颈动脉输液的紫杉烷类化合物在小鼠体内的药代动力学和药效学分析

Summary

该方法通过颈动脉递送稳定的药物溶液，以评估在小鼠模型中的新颖的药物的药代动力学的目标开发的。

Abstract

当提议使用一种药物，药物组合，或药物递送到一个新的系统中，一个必须评估药物的药代动力学研究中的模型。作为使用的小鼠模型是经常在临床前药物发现和药物开发^1-8的一个重要步骤，有必要设计一种系统引入药到小鼠中的均匀，可重复的方式。理想情况下，该系统应允许血液样本的采集以规则的间隔在一组时间过程。测药物浓度通过质谱的能力，允许调查者跟着变化血浆药物水平随时间推移在个体小鼠^{1中，9，10。}在本研究中，紫杉醇被引入的转基因小鼠作为连续动脉灌注在三个小时，而被同时取出的血样通过眼眶后出血，在设定的时间点。颈动脉输注是一个潜在的替代颈静脉输注，当因素如乳腺肿瘤或其他障碍物使颈输液不切实际的。使用这种技术，紫杉醇浓度在血浆和组织中达到相似的水平相比，颈静脉输注。在本文中，我们将展示如何成功地通过制备一种优化的导管，用于单个小鼠模型导尿颈动脉，然后展示如何插入并固定导管进入小鼠的颈动脉，螺纹的导管的端部通过所述背面鼠标的颈部，和钩鼠标的泵来输送药物涌入的受控速率。多个低容量眼眶出血允许血浆药物浓度随时间的分析。

Introduction

药物输注通过颈动脉，可以通过优化的设备和技术，可靠和可重复地进行。该过程是不复杂的，但它确实需要精细的控制和对细节的关注。优异的护理和灵巧需要，分离出颈动脉并插入导管，其通常可以通过实践来获得。手术由经验丰富的技术人员不得超过一小时。手术成功后，鼠标应显示正常和健康的（虽然鼠标可反应的实际药物输注），以及药物（多个）可以在受​​控的，均匀连续的剂量给药。血液样本必须取自一个网站比颈动脉等;眼眶出血被证明易于收集和令人满意的药物浓度分析。

最佳尺寸和形状的导管是在执行一个成功的输液¹¹制胜的法宝。我们发现导管可用commerciallÝ往往过大和/或太柔软，以允许方便地访问小鼠的颈动脉。它证明​​了优选从用于将鼠标连接到输注注射器的聚乙烯管材时尚导管。因此，所有的管道，连接器和针是一致的尺寸，这简化了输液组件的。使用这种技术，它是没有必要的导管的尖端推入动脉过去的地步，它仍然是可见的，并且血流量颈动脉未恢复，直到经过所述导管最初固定。这减少或具有导管的穿刺动脉的危害压出血流的高压。该导管的设计本文不包含一个“凸点”，以保持其位置，所以固定好导管用缝线和手术胶带是当务之急。

输注可以是优选的共同静脉推注，作为更好地模拟了临床给药药物，如紫杉烷类^{3，12，13，}在这里所描述的技术最初被开发为允许注入到小鼠模型，其特征在于访问颈静脉或股静脉排除由乳腺肿瘤的生长和/或所述插入区的过度血管化。这种方法往往可能合适，即使在无肿瘤小鼠：虽然分离和插入导管颈稍微更具侵入性的，我们发现最好的颈静脉，因颈壁的倾向裂口导致多个失败插入和故障，完成在3小时的时间过程。

虽然这里示出的结果是从C57BL / 6J（内部饲养的）小鼠中，我们已经使用此技术成功地注入紫杉醇成几个品系的小鼠，包括FVB和混合菌株，跟随在小鼠模型转基因操纵的药代动力学下调细胞转运功能。血液和组织样品收集表明预期paclitax的水平埃尔，在颈静脉输注¹后见到的水平的范围。这种技术可预期工作得同样好于其他小鼠模型，并与其它输注液。

