzeć do tętnicy płucnej. Podczas przesuwania się czubka cewnika po ścianie serca jest wyczuwalne. Pojawi się przebieg tętnicy płucnej (rysunek 4C).</li>
	<li>Jeśli pojawi się przebieg komór przedstawiony na Rysunku 4D , może to oznaczać, że cewnik ma trudności z wejściem do tętnicy płucnej w tym miejscu. Wyciągnij cewnik nieznacznie, obróć go i przepchnij do przodu, aż pojawi się fala komorowa pokazana na Rysunku 4B , wtedy bardzo łatwo jest wejść do tętnicy płucnej. Jednocześnie początkujący mogą również sięgnąć do Sarkara i in., aby lepiej zrozumieć przebiegi na różnych etapach9.</li>
</ol>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/69559/69559fig4.jpg" /> 
Rysunek 4: Przebieg fali ciśnienia. (A) Przebieg żyły. (B) Przebieg fali komorowej. (C) Przebieg tętnicy płucnej. (D) Nieprawidłowy przebieg fali komorowej. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/69559/69559fig4large.jpg" target="_blank">Proszę kliknąć tutaj, aby zobaczyć większą wersję tej figurki.</a>
4. Zbieranie danych
<ol>
	<li>Gdy charakterystyczny przebieg ciśnienia w tętnicy płucnej zostanie potwierdzony i przebieg pozostaje stabilny przez 1 minutę, delikatnie załóż cewnik i utrzymuj go stabilnym. Teraz zmierz PAP.</li>
	<li>Rejestruj stabilny przebieg fali przez co najmniej 10 kolejnych cykli serca. Jeśli eksperyment wymaga długotrwałego, ciągłego pomiaru PAP, nałóż gazy na odsłoniętą skórę, aby zapobiec przesuszeniu lub niepożądanym reakcjom spowodowanym długotrwałą ekspozycją na środowisko.</li>
	<li>Ustaw ciśnienie w prawym przedsionku, prawej komorze i tętnicy płucnej odpowiednio na 2-6 mmHg, 0-25 mmHg i 10-25 mmHg, każde z charakterystycznymi szczytami 7,8,9,10,11,12,13. Gdy szczyt skurczowy fali fali ciśnienia w prawej komorze ma wycięcie, cewnik jest bardziej skłonny do przenikania do tętnicy płucnej.</li>
	<li>Po zakończeniu zbierania danych należy uśpić zwierzęta zgodnie z wytycznymi instytucji dotyczącymi badań nad zwierzętami. Uzupełnij znieczulenie poprzez zastrzyk dootrzewnowny, a ostatecznie uśpij szczury dawką 10-20 mg pentobarbitalu sodu na 100 g. Po zakończeniu zbierania danych czyść cewniki. UWAGA: Wszystkie odpady powstałe w wyniku tych procedur powinny być właściwie zarządzane. Użyte igły i inne ostre przedmioty należy natychmiast umieścić w dedykowanych pojemnikach na utylizację ostrych przedmiotów. Tkanki biologiczne (w tym zwłoki zwierząt) powinny być nieszkodliwe. Użyte odczynniki chemiczne powinny być wlane do zbiorników na ciecze odpadowe i odprowadzane po centralnym oczyszczaniu.</li>
</ol>

