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Preparando E18 neurônios de rato Fetal Cortical para Compartimentação
Antes de começar, é importante para aquecer todos os meios necessários e reagentes para 37 ° C.
Também é importante para esterilizar tudo o que é usado para preparar as células (por exemplo, lâmpadas de borracha, suportes de tubos, frascos de mídia, etc), e aquilo que é colocado na capa, limpando-se com etanol 70%.
- Coloque dois pedaços de E18 Cortex Rato Fetal (um cérebro, previamente dissecado) em um tubo de 15 ml contendo 1 ml gelada de cálcio sem magnésio livre de buffer de dissecção.
- Adicionar 1 ml de 0,25% Tripsina-EDTA para o córtex em tampão dissecção, elevando o volume final de 2 ml de tripsina e concentração final de 0,125%.
- Colocar o tubo de 15 ml em um banho de água 37 ° C por 8 minutos.
- Durante este tempo, o fogo polonês 3 pipetas de vidro Pasteur, formando aberturas sucessivamente menores, em um armário de biossegurança para ajudar a manter a esterilidade.
- Após a incubação 8 minutos do córtex, adicione 10 ml de DMEM contendo 10% FBS para o córtex para ajudar a parar a reação de tripsina.
- Centrifugar o tubo contendo 15 ml do córtex e DMEM/10% FBS a 2500 rpm por 2 minutos.
- No armário de biossegurança, remover o sobrenadante do córtex usando um copo pipeta Pasteur com sucção a vácuo em anexo. Tenha cuidado para não perturbar ou deslocar o pellet.
- Adicionar 1 ml da NMB ao pellet córtex e gentilmente pipeta cima e para baixo. É muito importante para evitar a criação de bolhas de ar enquanto pipetagem cima e para baixo, como as bolhas de ar podem danificar as células por oxidação.
- Use o fogo-polido pipeta Pasteur com a mais ampla abertura para triturar o córtex, anexando um bulbo de borracha estéreis até o fim e pipetagem cima e para baixo 5 vezes, novamente tomando cuidado para não introduzir bolhas de ar. Continue esse processo com as outras duas pipetas de vidro, cada uma com um tamanho de abertura diminuiu.
- Após a trituração, centrifugação as células novamente a 2500 rpm por 2 minutos.
- Após a centrifugação, uma vez remover o sobrenadante e ressuspender o pellet celular em 2 ml de NBM.
- Filtrar a solução de células ressuspenso através de um filtro de células 45 um.
- Mancha as células com Trypan Blue, contados, e carregado no dispositivos. Normalmente, carga de 20 ul de células por dispositivo.
Nota: a concentração final de células é tipicamente entre 2,5 milhões de células / ml e 8 milhões de células / ml
Carregando as células
Depois que as células foram contadas, é hora de carregar as pilhas no dispositivo:
- Traga os dispositivos previamente preparado contendo NBM para a cabine de segurança biológica para manter a esterilidade.
- Retire o excesso de mídia dos poços por sucção a vácuo. No entanto, ter cuidado para evitar a remoção de todos os meios de comunicação - deve haver alguns meios de comunicação no canal principal.
- Aplicar 20 ul de células para o reservatório superior esquerdo do dispositivo (veja o diagrama se necessário). O fluxo de células dentro do dispositivo e anexar à superfície PLL tratada.
- Depois de carregar, colocar os dispositivos contendo células de volta em uma incubadora por 10 minutos para permitir que as células para anexar.
- Após 10 minutos, preencher os reservatórios com a mídia e dispositivos lugar de volta na incubadora.