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1. Solução e Mídia Preparação
- Solução de revestimento de gelatina: 0,1% (w / v) de gelatina em DDH 2 O, autoclavado e armazenar a 4 ° C.
- Matrigel soluções de revestimento. Solução estoque: lento degelo Matrigel (10 ml) a 4 ° C durante a noite, adicionar 10 ml gelada DMEM ou DMEM/F12, misture bem e alíquota de 1 ml / tubo sob capô de cultura de tecidos esterilizados, armazenar a -20 ° C. Solução de trabalho: descongele lenta 1 ml alíquota Matrigel a 4 ° C por 1-2 horas a transferência, a 14 ml ou refrigerados DMEM DMEM/F12 e misture bem debaixo capa de cultura de tecidos esterilizados imediatamente antes de revestimento.
- Solução de revestimento laminina humana: diluir 1 ml de solução de laminina humana (0,5 mg / ml em Tris Buffered NaCl, armazenar a -80 ° C, degelo lento a 4 ° C por 1-2 horas) com gelado DMEM ou DMEM/F12 para 12,5 ml de solução de trabalho (40 mcg / ml) por baixo capota de cultura de tecidos esterilizados imediatamente antes de revestimento.
- Soluções estoque de fator de crescimento (500-1000x): dissolver o fator de crescimento de 10 mg/ Ml em tampão esterilizado (0,5% BSA, 1,0 mM DTT, glicerol 10%, 1XPBS) e armazenar como 50-100 mL / tubo de alíquotas a -80 ° C.
- All-trans-ácido retinóico solução de trabalho (1000X): 10 mM em DMSO, armazenar em alíquotas a -80 ° C.
- Media células estaminais embrionárias humanas: DMEM/F12 ou KO-DMEM (80%), KO substituição de soro (20%), L-alanil-L-gln ou L-gln (2 mM), MEM aminoácidos não essenciais (MNAA, 1X), e β-mercaptoetanol (100 mM), filtrado e armazenar a 4 ° C, suplementado com 20 ng / ml bFGF antes de usar. Ou substituição de "knock out (KO) a substituição do soro" com componentes definidos: DMEM/F12 ou KO-DMEM (100%), L-alanil-L-gln ou L-gln (2 mM), MNAA (1X), MEM essenciais aminoácidos (MEAA, 1X), e β-mercaptoetanol (100 mM), filtrado e armazenar a 4 ° C, suplementado com bFGF (20 ng / ml), a insulina humana (20 mcg / ml), ácido ascórbico (50 mg / ml), humana ativina A (50 ng / ml), albumina humana Albumax / (10 mg / ml), e transferrina humana (8 mcg / ml) antes de usar.
- NSC mídia: DMEM/F12 (100%), N-2 supplement (1X), heparina (8 mcg / ml).
2. Revestimento placa
- Placas de revestimento com gelatina: adicionar 2,5 ml / poço de solução de gelatina a 6 placas bem e incubar durante a noite em uma incubadora de 37 ° C umidificado.
- Placas de revestimento com laminina: frio de gelatina revestidos e remover placas de gelatina, adicione 2,5 ml / solução de revestimento bem Matrigel ou humano laminina trabalhando para pré-gelatinizado refrigerados 6-bem placas e incubar a 4 ° C durante a noite.
3. Passaging e propagação hESCs indiferenciado sob condições definidas
- Permitir colônias CTEh crescer até 5-7 dias de idade, e ter placa de cultura CTEh para microscópio de dissecação (pré-aquecido dissecar palco para 37 ° C) por baixo de dissecação capô esterilizados.
- Selecione colônias CTEh a ser dividido. Morfologicamente, essas colônias devem ter> 75% hESCs indiferenciada (pequenas células compactas), geralmente um pouco opaco (não-brancos empilhados células não diferenciadas células claras) com borda definida underneath o microscópio de dissecação. Cuidadosamente delinear as colônias selecionadas e remover camada de fibroblastos diferenciados em torno da colônia e todas as partes diferenciadas (se houver) da colônia com a borda da P2 ponteira estéril ou puxado capilar de vidro. (Por favor note, hESCs pluripotentes estão em uma fase transitória, sofrem diferenciação espontânea, mesmo em condições óptimas, apesar de preferida, é difícil para as células verificar teses são 100% indiferenciado sob microscópio de dissecação,> 75% indiferenciados são geralmente considerados como o ponto de passagem. A células diferenciadas normalmente não sementes e continuar a crescer, eliminados no processo de passaging)
- Remover a velha mídia contendo flutuante destacada células diferenciadas por aspiração. Lavar com media hESC (sem bFGF) uma vez. Adicionar 3 ml / media CTEh bem fresco contendo 20 ng / ml bFGF.