<ol><li>Krishnan, A., Markham, R., Savage, M., Wong, Y. W., Walters, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+Heart+Catheterisation%3A+How+To+Do+It%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Lung+Circ%22%5BJournal%5D)">Right Heart Catheterisation: How To Do It.</a> Heart Lung Circ. 28 (4), e71-e78 (2019).</li>
<li>Kosova, E., Ricciardi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+Catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Cardiac Catheterization.</a> JAMA. 317 (22), 2344(2017).</li>
<li>Sun, P., Liu, W. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Method+for+measuring+the+pulmonary+artery+pressure+with+a+right+cardiac+catheter+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Acad+Med+Sinicae%22%5BJournal%5D)">Method for measuring the pulmonary artery pressure with a right cardiac catheter in rats.</a> Acta Acad Med Sinicae. 6 (6), 465-467 (1984).</li>
<li>Zou, L., Chen, M., Huang, X., Wang, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+meliorative+technique+to+measure+pulmonary+artery+pressure+by+right+heart+catheterization+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+J+Pathophysiol%22%5BJournal%5D)">A meliorative technique to measure pulmonary artery pressure by right heart catheterization in rats.</a> Chinese J Pathophysiol. 30 (4), 757-762 (2014).</li>
<li>Yan, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+the+Method+for+Measuring+Rat+Pulmonary+Artery+Pressure+via+Right+Heart+Catheterization%5BTitle%5D)+AND+%22Chinese+J+Integrative+Med+Cardio-Cerebrovasc+Dis%22%5BJournal%5D)">Optimization of the Method for Measuring Rat Pulmonary Artery Pressure via Right Heart Catheterization.</a> Chinese J Integrative Med Cardio-Cerebrovasc Dis. 20 (11), 1986-1988 (2022).</li>
<li>Tontodonati, M., Ridley, D., Remie, R., Clements, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+method+for+the+catheterization+of+the+right+ventricle+in+a+rat+model+of+pulmonary+artery+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Interact+Cardiovasc+Thorac+Surg%22%5BJournal%5D)">Improved method for the catheterization of the right ventricle in a rat model of pulmonary artery hypertension.</a> Interact Cardiovasc Thorac Surg. 30 (4), 535-537 (2020).</li>
<li>Yuan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Megakaryocytic+leukemia+1+%28MKL1%29+regulates+hypoxia+induced+pulmonary+hypertension+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Megakaryocytic leukemia 1 (MKL1) regulates hypoxia induced pulmonary hypertension in rats.</a> PLoS One. 9 (3), e83895(2014).</li>
<li>Yang, Y. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nogo-B+Receptor+Directs+Mitochondria-Associated+Membranes+to+Regulate+Vascular+Smooth+Muscle+Cell+Proliferation%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Mol+Sci%22%5BJournal%5D)">Nogo-B Receptor Directs Mitochondria-Associated Membranes to Regulate Vascular Smooth Muscle Cell Proliferation.</a> Int J Mol Sci. 20 (9), 2319(2019).</li>
<li>Sarkar, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+Pulmonary+and+Carotid+Arteries+for+Concurrent+Measurement+of+Mean+Pulmonary+and+Systemic+Arterial+Pressure+in+Rat+Models+of+Pulmonary+Arterial+Hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Bio+Protoc%22%5BJournal%5D)">Catheterization of Pulmonary and Carotid Arteries for Concurrent Measurement of Mean Pulmonary and Systemic Arterial Pressure in Rat Models of Pulmonary Arterial Hypertension.</a> Bio Protoc. 13 (16), e4737(2023).</li>
<li>Neelakantan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+contributions+of+pulmonary+arterial+remodeling+to+right+ventricular+afterload+in+pulmonary+hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Bioeng+Transl+Med%22%5BJournal%5D)">Dissecting contributions of pulmonary arterial remodeling to right ventricular afterload in pulmonary hypertension.</a> Bioeng Transl Med. 10 (4), e70035(2025).</li>
<li>Neelakantan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+Ventricular+Stiffening+and+Anisotropy+Alterations+in+Pulmonary+Hypertension%3A+Mechanisms+and+Relations+to+Right+Heart+Failure%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Heart+Assoc%22%5BJournal%5D)">Right Ventricular Stiffening and Anisotropy Alterations in Pulmonary Hypertension: Mechanisms and Relations to Right Heart Failure.</a> J Am Heart Assoc. 14 (5), e037126(2025).</li>
<li>Mendiola, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Right+Ventricular+Architectural+Remodeling+and+Functional+Adaptation+in+Pulmonary+Hypertension%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Heart+Fail%22%5BJournal%5D)">Right Ventricular Architectural Remodeling and Functional Adaptation in Pulmonary Hypertension.</a> Circ Heart Fail. 16 (2), e009768(2023).</li>
<li>Swan, H. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+the+heart+in+man+with+use+of+a+flow-directed+balloon-tipped+catheter%5BTitle%5D)+AND+%22New+Engl+J+Med%22%5BJournal%5D)">Catheterization of the heart in man with use of a flow-directed balloon-tipped catheter.</a> New Engl J Med. 283 (9), 447-451 (1970).</li>
<li>Ruopp, N. F., Cockrill, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diagnosis+and+Treatment+of+Pulmonary+Arterial+Hypertension%3A+A+Review%5BTitle%5D)+AND+%22JAMA%22%5BJournal%5D)">Diagnosis and Treatment of Pulmonary Arterial Hypertension: A Review.</a> JAMA. 327 (14), 1379-1391 (2022).</li>
<li>Ferrero, P., Krishnathasan, K., Constantine, A., Chessa, M., Dimopoulos, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pulmonary+arterial+hypertension+in+congenital+heart+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+%28British+Cardiac+Society%29%22%5BJournal%5D)">Pulmonary arterial hypertension in congenital heart disease.</a> Heart (British Cardiac Society). 110 (18), 1145-1152 (2024).</li>
<li>Deten, A., Millar, H., Zimmer, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Catheterization+of+pulmonary+artery+in+rats+with+an+ultraminiature+catheter+pressure+transducer%5BTitle%5D)+AND+%22Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Catheterization of pulmonary artery in rats with an ultraminiature catheter pressure transducer.</a> Heart Circ Physiol. 285 (5), H2212-H2217 (2003).</li>
</ol>

