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Camundongos C57BL / 6 deve ser usado em ~ 20 semanas de idade ou mais. O uso de camundongos machos pesando 25-30g é recomendado. O rendimento das células estreladas pode ser aumentado pela alimentação camundongos uma vitamina Uma dieta enriquecida por 2 meses antes do isolamento de células estreladas. Cerca de 2x10 5 células estreladas hepáticas pode ser purificado a partir do fígado de um camundongo C57BL / 6, enquanto o rendimento de células estreladas de camundongos Balb / c é consideravelmente maior. O protocolo que se segue é ajustada para 5 camundongos. Cuidados com os animais e experimentação foram realizados em conformidade com o Animal Care aprovado Institucional e protocolos Comitê Use.
1. Na perfusão in situ de fígado de camundongos com enzimas digestivas
- Aquecer o tampão SC1 e soluções para perfusão enzima em banho-maria a 37 ° C.
- Montar um set de infusão com asas no tubo de silicone de uma bomba peristáltica.
- Calibrar a bomba com PBS para obter um fluxo laminar de 6.5ml/min, que é a vazão que serão utilizados para a situ na perfusão do fígado. Equilibrar o tubo de silicone com SC1 solução.
- Anestesiar o rato por injeção intraperitoneal de ketamina (90 mg / kg) e xilazina (10 mg / kg) e solução de teste de perda de reflexos para garantir narcotização profundo.
- Corrigir o mouse na posição supina em uma superfície apropriada.
- Use uma tesoura e uma pinça para realizar uma incisão longitudinal na pele abdominal e expor o peritônio.
- Abra cuidadosamente o peritônio e mover os intestinos para fora da cavidade abdominal para o lado esquerdo do animal a fim de expor a veia portal.
- Inserir a cânula do conjunto de perfusão na veia portal. Para esta etapa, o uso de um microscópio estereoscópico é recomendado.
- Iniciar a perfusão do fígado com solução SC1 30ml. Abra a veia cava inferior imediatamente após o início do fluxo. Rubor bem sucedida do fígado é indicada por uma perda de cor do tecido do fígado.
- Perfundir o fígado com a solução de 30ml pronase E. Após a digestão bem-sucedido, os lobos do fígado vai inchar, e os lóbulos aparecerá distintas através da cápsula.
- Perfundir o fígado com a solução de colagenase P 30ml. O fígado neste momento perdeu sua forma e aparência atônica e amorfo.
- Separe cuidadosamente o fígado a partir do diafragma e órgãos circundantes e armazená-lo em 70ml de solução SC2 no gelo.
- Repita o procedimento para ratos adicionais.
2. Digestão in vitro de fígado de camundongos
Todas as outras etapas de trabalho deve ser realizado sob condições estéreis em capela de fluxo laminar.
- Corte o fígado em pedaços de aproximadamente 2x2x2mm 3 usando uma tesoura afiada.
- Combine a suspensão de 70ml SC2 incluindo os pedaços de fígado com 50ml de solução pronase P E-colagenase e adicionar 1 ml de solução de DNase I.
- Digerir os fígados por 20min a 37 ° C, agitando.
3. Centrifugação em gradiente de densidade
- Filtrar a suspensão de células através de filtros de células 70μm em 6 tubos de 50ml Falcon e adicionar até 50ml com SC2 buffer. Centrifugar por 10 minutos em 600g e 4 ° C.
- Aspirar cuidadosamente 40ml do sobrenadante, em seguida, adicione 150μl DNase solução que eu a cada tubo e ressuspender as células.
- Piscina das suspensões de células em 4 tubos de 50ml Falcon e lave com GBSS-B, centrifugar por 10 minutos em 600g e 4 ° C.
- Aspirar cuidadosamente o máximo de sobrenadante quanto possível, sem perturbar o sedimento e adicionar 150μl DNase solução que eu a cada tubo. Ressuspender o pellets de células em 10ml GBSS-B por tubo.
- Piscina as células em dois tubos de 50ml Falcon e adicione GBSS-B para um volume total de 36ml por tubo. Adicionar 14ml de solução Nycodenz a cada tubo e misture bem.
- Transferência de 10ml da suspensão de células em um tubo de centrifugação 12ml gradiente, resultando em 10 tubos no total. Delicadamente sobrepor a suspensão de células com 1,5 ml GBSS-B por tubo.
- Centrifugar os gradientes de 15 min a 1500g e 4 ° C, sem freio. Posteriormente, hepatócitos será peletizada na parte inferior do tubo enquanto que as células estreladas são encontrados na interfase como um anel branco.
- Cuidadosamente a colheita interfase contendo as células estreladas e lavá-los com GBSS-B; centrifugar por 10 minutos em 600g e 4 ° C.
- Aspirar o sobrenadante e ressuspender as células em DMEM suplementado com 20ml inativado pelo calor de 10% FBS, HEPES 1% Penicilina / Estreptomicina, 2mM L-Glutamina, piruvato de sódio 1 mM e 10 mM. Transferência das células em frascos de cultura de tecidos com uma concentração de 2x10 4 células / cm 2. Incubar as células a 37 ° C e 5% CO 2.
- Troque a mídia assim que as células estreladas hepáticas são aderentes (cerca de 2h após a preparação) para lavar as células mortas e restos celulares.
- No dia seguinte, a célula estreladass deve desenvolver sua morfologia em forma de estrela com característica perinuclear vesículas vitamina A-armazenar lipídios.
- Para os experimentos subseqüentes, as células estreladas hepáticas pode ser facilmente destacado das superfícies não-revestido de plástico leve usando soluções enzimáticas, tais como Accutase, por exemplo,
4. Resultados representativos:
Após a preparação de células estreladas hepáticas utilizando o protocolo fornecido, a pureza da população isolada podem ser testadas considerando três principais características deste tipo de célula, como estrelas, como a forma, gotículas lipídicas perinuclear, e expressão da proteína glial fibrilar ácida (GFAP ). Imagens representativas para o aspecto característico de células estreladas hepáticas 2h após o isolamento de células, bem como no dia 1 e 3 de cultura in vitro são apresentadas na Figura 1. A Figura 2 mostra uma coloração representante de imunofluorescência para GFAP em células estreladas hepáticas, que foram cultivadas por 3 dias após o isolamento de células. Células estreladas hepáticas diferenciar em células miofibroblástica durante a cultura in vitro. A marca característica dessas células estreladas ativadas é a expressão de alfa actina de músculo liso (αSMA). A Figura 3 mostra a coloração de imunofluorescência para ASMA e IIA miosina em células estreladas ativadas no dia 7 de cultura in vitro.

