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Artigo de método

Cirurgia estereotáxica de roedores e animais Melhorias Resultado do Bem-Estar de Neurociência Comportamental

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DOI:

10.3791/3528

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30 de janeiro de 2012

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Neste artigo

Resumo

Cirurgia estereotáxica em roedores permite a administração alvo de drogas ou estimulação elétrica e gravações em despertos, comportando-se animais. Neste vídeo de apresentação iremos demonstrar recentes refinamentos processuais para este procedimento de longa data que a taxa de sobrevivência melhorou com sucesso e perda de peso reduzido pós-cirúrgico.

Resumo

Cirurgia estereotáxica para implantação de cânulas em regiões específicas do cérebro tem por muitas décadas foi uma técnica muito sucesso experimental para investigar os efeitos do neurotransmissor localmente manipulados e vias de sinalização em vigília, os animais se comportando. Além disso, a implantação estereotáxica de eletrodos para a estimulação eletrofisiológica e estudos de gravação tem sido fundamental para a nossa compreensão atual de neuroplasticidade e redes cerebrais no comportamento dos animais. Conhecimento cada vez maior sobre a otimização de técnicas cirúrgicas em roedores 1-4, conscientização pública sobre questões de bem-estar animal e legislação rigorosa (por exemplo, de 2010 a Directiva da União Europeia sobre o uso de animais de laboratório 5) nos levou a aperfeiçoar esses procedimentos cirúrgicos, particularmente com respeito a implementação de novos procedimentos para a suplementação de oxigênio e da monitorização contínua da oxigenação do sangue e os níveis de frequência cardíaca durante a cirurgia, bem comointrodução de um protocolo padronizado para atendimento pós-cirúrgico. Nossas observações indicam que essas modificações resultaram em uma taxa de aumento da sobrevida e uma melhora na condição geral dos animais após a cirurgia (por exemplo, perda de peso menor e um animal mais ativo). Esta apresentação de vídeo vai mostrar os procedimentos gerais envolvidos neste tipo de cirurgia estereotáxica com especial atenção para o nosso várias modificações. Vamos ilustrar esses procedimentos cirúrgicos em ratos, mas também é possível realizar este tipo de cirurgia em ratos ou outros animais de laboratório pequenos usando adaptadores especiais para o aparelho estereotáxico 6.

Protocolo

Nota: técnicas de anti-séptico deve ser empregado durante todo o procedimento. Todos os instrumentos e materiais (cotonetes, gazes, etc) que serão utilizados durante a cirurgia deve ser esterilizado em autoclave. A máscara cirúrgica, gorro cabelo e luvas estéreis devem ser usados. A área de trabalho e do aparelho estereotáxico deve ser cuidadosamente limpos e desinfetados com uma solução de etanol 70%.

1. Procedimentos pré-cirúrgicos

  1. Configurar o aparelho estereotáxico e todos os materiais necessários. Pré-aquecer a almofada de aquecimento.
  2. Coloque a cânula em seu apoio e verificar se ele é reto.
  3. Ligue o sis....

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Discussão

O principal objectivo desta apresentação de vídeo é familiarizar os neurocientistas comportamentais com os princípios básicos da cirurgia estereotáxica. Pesquisadores que já estão realizando a cirurgia estereotáxica pode também beneficiar deste vídeo e considerar alguns dos refinamentos processuais para o uso em seu próprio laboratório. Um conhecimento cada vez maior sobre a otimização de técnicas cirúrgicas 1-3, o desenvolvimento de novos anestésicos e analgésicos para uso em medicina humana e veterinária

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Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Os autores agradecem Gerrits Dr. Peter para os desenhos usados ​​no vídeo.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Nome do reagente Companhia
Álcool a 70% VWR
Antisedan (atipamezole) Orion
Sulfato de atropina 0,5 Pharmachemie BV
Bulldog pinça hemostática Aesculap
Cânulas Component Supply Co.
Clorexidina 0,5% AppepPharma
Limpeza em pó Alconox
Varas de algodão Hartmann BV
Dexdomitor (dexmedetomidina) Orion
Broca Dremel 8000
Duratears Z Alcon
Durogrip Naaldvoerder conversar 130 milímetros Aesculap
Durotip Fijne schaar ret.sp / st 110 milímetros Aesculap
Gaze Medicomp (5x5)
Almofada de aquecimento Harvard Apparatus
Pinos de insetos (estiletes) Entosphinx (Czech Republik)
Ketamina 10% (ketamina) Alfasan
Micro-Halsted ponta reta Aesculap vet-
Molinea Hartmann BV
NaCl 0,9% Baxter
Agulhas (25G) Terumo
Oxímetro Edan Instruments, Inc.
Pentobarbital Farmácia da UMCG
Rimadyl Pfizer
Lâmina de bisturi n º 23 Swann Morton
NR Scalpelholder. 4 133 milímetros Aesculap
Chave de fenda Loja Hardware convencionais
Simplex rápida (cimento dental) Kemdent
Parafusos crânio Component Supply Co.
Espátula VWR
Spongestan especiais Johnson & Johnson
Stereotacts Kopf Instruments
Pinça cirúrgica 100 milímetros Aesculap
Material de sutura Safil 5 / 0 Aesculap
Seringa de 10 ml Omnifix
Seringa de 1ml Terumo
5ml da seringa Omnifix
Xilocaína (lidocaína / adrenalina) Astra Zeneca

Referências

  1. Russell, W. M. S., Burch, R. L. The Principles of Humane Experimental Technique. , Methuen, London. (1959).
  2. Richardson, C. A., Flecknell, P. A. Anaesthesia and post-operative analgesia following experimental surgery in laboratory rodents: are we making progress? ....

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Reimpressões e permissões

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