Autorzy deklarują brak konfliktu interesów związanych z publikacją tego artykułu.

W 1970 roku Swan i Ganz poinformowali o zastosowaniu pływającego cewnika do pomiaru ciśnienia w tętnicy płucnej13, ustanawiając inwazyjną cewnikowanie prawego serca jako złoty standard w diagnozowaniu nadciśnienia płucnego 14,15. Jednak w badaniach z udziałem małych zwierząt, takich jak szczury, rozmiar cewnika ogranicza wykonalność cewnikowania zamkniętego klatki piersiowej. W 1984 roku Bo i in.3opisali metodę wyko...

Obecnie ciśnienie w tętnicy płucnej mierzone cewnikowaniem prawego serca jest złotym standardem w diagnozowaniu nadciśnienia płucnego1. U ludzi i dużych zwierząt cewnik pływający jest najczęściej stosowany do cewnikowania prawego serca2. Jednak u małych zwierząt (takich jak szczury), ze względu na brak odpowiednich pływających cewników, zastosowanie tej techniki jest ograniczone, co utrudnia badania naukowe nad replikacją modeli nadciśnienia płucnego na szczurach3. Szczury typowo używane do modelowania nadciśnienia płucnego mają zazwyczaj zakres masy od 300 do 400 g. Mniejszy rozmiar ciała oznacza, że mają drobniejsze naczynia krwionośne i cieńsze ściany serca, co utrudnia cewnikowanie. Chociaż istnieją doniesienia literackie dotyczące metody wykonania cewnika prawego serca za pomocą rurki polietylenowej (PE) o średnicy zewnętrznej 0,9 mm i średnicy wewnętrznej 0,5 mm oraz techniki intubacji 3,4,5, przebieg ciśnienia ciśnienia w tętnicy płucnej został pomyślnie monitorowany. Jednak podczas faktycznej operacji wciąż występuje wiele problemów: cewnik prawdopodobnie przez pomyłkę wejdzie do żyły głównej dolnej lub pozostanie w prawej komorze przez długi czas i nie dostanie się do tętnicy płucnej. Dłuższy czas wszczepienia cewnika może również prowadzić do spadku tętna szczura i zniekształconego pomiaru ciśnienia. Cewnik może nawet przebić prawe przedsionko z powodu nieprawidłowej pracy, co skutkuje niepowodzeniem eksperymentu 4,5,6. Analizując przyczyny, może się zdarzyć, że twardość i twardość cewnika wpływają na krzywiznę jego końcówki, co utrudnia wejście do tętnicy płucnej.
Aby rozwiązać ten problem, w tym badaniu wybrano rurkę z polichlorkiem winylu dodaną plastyfikatorem (średnica zewnętrzna 1,6 mm, średnica wewnętrzna 1,0 mm, długość 25 cm, odpowiednia dla żył szyjną szczurów powyżej 150 g) o większej elastyczności i wytrzymałości jako materiał do wykonania cewnika. Zaproponowaliśmy zestaw systematycznych schematów operacji, w tym wykonanie warkocza na końcu cewnika, rozwarstwienie żyły szyjnej zewnętrznej, włożenie cewnika oraz określenie jego położenia. Dzięki ulepszeniom wcześniejszych metod udaje się osiągnąć łatwiejszy dostęp do tętnicy płucnej oraz wyższy wskaźnik skuteczności 7,8. Dzięki temu możemy zapewnić bardziej wiarygodne wsparcie techniczne dla badań nad modelami nadciśnienia płucnego u małych zwierząt.