Protocol

该协议已获得的Fox Chase癌症中心实验动物管理和使用委员会和实验动物设施，并发现符合人道对待动物组织指导方针。

1.前期准备

1. 制备导管的：从一个短长度的聚乙烯管，改性，以形成变薄的，钝端（ 图3A）制备的导管。使多个导管提前和保存下去。
   1. 点燃本生灯，并调整建立了稳定的低火焰。持有油管靠近火焰软化聚乙烯。当管道开始熔化，慢慢拉开的两端以创建管道的薄壁部，大约0.25毫米外径。
   2. 切坡口沿着薄款约为0.75公分。这样可以确保足够的管被固定在动脉，而无需创建一个超长的导管。
      注：长的细端日Ë导管有一个倾向堵塞。超长年底还可能保持足够的液体以显著改变导管的液体体积容量。
   3. 当适当加热，最终变得略显圆润，并扩大 - 通过快速穿过火焰生硬的坡口。尖钩小幅回升，这有助于锚管在插入到动脉。
   4. 从那里开始瘦了点切管6.0厘米。这使得一个非常易于管理的导管，这是足够长的时间，通过线程退出，从颈部和持有和使用舒适的工作，但足够短，以防止鼠标啃上多余的管道，也不需要太多额外的输液量，以清除最初的生理盐水。
   5. 准备约为0.2 ml肝素溶液的注射器，淋上用钝针。将针头插入导管（ 图3B）的广角端。填充导管，肝素，小心以确保在无气泡油管。在无菌区将肝素的注射器和导管一边。消毒导管通过γ照射，通过将导管（多个）的培养皿中，并暴露于γ-照射20戈瑞。如果您没有访问到的伽玛射线源，请与您的动物设施调查等方式消毒，如天然气或化学消毒。不要高压，聚乙烯，不能加热灭菌。
2. 创建一个盐水引线（ 图3B）。
   1. 准备以约0.5毫升第二注射器无菌生理盐水，小心以确保无气泡线。
   2. 切的第二管件的，大约为15厘米，并且滑动到修成平头的注射器针头。附上一个连接器端口的管的自由端。
   3. 测试盐水的该流动通畅，通过引线顺利前进一个小体积的生理盐水。使用这种盐引导管插入后，检查过流该导管，并以冲洗血液的线。在无菌区预留生理盐水的注射器。
3. 在手术之前，消毒设备通过高压灭菌，或者通过气体灭菌或玻璃珠灭菌。
4. 准备无菌手术区。
   1. 擦拭工作台，显微镜表面消毒剂，如70％乙醇或二氧化氯。盖台和显微镜的底座采用了干净的一次性吸水垫。
   2. 由覆盖有两层清洁，吸收纸，牢固地附着有粘接带制备的外科板。
5. 奠定了所有的手术耗材（如编目的材料清单），使它们容易获得。
   1. 切三种长度的无菌缝合，每个8厘米，并预留与其他物资。放置一个端口，这将是容易获得的（ 图3B）。

2.手术

1. 动物的准备
   1. Anesthetize老鼠暴露在2-3％异氟醚麻醉室连接到蒸发器的精度。从室撤回鼠标和鼠标的颈部/躯干上部刮毛，并在下面的右耳（现场导管出口处的）。负责兽医凡士林眼药膏眼睛，防止干涩，而在麻醉下。确保动物在手术准备通过使小鼠充分的时间在吸入室中制备（至少2分钟）之前，或者通过制备过程中通过鼻锥的手段施用异氟烷对小鼠不唤醒。返回鼠标麻醉室。
   2. 当鼠标足够的惰性，转移到无菌手术区，将麻醉鼻锥在鼠标的鼻子和嘴，异氟醚转移到鼻锥流量。确认正确的麻醉捏掌钳;当鼠标显示无反应，请继续下一步。
   3. 把鼠标在它的后面，与头部的面朝向研究者。保护耳朵，脱颖而出，爪子，后肢爪子外科板用胶带或其他限制装置，以保持鼠标的稳定。清洁用聚维酮碘和70％乙醇的切口区域。
2. 颈动脉的隔离
   1. 使1cm的纵向略切到颈部的中线的右侧。使用镊子分离脂肪和肌肉以暴露气管（ 图4A）。定位跑步平行于气管（ 图4B）的颈动脉。
   2. 小心使用镊子分离筋膜覆盖在动脉（ 图4C）。轻轻从颈拉迷走神经一旁，并插入到钳子之间的空间。轻轻打开钳创建的筋膜间隙，然后小心地拉离动脉神经，从岔路口附近的喉部（前端）的动脉，同比增长（后部）尽可能（至少3mm）（ 图4D）。
   3. 清除任何重新maining筋膜直至动脉是良好分离的（ 图4E）。加一滴生理盐水对手术区域偶尔组织保持湿润，从而减少脆，不易撕裂随机。
3. 缝合位置和动脉准备的导管插入（ 图4，图5）。
   1. 使用镊子画动脉下丝缝合线。扎一个安全结到尽可能封闭动脉朝向前尽可能（ 图4F）。
   2. 绘制动脉下第二个线程。配合可伸缩结暂时关闭掉动脉尽可能朝着后尽可能（ 图4F）。
   3. 绘制动脉下三分之一线程。配合前两个缝线之间一个非常宽松的结，以用于快速固定后放置（ 图4G）的导管。
   4. 用了一下70％的乙醇润湿他们持有的所有缝线出来的方式结束。
4. 随着缝线，抢较低的结拉动脉稍拉紧。尼克上面的动脉，但非常接近，前部缝合（ 图4H）。要注意不要剪得太深，但检查的缝隙，以确保开口通畅。
5. 从注射器针头取下肝素充满导管，尽量避免在两端产生空气的大口袋。操纵导管在一个舒适的角度，斜角的位置，一般向下，并稍微向右侧（右撇子）。
6. 按住上缝合，以保持动脉剩余稍微拉紧，轻轻插入导管进入缝隙（ 图4I）。使用镊子举行前缝线和拉下来动脉导管以上（推过的导管可能会导致斜削端刺破动脉）。仔细释放导管和前缝合。

