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1. Dissecção da retina Drosophila
- Preencher um poço de uma lâmina de vidro 3-Bem com tampão fosfato salina (PBS 1X), e depois anestesiar voa de CO 2. Os machos e as fêmeas podem ser utilizados para este experimento.
- Uma vez que as moscas são anestesiados, pegar uma única mosca usando uma pinça e solte-o no prato pequeno de PBS.
- De acordo com um escopo de dissecação, aperte a tromba com uma pinça, e depois retirar a cabeça do corpo, cortando o pescoço com um segundo conjunto de fórceps.
- Segurando a cabeça voar a partir do proboscis, cortado pela metade ao longo da linha média esquerda / direita a cabeça voar com microtesoura para revelar o cérebro.
- Use uma ponteira de corte para pegar a retina, e transferir para um segundo poço da lâmina de vidro 3-Bem cheio com meio Schneider.
- Primeiro, descascar mais da cutícula cabeça e em seguida, retire o cérebro com uma pinça. Manter a retina colada entre a lâmina ea córnea.
- Em seguida, transferir a retina em uma gota (50 ul) de médio Schnieder fresco colocado diretamente da lâmina de vidro.
2. Dissecção da omatídeos
- Dependendo do objetivo final da dissecção (se a imagem imediata ou cultura) e na óptica do microscópio de fluorescência (direto ou invertido), esta etapa pode ter lugar numa lâmina de microscópio ou uma placa de 24 poços. Para o objectivo final desta dissecção, a omatídeos serão dissecados diretamente sobre a lâmina de vidro.
- Compreender tanto o fim mais dorsal ou ventral da retina com uma pinça. Usando microtesoura, corte a retina na metade ao longo da linha média dorsal / ventral para expor os omatídeos no meio do olho.
- Continuar a se agarrar a retina de tal forma que a córnea é voltado para baixo ea lâmina é virada para cima. Usando uma agulha de tungstênio fino, retire o omatídeos da lâmina e da córnea.
- Omatídeos individuais e grupos de omatídeos irá recolher no fundo do poço ou slide. Remova todos os maiores detritos que possam ter recolhido antes de prosseguir.
3. Coloração, tratamento e imagem
- Para analisar a autofagia, diluir 1:1000 Lyso Tracker na queda Schneider (primeiro diluir 1:10 em Schneider e adicione 0,5 mL para a queda no slide), misture e aguarde 10 segundos.
- Retire o excesso de líquido a partir do slide, tendo o cuidado de deixar para trás o omatídeos. Este é o melhor feito com uma ponta fina de gel loading.
- Adicionar uma gota de Vectashield para cobrir os omatídeos, cobrir com uma lamela e selar com verniz.
4. Resultados representativos:
A boa execução do protocolo deve deixar um número de omatídeos individuais e de pequenos grupos de omatídeos mantidos juntos por fragmentos de lâmina, mas bem separada do lado da córnea. Estes podem ser visualizados como neste exemplo para visualizar Atg8: GFP e Lyso Tracker, mostrando autofagossomas, lisossomos e autophagolysosomes (Fig. 3). O método pode ser usado para geração de imagens ao vivo, no entanto, neste caso, é de notar que a autofluorescência de meio Schneider fará com que seja difícil de distinguir os sinais de baixa intensidade fluorescente. Um problema adicional é que os grânulos de pigmento que permanecer solidários com os fotorreceptores são intensamente fluorescentes, especialmente no canal vermelho. Uma imagem de campo claro pode ser necessária para distingui-las das organelas genuíno.

Figura 1. Fluxograma do procedimento de dissecção para obter omatídeos individuais ou pequenos grupos de omatídeos da retina voar.

Figura 2. Variações possíveis do protocolo simples descrevem que envolvem genética da mosca e envelhecimento upstream da dissecção e coloração ou cultura para até 24 horas ea jusante de drogas de administração da dissecção.

Figura 3 varredura confocal de autofagossomas e lisossomos em um único omatídeo dissecados de aw; GMR-Gal4, UAS-Atro75QN; UAS-GFP:.: Atg8 / fly +, expressando uma poliglutaminas Atrophin mutante e com idades entre 12 dias a 29 ° C. O painel de campo claro (à direita) exibe a estrutura quase intacta da omatídeo eo quadro indica a área digitalizada. Os lisossomos marcas vermelhas, verdes do autofagossomas, auto-lisossomos, resultando pela fusão das duas organelas, aparecem amarelo. Das setas indicam dois eventos de fusão em curso entre autofagossomas e lisossomos.