<table><tbody><tr><td>Nić szwowa 5-0</td><td>Zhongke Huida</td><td>23030306</td><td></td></tr><tr><td>Środek dezynfekujący alkoholem 75%</td><td>Shandong Zhuojian Medical Technology Co., LTD.</td><td>Q/371402SDZJ005</td><td></td></tr><tr><td>Zlewka</td><td>Fabryka Szklanych Instrumentów w Chengdu</td><td>GG-17</td><td>250mL</td></tr><tr><td>Przewód miedziany</td><td>ThermoFisher</td><td>000098.G2</td><td></td></tr><tr><td>Poduszka grzewcza</td><td>Tigergene Technology Inc</td><td>TG-TP-BS</td><td>20& razy; 35cm</td></tr><tr><td>Kleszcze hemostatyczne</td><td>Beyotime</td><td>FS245</td><td></td></tr><tr><td>Igła do infuzji dożylnej</td><td>Fabryka Sprzętu Medycznego przy Wielkim Murze w powiecie Hanjiang</td><td>GB 18671-2002</td><td></td></tr><tr><td>LabChart Pro Upgrade v7 dla Windows</td><td>AD Instruments</td><td>GR85-XNCB-MEDA</td><td></td></tr><tr><td>Medyczna wacina</td><td>Huatai Medical Equipment Co., LTD.</td><td>YY/T 10330-2015</td><td></td></tr><tr><td>Wielokanałowy system rejestrowania fizjologicznego (PowerLab 4/35, AD Instruments)</td><td>AD Instruments</td><td>PowerLab 4/35</td><td></td></tr><tr><td>Igła</td><td>Shanghai Kindly Enterprise Development Group Co., LTD.</td><td>0,7 razy; 32 TW LB</td><td></td></tr><tr><td>Sól fizjologiczna normalna</td><td>Servicebio</td><td>G4702-500ML</td><td>Rozpuszczalnik? Płyn czyszczący</td></tr><tr><td>Okulistyczne wygięte kleszcze</td><td>Beyotime</td><td>FS229</td><td></td></tr><tr><td>Przetworniki ciśnieniowe</td><td>AD Instruments</td><td>SP 844</td><td></td></tr><tr><td>Stół operacyjny szczurów</td><td>INSTRUMENTY YUYAN</td><td>30351</td><td></td></tr><tr><td>Heparyna sodu</td><td>biosharp</td><td>BS145</td><td>Działanie antykoagulantne</td></tr><tr><td>Pentobarbital sodu</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P3761</td><td>Stosuje się go do znieczulenia szczurów</td></tr><tr><td>Sterylna strzykawka</td><td>Shanghai Kindly Enterprise Development Group Co., LTD.</td><td>5ml</td><td></td></tr><tr><td>Ostrze chirurgiczne</td><td>Beyotime</td><td>FS205</td><td>Używany do wykonania pada</td></tr><tr><td>Zaworek odcinkowy trójstronny</td><td>B. Braun</td><td>409511CN</td><td></td></tr><tr><td>Nożyczki do tkanek</td><td>Beyotime</td><td>FS209</td><td></td></tr></tbody></table>