导管的固定和血流启动（图4J，图5B）。

1. 通过拧紧中间缝线打结，靠近导管的入口进入动脉固定导管。使紧张的三重结，但一定不要拉那么紧，阻碍气流通过导管。通过与前缝线打结下来，入口下面的动脉进一步固定导管。
2. 附加的盐水引到导管的连接器插头的装置，再一次尝试，以避免引入气泡进入线。
3. 抓住后缝线的两端，轻轻拉动释放的结。机动缝合下动脉，在导管末端（不要删除线程）。血液应该流入导管;如果不存在血流量，轻轻摆动导管以试图去除收缩。
4. 当流量出现通畅，使用最后的线程（从后缝合），以配合额外的结，略高于中间缝合。

特导管mporary密封。冲洗血液的导管，然后使用止血钳导管靠近所述连接器插头的末端。卸下连接器，并将其与端口插头替换以密封导管的端部，然后取出止血。

重新定位导管从颈背部退出。

1. 在每个手钳，用一对钳子的时间来保持正下方的前部缝合的导管，并与其他中，按一个扭结到导管所以它很容易弯曲到侧面。重复创建第二个纠结。这使得导管的自由端以朝向鼠标的头部的背面拉出，而不强制导管的尖端转动横向对动脉壁。
2. 转动鼠标到其（左）侧，保持鼻锥体定位在嘴和鼻子，并清洗，用70％乙醇和聚维酮碘的切口区域。做一个小切口（约4m​​m）下方，右耳后面。 使用镊子举行的皮肤瓣开放，而工作在皮肤上的生硬空洞探测过脸颊创建一个频道，向腔内的脖子。明智的做法是把，而不是试图腺体与皮肤之间去探测周围的唾液腺。使用镊子小心地免费为探针退出的空间。
3. 通过探头螺纹口塞/导管颈退出。不要拉太硬;可以肯定的导管未压碎或收缩血管或器官。

关闭和恢复。施用局部止痛剂（ 例如布比卡因）到肩部的切口，并覆盖有防水，外科胶带伤口。申请的第二片的粘合带，以进一步固定导管。

1. 管理外用止痛胸部切口，并关闭创面用丝线或订书钉。
2. 从麻醉中取出小鼠，并允许动物在一个干净的恢复，加温加热垫的顶部空间（地点笼或在加热灯下），至少30分钟。