Figura 1. Morfologia característica de células estreladas hepáticas. Células estreladas foram isoladas de fígado de camundongos usando o protocolo fornecido. As imagens retratam 2h células estreladas após o isolamento da célula (a, b), bem como no dia 1 (c) e dia 3 (d) de cultivo in vitro. Células estreladas hepáticas apresentam grandes quantidades de vesículas lipídicas em locais perinuclear e adquirir sua morfologia astral distintivo como durante os primeiros dias de cultivo in vitro (Ampliação de 200x).

Figura 2. Células estreladas hepáticas especificamente expressar GFAP no fígado. Células estreladas foram isoladas e coradas para immunofluorescently GFAP (vermelho) no dia 3 de cultura in vitro. Núcleos das células são representadas em azul (Hoechst mancha).

Figura 3. Células estreladas hepáticas diferenciar em miofibroblastos. Células estreladas hepáticas isoladas de camundongos C57BL / 6 foram cultivadas por 7 dias. Posteriormente, eles foram transferidos para câmara de slides e corados para ASMA (mostrada em vermelho) e IIA miosina (representado em verde). Os núcleos das células foram contracorados com Hoechst (azul).
| SC1 buffer |
| EGTA | 190mg |
| Glicose | 900mg |
| HEPES | 10 ml de solução 1M de ações |
| KCl | 400mg |
| Na 2 HPO 4 x 2 H 2 O | 151mg |
| NaCl | 8g |
| NaH 2 PO 4 x H 2 O | 78mg |
| NaHCO 3 | 350mg |
| Vermelho de fenol | 6mg |
| dH 2 O | preencher até 1l |
| SC2 buffer |
| CaCl 2 x 2H 2 O | 560mg |
| HEPES | 10ml de solução estoque 1M |
| KCl | 400mg |
| Na 2 HPO 4 x 2 H 2 O | 151mg |
| NaCl | 8g |
| NaH 2 PO 4 x H 2 O | 78mg |
| NaHCO 3 | 350mg |
| Vermelho de fenol | 6mg |
| dH 2 O | preencher até 1l |
| GBSS-A Tampão |
| KCl | 370mg |
| CaCl 2 x 2H 2 O | 225mg |
| Glicose | 991mg |
| KH 2 PO 4 | 30mg |
| MgCl 2 x 6 H 2 O | 210mg |
| MgSO 4 x 7 H 2 O | 70mg |
| Na 2 HPO 4 x 2 H 2 O | 75mg |
| NaHCO 3 | 227mg |
| Vermelho de fenol | 6mg |
| dH 2 O | preencher até 1l |
| GBSS-B buffer |
| CaCl 2 x 2H 2 O | 225mg |
| Glicose | 991mg |
| KCl | 370mg |
| KH 2 PO 4 | 30mg |
| MgCl 2 x 6 H 2 O | 210mg |
| MgSO 4 x 7 H 2 O | 70mg |
| Na 2 HPO 4 x 2 H 2 O | 75mg |
| NaCl | 8g |
| NaHCO 3 | 227mg |
| Vermelho de fenol | 6mg |
| dH 2 O | preencher até 1l |
| Pronase solução de perfusão E |
| E pronase | 100mg (4000 PU / mg min) |
| SC2 buffer | 200ml |
| Colagenase solução de perfusão P |
| Colagenase P | 85mg (1,78 U / mg lyo) |
| SC2 buffer | 200ml |
| Pronase E-colagenase Solução P |
| E pronase | 50mg (4000 PU / mg min) |
| Colagenase P | 85mg (1,78 U / mg lyo) |
| SC2 buffer | 50ml |
| Solução DNase I |
| DNase I | 6mg (ca. 2000U/mg) |
| GBSS-B | 3ml |
| Nycodenz Solution |
| Nycodenz | 8g |
| GBSS-A | 28ml |
Tabela 1. Buffers e soluções de enzima necessária para o isolamento de células estreladas hepáticas. O pH de todos os buffers deve ser ajustado para 7,3-7,4. Além disso, a filtração estéril de todos os buffers é recomendado. É importante adaptar a quantidade de enzima utilizada de acordo com a determinada atividade enzimática.