pomiar ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów za pomocą cewnikowania prawego serca

Measurement of Pulmonary Artery Pressure in Rats Using Right Heart Catheterization

Ciśnienie w tętnicy płucnej (PAP) mierzone cewnikowaniem prawego serca jest uznawane za złoty standard w diagnozowaniu nadciśnienia płucnego. Szczury zostały wykorzystane do opracowania modeli nadciśnienia płucnego. Jednak gdy początkujący wykonują cewnikowanie prawego serca w celu pomiaru PAP w modelach nadciśnienia płucnego u szczurów, cewnik często przypadkowo wchodzi do dolnej żyły głównej lub utknie w prawej komorze, nie docierając do tętnicy płucnej, co prowadzi do przedłużonej cewnikowania, która zmniejsza tętno u szczurów i powoduje zniekształcone odczyty ciśnienia. Ponadto istnieje ryzyko przebicia prawego przedsionka, co może spowodować niepowodzenie eksperymentu. Celem tego badania jest podzielenie się doświadczeniami naszego laboratorium w pomiarze PAP za pomocą cewnikowania prawego serca poprzez prezentację wideo. Wymieniamy etapy chirurgiczne związane z cewnikowaniem prawego serca oraz narzędzia niezbędne do zabiegu. Ulepszyliśmy wybór cewników na podstawie właściwości materiałów cewnikowych oraz opisaliśmy metodę przygotowania cewnika. Wyjaśniliśmy także proces wprowadzania cewnika do tętnicy płucnej oraz określenie jego położenia. Wierzymy, że ten protokół będzie pomocny dla początkujących w pomiarze ciśnienia w tętnicy płucnej.

Opublikowaliśmy dane dotyczące średniego ciśnienia tętnicowego w płucach u szczurów z przewlekłym nadciśnieniem płucnym wywołanym przez niedotoksję oraz prawidłowych szczurów kontrolnych z równin mierzonych tą metodą 7,8. Wyniki są zasadniczo zgodne z danymi zawartymi w literaturze 9,10,11,12. Stosując n...

Protokół ten szczegółowo wprowadza doświadczenie z metodą cewnikowania prawego serca do wykrywania ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów, co pomoże uzyskać dokładniejsze dane i zwiększyć skuteczność eksperymentu. Metoda ta poprawia również powtarzalność eksperymentów w różnych laboratoriach.

Pomiar ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów za pomocą cewnikowania prawego serca

Pulmonary artery pressure (PAP) measured by right heart catheterization is considered the gold standard for diagnosing pulmonary hypertension. Rats have ...