3.输液

1. 制备的5mg / ml的溶液紫杉醇/甲醇的等分试样。
   1. 测量50毫克的紫杉醇入15ml离心管中。加入10毫升无菌甲醇。帽筒。通过手工或在旋转摇动器在室温下旋转，直至粉末溶解。
   2. 等份加入500μl的溶液至20小时，冷冻安全管，并储存在-20℃。
   3. 解冻个别等分在室温下或在37℃的水浴中，立即输注之前。
2. 准备输液泵（ 图6）。
   1. 切成大约40厘米聚乙烯管的长度长。附加一个钝针的一端，以及连接器端口到另一个。
   2. 制定药物与一内径已知的注射器（最可编程的泵将所需要的注射器管的直径，以计算日的速度Ë泵臂）。连接针注射器和通过所述针和管装载药物。
   3. 根据制造商的指示位于所述注射器进入泵内。灌泵，以使药物被顺利地流出的连接器插接件，并准备用于输液。
3. 鼠标连接泵。
   1. 按住鼠标稳定，使用止血钳导管，靠近港口插头。除去塞子，并替换为附连到注射器和管接头。
      注：血液可能开始通过管道回流。
   2. 迅速地管理一个快速泵以清除导管的体积（通过观察6厘米管子的体积计算出的经验），然后立即切换到所需的输注速率。
4. 继续紫杉醇注射了三个小时的课程。
   1. 监测管偶尔来检查是否有泄漏在路口，因为这往往是流动鼠标堵塞的迹象。观看鼠标预期的或意外的反应，输液（嗜睡或亢进，不适的迹象）。
   2. 根据输液的长度和性质，鼠标可能无法进食或喝水，但一定要根据该机构的既定政策，提供获得食物和水。要知道，通过收集大量的血液脱水鼠标的潜力。
   3. 继续保持温暖笼用加热垫或灯，除非鼠标似乎渴望远离热量。如果动物内的几个小时的手术后不施以安乐死，实施方案为外科手术后的治疗的动物，包括无菌的住房条件和治疗手术后疼痛。
   4. 密切监视鼠标，特别是在最初的几个分钟，以确保它不会拉出，通过多动管路，或刺激，从管道（可能是一个贫穷的插入的符号）。如果鼠标没有过度活跃，不​​断的监测，环可能不是必需的，但检查小鼠常规地，以确保动物没有得到在油管纠结。安全带和绳索系统都可以买到，但它们的使用已经超出了协议的范围。
5. 采集样品。
   1. 收集血样定期通过颌下或眶后出血（如果协议不使用乳腺肿瘤模型中，通过在同一时间作为颈动脉导管插入颈静脉导管考虑采集的血液）。要小心，不要拔输液管。如果通过眶后放血收集，轻轻麻醉小鼠用吸入麻醉剂（ 例如，甲氧氟烷），所以人们不必通过颈背抓住固定的小鼠。
   2. 旋血液中hemocrit离心机以血细胞从血浆中分离出来。使用文件或钻石尖笔管的得分在脸相分离。破管只收集血浆，成小，冰柜​​安全管。店 -80℃下直至分析。
      注意：如果一个hemocrit离心机不可用时，在高速传送血液样品放入微量离心管中，并在旋转的微型离心分离血细胞从血浆中分离出来。收集血浆成的第二管，并储存于-80℃。
   3. 通过CO ₂窒息安乐死鼠标。收集组织 - 从目的和闪冻于液氮中的器官（约20 50毫克）。储存在-80℃直至分析。

4.样品分析

注：所有样品为这个协议是通过外部实验室用液相色谱-串联质谱法分析（LC - MS / MS），计算出的紫杉醇浓度谁如下：

1. 从样品中提取的紫杉醇。均化在0.1％乙酸的组织样品，在提取之前50％的甲醇。提取紫杉醇通过液/液萃取，用甲基叔丁基醚（MTBE）强化内部模拟（多西他赛）的标准。去除MTBE和干样品。重新悬浮于50％乙腈，0.1％乙酸溶液。
2. 准备校准标准。加紫杉醇的已知浓度到合适的C57BL / 6的矩阵，得到标准的最终范围（从1〜20,000纳克/毫升的血浆样品，在0.1至5000毫微克/毫升为组织样品）。提取标准，一式两份，用同样的方法，对所研究的样品的上方。测量中使用电喷雾离子化通过HPLC / MS / MS的样品紫杉醇峰。
3. 使用紫杉醇的面积比为内标计算出浓度。使用校准标准，配合曲线上建立一个标准曲线，插值研究样本。通过样本的同质化前的起始重量标准化研究样本的浓度。

