1. Preparação de células
- Cultura de células alvo: Cultura do mouse linhas de células beta, NIT-1 e NIT-4, foi um 1,2 descrito anteriormente em DMEM suplementado com 10% de SFB, BSA 0,02%, não-essenciais Aminoácidos, 15mM HEPES, 16.5mm Glocose e penicilina / estreptomicina. Por 51 Cr rotulagem, as células de semente em um flat-bottom de 96 poços na placa de cultura 5X10 4 células / poço em 200 mL meio de cultura. Para experimentos de microscopia, as células de semente em um oito bem-Lab-Tak II chambered lamela em 5x10 4 por câmara em 500 mL meio de cultura, e deixe crescer por 48 horas antes de usar nos experimentos de citotoxicidade.
- Controle T cultura linha celular: Use a linha de células Jurkat (ATCC, CD3 + linha de células de linfócitos humanos) como controle negativo. Cultura de células Jurkat em RPMI1640 suplementado com 10% de SFB, 2 mM L-glutamina, bicarbonato de sódio 1,5 g / L, 10 mM HEPES e 1,0 mM piruvato de sódio.
2. Coleta e ativação de efetores autoreactive células T CD8 +
NOD.Cg-RAG1 tm1Mom Tg (TcraAI4) 1Dvs/DvsJ [NOD-AI4a] e NOD.Cg-RAG1 tm1Mom Tg (TcrbAI4) 1Dvs/DvsJ [NOD-AI4b] foram adquiridos do Laboratório Jackson (Bar Harbor, ME) e criados em nossa unidade de mouse. Progênie híbrida F1 a partir de acasalamentos de NOD-AI4a com NOD-AI4b [NOD-AI4a / b] desenvolver diabetes em 3-5 semanas de idade. Todos os animais foram alojados em patógenos específicos livre de instalações e aprovadas pelo Atendimento a instituição do Comitê Animal e Uso.
- Euthanize 3-4 semanas de idade NOD-AI4a / b camundongos usando CO 2.
- Coletar baços de camundongos. Camundongos sacrificados são preparados com spray de etanol e abriu sob o capô cirúrgico. Baços são removidos e colocados em gelo frio tampão HBSS imediatamente.
- Coletar células do baço usando um homogeneizador de vidro 7 mL. Dois a três baços cada são colocados em 5 mL de HBSS frio e homogeneizado com um 7 mL de vidro homogeneizador. Homogeneizado é coletado e centrifugado a 1200rpm por 5 minutos a 4 ° C usando um Sorvall RT7 centrífuga +. Pellets celulares são recolhidos.
- Remover as células vermelhas do sangue usando o tratamento solução hipotônica. Pelotas são tratados com 5 mL de solução hipotônica / baço em gelo durante 5 minutos, em seguida neutralizada pela adição de igual volume de HBSS. Coletar células por centrifugação, como acima, e ressuspender em 50 HBSS mL. Passe as células em suspensão através de peneira de células e contagem utilizando um hemocitômetro com coloração TrypanBlue.
- Ativam as células. Ressuspender as células em 5x10 6 mL / e ativar usando uma cultura 3 dias com 0,1 mM AI4 mimotope (YFIENYLEL sequência de aminoácidos) e 25 U / mL IL-2 em RPMI1640 suplementado com 10% de SFB, 2 mM L-glutamina, 1,5 g / L de bicarbonato de sódio, 10 mM HEPES e 1,0 mM piruvato de sódio.
3. 51 ensaio de liberação de Cr para examinar CML
- Células-alvo etiqueta: Add 51 Cr para atingir as células em 1 μCi / poço e cultura para 3 horas, e lavar 3 vezes com meio de cultura.
- Suspender células efetoras em meio RPMI 1640, como mencionado no passo 2,5 para que o volume final adicionados a cada poço é de 200 mL.
- Após a lavagem final das células-alvo rotulado, adicione ativação de células efetoras para as culturas de células-alvo em efetoras desejado para o destino (E: T) rácios. Nós usamos geralmente E: relações T em 0.4:1, 1:1, 2:1, 5:1, 10:1, 20:1 e 50:1.
- Adicionar novas modificada RPMI 1640 (veja o passo 2.5) a 6 poços de células-alvo para atuar como um controle de lise espontânea.
- Co-cultura de células efetoras e meta para 16 horas.
- Recolher o sobrenadante em tubos de vidro 6x50 milímetros Lime
- Lisar células adicionando 100μl SDS 2% e pipetagem várias vezes suavemente.
- Coletar lisado celular em outro conjunto de 6x50 milímetros tubos de vidro Lime.
- Lavar uma vez com poços limpa H 2 O e adicione a lavagem para os tubos lisado celular.
- Contar os sobrenadantes e lisados celulares usando um contador gama.
- Calcular a lise específica da seguinte forma:

4. Coloração de células para imagens de células vivas
Entre os mais comumente utilizados corantes potencial de membrana mitocondrial, TMRM exibe a toxicidade mitocondrial, pelo menos. 3 Por isso, escolhemos TMRM para estes estudos de imagem de células vivas.
- Prepare uma solução de 40 mM TMRM estoque em DMSO e armazenar a -20 ° C. Faça uma [25 nM] solução de trabalho fresca em vermelho de fenol livre de DMEM com todos os suplementos para NIT-1 cultura de células 1.
- Mancha-alvo NIT-1 com células TMRM 25 nM por 30 min a 37 ° C.
- Substituir a mídia com a mídia fresco contendo 5 nM TMRM para manter a distribuição de equilíbrio dos 4 corante.
- Contar efetoras ativadas AI4 células T usando um hematocytometer.