Nasze laboratorium zoptymalizowało tradycyjną procedurę cewnikowania prawego serca na wiele sposobów, aby zwiększyć efektywność i skuteczność. Wyzwanie polega na tym, że technika pomiaru ciśnienia tętnicznego u małych zwierząt za pomocą cewnikowania prawego serca jest trudna do opanowania dla początkujących. Na początek użyj nożyczek do odcięcia końcówki igły zestawu do infuzji żylnej rurką PVC o średnicy zewnętrznej 1,6 milimetra, średnicy wewnętrznej 1,6 milimetra i długości 25 centymetrów.Przekręć miedziany przewód o średnicy mniejszej niż jeden milimetr do rurki z polichlorku winylu. Owiń koniec rurki wokół cylindrycznego obiektu, takiego jak ołówek, aby utworzyć okrąg o średnicy siedmiu milimetrów, a końcówkę zanurz w wodzie, podgrzanej do 100 stopni Celsjusza przez 10 minut. Po podgrzaniu wyjmij rurkę z wody.Następnie wyciągnij miedziany przewód z rurki. Upewnij się, że końcówka końcowa utrzymuje kształt przypominający kucyk i sprawdź, czy przeciwległy koniec można podłączyć do zaworu odcinkowego trójdrożnego. Ogol prawą część szyjki szyjki u znieczulonego szczura, aby odsłonić powierzchnię skóry, a odsłonięty obszar zdezynfekuj wacikiem nasączonym alkoholem do ścierania.Następnie nożycami do tkanek wykonaj dwucentymetrowe nacięcie w skórze po prawej stronie szyi. Zakrzywione kleszcze okulistyczne tępo rozcinają tak, aby odsłonić żyłę szyjną zewnętrzną po prawej stronie. Ostrożnie uwolnij około jednego centymetra odsłoniętej zewnętrznej żyły szyjnej i podwiązuj dalszy koniec żyły za pomocą nici o szewie o średnicy pięciu ós.Zawiąż węzeł ślizgający się na bliższym końcu żyły. Użyj hemostatu, aby zacisnąć nitkę szwów na dalszym końcu i delikatnie pociągnąć ją w stronę główki, aby umiarkowanie zaciąć naczynie krwionośne. Teraz zgiąć przygotowaną drutę numer siedem pod kątem 45 stopni w przeciwnym kierunku niż końcówka igły.Następnie napełniamy cewnik sercowy, który jest połączony z trójdrożnym zaworem zaworowym, roztworem sodu heparyny. Po napełnieniu zamknij zaworek trójdrożny, aby zapobiec cofaniu się. Włóż zgięty czubek przygotowanej igły numer siedem do żyły szyjnej zewnętrznej.Delikatnie podnieś igłę do góry i włóż zakrzywione kleszcze okulistyczne wzdłuż ścieżki igły do żyły, aby ją otworzyć. Ostrożnie wyjmij igłę z żyły i wprowadź cewnik przez szczelinę utworzoną przez kleszcze. Następnie ostrożnie wyjmij zakrzywione kleszcze okulistyczne z żyły i rozwiąż wcześniej założony węzeł ślizgowy na bliższym końcu żyły.Wpchnij cewnik głębiej w żyłę. Następnie zawiąż nowy węzeł ślizgowy wokół żyły, aby zabezpieczyć cewnik. Upewnij się, że węzeł nie jest zbyt ciasny i nie ma wycieku krwi, jednocześnie umożliwiając płynny ruch cewnika.Włącz urządzenie do wykrywania kłamstw i podłącz przetwornik ciśnienia do wykrywacza kłamstw. Przepłucz przetwornik ciśnienia zwykłą solą fizjologiczną, aby usunąć wszelkie pęcherzyki powietrza. Następnie otwórz oprogramowanie do nagrywania na podłączonym komputerze.Wyzeruj przetwornik ciśnienia, wystawiając go na ciśnienie atmosferyczne, i wykonaj dwupunktową kalibrację za pomocą rtęciowego sfigmomanometru. W oprogramowaniu ustaw typ filtra na dolnoprzepustowy, częstotliwość odcięcia na 40 Hz, a częstotliwość próbkowania na 1000 próbek na sekundę. Podłącz trójdrożny zawor, który jest przymocowany do cewnika, do przetwornika ciśnienia.Upewnij się, że w zaworze zaworowym nie ma pęcherzyków powietrza. Otwórz i obróć przełącznik na zaworze trójdrożnym, aby umożliwić komunikację między cewnikem a przetwornikiem ciśnienia i obserwować przebieg fali żylnej. Obróć cewnik, powoli przesuwając go do przodu.Jeśli napotkasz opór, przestań naciskać i podnieś podkładkę wykonaną ostrzem chirurgicznym, lekko wyciągnij cewnik, następnie obróć i ponownie popchnąć do przodu, aż nagle poczujesz utratę oporu wskazującą wejście do większej przestrzeni, wtedy pojawia się fala komorowa. Przesuń cewnik do przodu, aby dotrzeć do tętnicy płucnej. Obserwuj uczucie przesuwania się końcówki cewnika wzdłuż ściany serca podczas wysuwania się.Monitoruj ekran, aby zidentyfikować wygląd fali tętnicy płucnej. Jeśli pojawi się nieprawidłowy przebieg fali komorowej, może to wskazywać, że cewnik ma trudności z wejściem do tętnicy płucnej w tym miejscu. Delikatnie wyciągnij cewnik, obróć go i przesuń ponownie, aż pojawi się prawidłowy przebieg fali komorowej, po czym powinno być łatwo wejść do tętnicy płucnej.Opracowano dwa modele hipoksycznego nadciśnienia płucnego. jeden przez komorę symulacji środowiska płaskowyżu, symulujący wysokość 5 800 metrów. A drugi przez chemiczne wstrzyknięcie jednego mililitra 60% monokrotaliny do szyi przez 28 dni.W obu modelach ciśnienie skurczowe w prawej komorze oraz średnie ciśnienie tętnicze płucne były mierzone tą metodą i były istotnie wyższe niż w grupie kontrolnej. Nasz protokół nie wymaga mikroskopu, usprawnia proces i zmniejsza ryzyko przebicia ściany serca. Ta technologia pomaga nam efektywniej i dokładniej mierzyć ciśnienie w tętnicy płucnej u małych zwierząt.Nasz protokół zapewnia wsparcie i ramy dla powtarzalności badań związanych z modelami nadciśnienia płucnego.