- Cortar as colônias CTEh indiferenciado em pequenos pedaços, e retire com ponteira estéril ou vidro puxado capilar.
- Piscina a mídia que contém peças colônia separada juntos em um tubo de 50 ml. Lave a placa uma vez com 1 ml / media CTEh bem contendo 20 ng / ml bFGF e piscina juntos.
- Aspirar o Matrigel ou solução laminina humana, desde as placas revestidas fresco. Alíquota de 4 ml / poço media CTEh contendo peças colônia para uma placa de seis poços. Suavemente transferir a placa para incubadora, sem agitação e permitir semente peças colônia durante a noite sem perturbar em um umidificado 37 ° C incubadora com uma atmosfera de 5% de CO 2.
4. Indução neural da hESCs em Sistema Cultura Definido com ácido retinóico
- No dia 3 após a semeadura, remover a maior parte velha mídia de cada poço da placa e deixe a mídia o suficiente para permitir colônias CTEh a ser submersa (nunca permitir hESCs a secar). Substituir com 4 ml / media CTEh bem fresco contendo 20 ng / ml e 10 mM bFGF ácido retinóico.
- Substituir a velha mídia com a mídia CTEh fresco contendo 20 ng / ml e bFGF10 mM de ácido retinóico em dias alternados, e permitir que as colônias neural induzida CTEh crescer para dia 7 ou 8. Todas as células dentro da colônia vai sofrer alterações morfologia de grandes células diferenciadas que continuarão a se multiplicar. As colônias irão aumentar de tamanho para cobrir a placa de dia 7 ou 8, e as células começam a se acumular em algumas áreas das colônias.
5. Continuando Diferenciação Neuronal em Cultura Suspensão
- Tome placa CTEh cultura para dissecar microscópio (pré-aquecido dissecar palco para 37 ° C) por baixo de dissecação capô esterilizados. Cuidadosamente delinear as colônias e remover camada de fibroblastos ao redor da colônia (células diferenciadas migraram para fora da colônia) com a borda da ponta da pipeta estéril ou P2 puxado capilar de vidro.
- Remover a velha mídia contendo flutuante células de fibroblastos destacado por aspiração. Lavar com media hESC (sem bFGF) uma vez. Adicionar 3 ml / media CTEh bem fresco (sem bFGF).
- Cut the-neural icolônias CTEh nduced em pequenos pedaços, e retire com ponteira estéril ou puxado capilar de vidro.
- Piscina a mídia que contém peças colônia separada juntos em um tubo de 50 ml. Lave a placa uma vez com 1 ml / media CTEh bem (sem bFGF) e piscina juntos.
- Alíquota de 4 ml / poço media sem soro CTEh contendo peças colônia para uma placa de fixação 6-ultralow bem e incubar em um 37 ° C incubadora umidificada para permitir flutuante aglomerados celulares (neuroblastos) para formar por 4-5 dias.
6. Maturação Fenótipo neuronal em Cultura Adhesive
- Piscina a mídia que contém neuroblastos flutuando juntos em um tubo de 50 ml. Centrifugar a 1400 rpm por 5 min. Aspirar a velha mídia, tanto quanto você pode e adicionar uma quantidade igual de novo NSC mídia contendo VEGF (20 ng / ml), NT-3 (10 ng / ml), e BDNF (10 ng / ml).
- Pipeta cima e para baixo para misturar neuroblastos flutuante e alíquota de 4 ml / poço a 6-lamelas. Os neuroblastos também pode ser sieded em um laminina / colágeno (Matrigel) ou humana laminina polimerizada 3-dimensional da matriz nos meios de comunicação sem soro contendo NSC VEGF (20 ng / ml), NT-3 (10 ng / ml), e BDNF (10 ng / ml) . Transferir os pratos para a 37 ° C incubadora umidificada para permitir neuroblastos para anexar durante a noite.