- Mancha efetoras ativadas AI4 células T com 1 ml / mL para Picogreen5 minutos à temperatura ambiente e lave com vermelho de fenol livre de meio de cultura 3 vezes.
5. Avaliação de linfócitos T mediada por morte de células beta usando imagens de células vivas
- Montar a lamínula chambered com células NIT manchada no palco de uma Zeiss LSM 510 microscópio confocal. Remova a guia com um dremmel e gás esterilizar o vidro com óxido de câmaras Etheline. O palco é equipado com uma câmara de imagens ao vivo de células que tem temperatura controlada a 37 ° C e 5% CO 2 com a umidade.
- Adicionar ativado e corados células T para câmaras designados ao E diferente: relações T.
- Adicionado mesmo número de células Jurkat manchada para as câmaras de controle.
6. Obtenção de imagens de células vivas
O microscópio é equipado com um palco motorizado que nos permitiu adquirir imagens repetidas vezes em diferentes locais das câmaras iguais ou diferentes automaticamente ao longo do tempo do experimento.
- Usando uma lente 63x de petróleo objetivo, tirar fotos em um intervalo de três minutos cada para um total de 300 quadros por localização.
- Detectar coloração TMRM usando um comprimento de onda de excitação de 543 nm e conjunto de filtros para emissão de 565-619 nm
- Detectar Picogreen coloração com uma excitação 488 nm e um conjunto de filtros para emissão de 500-630 nm. O vídeo foi criado usando software Zeiss LSM.
7. Conversão de vídeo para publicação
- Usando o software LSM Zeiss, criar um arquivo de filme não compactado em um formato AVI.
- Para converter o vídeo para o formato publicado, importe o vídeo para o pacote de software FIJI ( http://pacific.mpi-cbg.de/wiki/index.php/Fiji ), um ImageJ ( http://rsb.info. nih.gov / ij / ) de distribuição, usando o plugin Bioformats de locos ( http://www.loci.wisc.edu/software/bio-formats ).
- Ajustar as configurações de brilho e contraste para equilibrar os sinais verde e vermelho ea taxa de quadros foi definido como 2 frames / segundo usando a animação do menu de opções.
- Recortar o vídeo para 512 x 512 pixels e exportar como um arquivo AVI sem compressão.
- Abrir este arquivo AVI no QuickTime 7 software (computador Apple, Cupertino, CA) e comprimir e de exportação no formato aberto de arquivo de vídeo H264/MPEG-4 a 1200 kbs / segundo.
8. Resultados representativos:
- Um resultado representativo de 51 ensaio CML Cr. A Figura 1 mostra um resultado representativo de um ensaio onde CML lise por cento específicos (eixo Y) aumenta à medida que o Effector: relação Target (eixo X) aumenta. Células-alvo são ilhotas primária isolada a partir de NOD imunodeficientes RAG1-/ -. Ratos e rotulado com 51 Cr. Esplenócitos dos NOD.AI4α / β camundongos transgênicos são isoladas e ativados como descrito na etapa 2 acima. Metas e efetores foram co-cultivados por 16 horas. Lise por cento específico é calculado conforme descrito no passo 3.11.
- Dois representante (positivo e negativo) resulta de um T-mediada por células beta dissipação de célula de membrana mitocondrial em potencial são apresentados. Células são coradas e reações são registradas como descrito nas etapas 4, 5 e 6 acima, arquivos de vídeo são criados como no passo 7. Vídeo 1: O mouse linhagem de células beta NIT-1 foi manchado o potencial de membrana mitocondrial TMRM corante (vermelho). Ativado, autoreactive CD8 + células T AI4 (verde manchado com Picogreen) foram co-cultivados com essas NIT-1 células em uma razão E: T de 50:1. NIT-1 potencial de membrana mitocondrial dissipada gradualmente durante uma duração de 400 minutos, mas apenas nos clusters que foram interagindo com células T AI4. Vídeo 2: Como um experimento de controle, NIT-1 as células foram coradas com TMRM e co-cultivados com células Jurkat Picogreen manchada em uma razão E: T de 50:1. Células Jurkat são uma linha de células T humanas que é MHC incompatíveis. NIT-1 células mantidas potencial de membrana mitocondrial durante toda a duração de 400 minutos a co-incubação período. Células Jurkat não interagir com NIT-1 clusters e, portanto, não provocar o assassinato.

Figura 1 resultado Representante da CML usando como células-alvo primárias ilhotas isoladas de imunodeficientes NOD.Rag1-/ -. Ratos e esplenócitos de NOD.AI4α / β camundongos transgênicos. Metas e efetores foram co-cultivados por 16 horas. Lise por cento específica aumenta com o Effector: aumenta a proporção Target.
Vídeo 1. Rato linha de células beta NIT-1 foi manchado a membrana mitocondrial potencial corante TMRM (Red). Ativado autoreactive CD8 + células T AI4 (verde manchado com Picogreen) foram co-cultivados com essas NIT-1 em células razão E: T de 50:1. NIT-1 potencial de membrana mitocondrial dissipaçãoted gradualmente durante uma duração de 400 minutos, mas apenas nos clusters que estavam interagindo com o verde AI4 células T. Clique aqui para assistir ao vídeo .
Video 2. NIT-1 as células foram coradas mesma, conforme descrito no vídeo 1 e co-cultivados com Picogreen T humanas manchada Jurkat linha celular. NIT-1 as células foram capazes de manter o potencial de membrana mitocondrial pensado a duração de 400 minutos. Células Jurkat não interagir com NIT-1 clusters e, portanto, não provocar o assassinato. Clique aqui para assistir ao vídeo .