measurement-pulmonary-artery-pressure-rats-using-right-heart

Research

JoVE Journal

Medicine

Medycyna

Specyficzny i szybki protokół do jednoczesnego badania funkcji prawego serca, zapalenia płuc i odpowiedzi immunologicznej jest opisany jako narzędzie do nauki.  Filmy i rysunki opisują fizjologię i techniki mikrodysekcji w zorganizowanym podejściu zespołowym, które można dostosować do stosowania w małych i dużych badaniach.

Pomiary ciśnienia skurczowego prawej komory w połączeniu z pobieraniem próbek płuc i tkanek immunologicznych u myszy

Dysfunkcja prawej komory (RV) jest kluczowa dla patogenezy chorób sercowo-naczyniowych, jednak dostępne są ograniczone metodologie jej oceny. Ostatnie postępy w obrazowaniu ultrasonograficznym zapewniają nieinwazyjną i dokładną opcję podłużnego badania RV. W tym artykule szczegółowo opisujemy krok po kroku metodę echokardiograficzną wykorzystującą mysi model przeciążenia ciśnienia RV.

Ocena struktury i funkcji prawej komory serca w mysim modelu zwężenia tętnicy płucnej za pomocą echokardiografii przezklatkowej

Przewlekłe zakrzepowo-zatorowe nadciśnienie płucne (CTEPH) i dysfunkcja prawej komory (RV) były indukowane u prosiąt przez postępującą niedrożność tętnic płucnych. Konsekwencje były niezwykle podobne do tych obserwowanych u pacjentów z CTEPH. Ten model zwierzęcy byłby bardzo przydatnym narzędziem do patofizjologii i eksperymentów terapeutycznych dotyczących CTEPH i niepowodzenia RV.