- Substituir NSC mídia contendo VEGF (20 ng / ml), NT-3 (10 ng / ml), e BDNF (10 ng / ml) em dias alternados. Extensas redes de neurite, tendo células neuronais e células pigmentadas começarão a aparecer dentro de 2 semanas de cultivo contínuo e aumentar em número com o tempo, e poderia ser sustentado por mais de 3 meses.
7. Resultados representativos:
Ácido retinóico (AR) é prestado suficiente para induzir hESCs mantido no sistema de cultura definida para a transição de pluripotência exclusivamente a um fenótipo neuroectodérmico (Fig. 2A). Após a exposição de hESCs indiferenciada à AR, todas as células dentro da colônia vai sofrer alterações a morfologiagrandes células diferenciadas que deixam expressar pluripotência associada a marcadores, como indicado por Oct-4, e começar a expressar vários neuroectoderma associados marcadores, como HNK1, AP2 e TrkC (Fig. 2B). Estas células grandes diferenciada continuarão a se multiplicar e as colônias irão aumentar de tamanho, procedendo-se espontaneamente para expressar o marcador precoce neuronal β-tubulina III (Fig. 2B). O marcador mais maduro neuronal Mapa-2 começará a aparecer em áreas das colônias, onde as células se acumularam (Fig. 2B). Coincidente com a aparência das células neuroectodérmico e diferenciação neuronal, o fator de transcrição específicos neuronal Nurr1, implicado na diferenciação neuronal dopaminérgica e ativação da tirosina hidroxilase (TH) gene 16, vai translocar para o núcleo (Fig. 2B). Depois de separado, o hESCs RA-tratados formarão flutuante aglomerados celulares (neuroblastos) em um culto de suspensãoure para continuar o processo de diferenciação neural. Após a remoção de bFGF e depois permitir a neuroblastos para anexar a uma placa de cultura de tecidos ou semeadas em um polimerizado laminina / colágeno 3-dimensional da matriz em um meio isento de soro definido, β-III-tubulina e Mapa-2-expressando, neurite de rolamento de células e células pigmentadas começarão a aparecer com um aumento drástico em termos de eficiência, em comparação com diferenciação multi-linhagem espontânea de hESCs sem tratamento sobre o mesmo período de tempo, e poderia ser sustentado por mais de três meses (Fig. 2C).

Figura 1 Um esquema de bem-controlados de indução eficiente de células-tronco pluripotentes humanas exclusivamente a uma linhagem particular clinicamente relevante pelo simples fornecimento de pequenas moléculas.

Figura 2 (A) Esquema mostrando a linha do tempo de protocolo de dirigido diferenciação neuronal de hESCs. (B) Após a exposição de hESCs indiferenciada ao ácido retinóico (AR), sob o sistema de cultura definido, grande diferenciados Oct-4 (vermelho) células negativas dentro da colônia começaram a surgir, em comparação com o mock-tratados (DMSO) hESCs como o controle . RA-induzida diferenciada células Oct-4-negativos começaram a expressar HNK-1 (vermelho), AP2 (vermelho), TrkC (verde), e depois β-tubulina III (vermelho), consistente com a diferenciação neuroectodérmico cedo. Estas células continuou a amadurecer, em última análise expressando o marcador neuronal Mapa-2 (verde), geralmente em áreas onde as células começaram a se acumular. Coincidente com a aparência das células neuroectodérmico e diferenciação neuronal, o fator de transcrição específicos neuronal Nurr1 (verde), implicados nadiferenciação neuronal dopaminérgica e ativação da tirosina hidroxilase (TH) gene, translocada para o núcleo. Todas as células são mostrados por DAPI coloração de seus núcleos (azul). (C) induz a diferenciação de tratamento RA em direção a uma linhagem neuronal com alta eficiência, avaliada pela extensa rede de neuritos-bearing células que expressam β-tubulina III (vermelho) e Map-2 (verde, mostrado em uma matriz 3-dimensionais). Setas indicam células pigmentadas típico daqueles no SNC. Todas as células são mostrados por DAPI coloração de seus núcleos (azul) na inserções. Barras de escala: 0,1 mm.