Przewlekłe zakrzepowo-zatorowe nadciśnienie płucne i ocena funkcji prawej komory u prosiąt

Tętnicze nadciśnienie płucne (PAH) to choroba tętniczek płucnych, która prowadzi do ich zatarcia i rozwoju niewydolności prawej komory. Modele WWA u gryzoni mają kluczowe znaczenie dla zrozumienia patofizjologii WWA. Tutaj pokazujemy charakterystykę hemodynamiczną, z cewnikowaniem prawego serca i echokardiografią, u myszy i szczura.

Charakterystyka hemodynamiczna modeli tętniczego nadciśnienia płucnego u gryzoni

Ten protokół opisuje procedurę chirurgiczną mającą na celu stworzenie modelu tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem (PAH) u szczurów oraz procedury analizy głównych hemodynamicznych i histologicznych punktów końcowych w tym modelu.

Chirurgia zastawkowa, cewnikowanie prawego serca i morfometria naczyniowa w modelu szczurzym dla tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego przepływem

Tutaj prezentujemy protokół do przeprowadzenia inwazyjnej oceny hemodynamicznej prawej komory i tętnicy płucnej u myszy przy użyciu metody chirurgicznej na otwartej klatce piersiowej.

Inwazyjna ocena hemodynamiczna układu prawej komory i tętniczego nadciśnienia płucnego wywołanego niedotlenieniem u myszy

Niniejszy protokół opisuje echokardiograficzną charakterystykę morfologii i funkcji prawej komory w szczurzym modelu tętniczego nadciśnienia płucnego.

Kompleksowa echokardiograficzna ocena funkcji prawej komory serca w szczurzym modelu tętniczego nadciśnienia płucnego

Ten protokół krok po kroku przeprowadza wielokrotne dożylne podawanie dawki bolusa i inwazyjne monitorowanie hemodynamiczne u myszy. Badacze mogą wykorzystać ten protokół do przyszłych badań przesiewowych związków terapeutycznych w kierunku nadciśnienia tętniczego płucnego.

Wielokrotne dożylne dawkowanie bolusa i inwazyjna ocena hemodynamiczna w modelu nadciśnienia tętniczego płucnej myszy wywołanego niedotlenieniem

Opisujemy mysi model przeciążenia ciśnienia w prawej komorze wywołanego przez opaski na pniu płucnym. Szczegółowe protokoły intubacji, chirurgii i fenotypowania za pomocą echokardiografii znajdują się w artykule. Do intubacji i chirurgii wykorzystywane są instrumenty wykonane na zamówienie, co pozwala na szybkie i niedrogie odtworzenie modelu.

Mysi model przerostu prawej komory serca wywołanego przeciążeniem ciśnieniowym i niewydolności przez opaski pnia płucnego

Tutaj przedstawiono metodę wywoływania tętniczego nadciśnienia płucnego związanego ze zwłóknieniem płuc (PF-PH) model szczurzy poprzez wstrzykiwanie bleomycyny do dróg oddechowych. Zapewniamy również podejście krok po kroku do walidacji tego modelu zwierzęcego.

Ustalenie i walidacja szczurzego modelu tętniczego nadciśnienia płucnego związanego ze zwłóknieniem płuc

Prezentacja szczegółowych metod oceny funkcji prawej komory poprawi jakość i wiarygodność badań nad nadciśnieniem płucnym, oferując solidne ramy dla przyszłych badań i zwiększając odtwarzalność w różnych laboratoriach.

Ocena funkcji prawej komory w eksperymentalnych modelach tętniczego nadciśnienia płucnego

Poznaj zoptymalizowaną metodę cewnikowania prawego serca do pomiaru ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów. Protokół zwiększa skuteczność i bezpieczeństwo procedury dla początkujących badaczy.

Pomiar ciśnienia w tętnicy płucnej u szczurów za pomocą cewnikowania prawego serca

Przeglądaj więcej filmów