Representative Results

紫杉醇分布如下在15分钟的高速输注3小时，给药方案可预测的模式，随后是165分钟的低速输注。

图1示出颈静脉输注血浆紫杉醇浓度和颈动脉输注的比较。紫杉醇的浓度迅速下降，在第15分钟以下的初始高体积输注，然后在接下来的150分钟平稳。通过比较，在差的输注紫杉醇水平开始比较低，而且盘旋向上并在整个实验下来。这最有可能是由于在输液早期的管路堵塞造成的。该测定的记录显示的鼠标有很少或没有外部的反应，输液，证实了药物的劣管理的概念。 图2示出了紫杉醇在肝脏和脑组织，以及血浆的相对水平，以结束3小时输液。

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图1：颈动脉和颈静脉输液过程中血浆紫杉醇水平曲线表示血浆紫杉醇浓度在个体小鼠。每只小鼠接受了双相输液，由一个初始高速的，15分钟输注0.42毫克/千克/分钟，随后立即低速，165分钟，输液的0.021mg / kg / min的。的曲线（AUC）为颈动脉输注下面积为大约59微克/毫升∙分钟对的AUC为约37微克/毫升∙分钟颈静脉输注。紫杉醇从颈动脉灌注产生的曲线计算的半衰期为10分钟，对颈静脉输注为11分钟。颈动脉灌注表明药物浓度大致相当的水平相比，颈内静脉滴注。连续的低浓度，或浓度的那个周期上下，经常řepresent一个贫穷的输液。

图2：紫杉醇浓度由组织紧随最后血样的3小时的紫杉醇输注并收集，将小鼠处死，并收集肝脏和脑组织样品。质量不合格的分析被收购血浆紫杉醇浓度水平和组织。这个数据表示从颈动脉灌注鼠在图1中采集的样本。

图3：手术用具。 （A） 导管生产：拉己方导管不断下跌材料费用，同时允许重搜索者来定制尺寸和导管到小鼠的年龄和大小的形状（B）的手术前准备：三（3）丝缝合线，每个大约8厘米;无菌口堵塞;生理盐水的注射器和铅;导管，连接于肝素的注射器。

图4：颈动脉和导管插入的制备。 （一）经皮肤切，走到一边腺体和使用产钳粗暴单独发，露出肌肉。（B）使用镊子轻轻分开肌肉暴露出右侧气管。颈动脉会变得最大，厚壁血管可见，平行延伸到气管。（C）周围动脉筋膜断裂。（D）从颈动脉分离迷走神经。（五）继续去除筋膜，直到carotid为沿腔完全隔离。（F）的缝合永久结在前壁末端，和滑结在后部末端。（G）的第三缝线下颈螺纹并非常松散地打结。（H）的动脉中的带切口的上方前部缝合。（ I）将导管插入切口中动脉。抢前缝合线用钳子拔下来动脉导管上。（J）安全导管颈动脉与所有三个缝线。

图5：缝线放置手术部位的示意图前后导管安装甲对应于照片。图4G，以在动脉中增加了一个缺口的， 如图4H。 图4J。

图6：输液器式注射器的示意图填充有药物，并盖有一钝针。聚乙烯线高度注射器颈动脉导管。泵慢慢压缩注射器，直接递送均匀剂量进入血液。

Discussion

颈动脉灌注是在本研究中紫杉醇的药代动力学的显著技术。颈动脉灌注是一种方法在整个循环系统¹⁴快速分发药品。 3小时输液是一种更接近模拟药物临床管理，如紫杉烷类化合物比推注。该手术可以由单个个体可靠地进行，手术时间相对较短，并且成功率> 75％。样品收集后，必须用适当的方法进行分析。我们用质谱测定血浆和组织样品中的紫杉醇浓度。为了进一步验证这项技术，我们派出的血液和组织样本，以一个独立的实验室进行分析。这个数据被绘制为对每个动物进行测试（ 图1）个体的血浆紫杉醇浓度曲线，和紫杉醇的分布在不同的组织（ 图2）进行了比较。在每一种情况下，它是即时通讯portant考虑，最好的方法来分析药物的分布和/或代谢，这取决于药物和所关注的系统。对于不同的药物的测定其他选项可能包括的HPLC-UV或免疫测定法^2。

成功的颈动脉导管必不可少的两个主要因素是塑造良好的导管和卓越的动脉隔离。根据小鼠模型的大小塑造导管是最重要的。如果导管直径过粗，插入到动脉就会过于困难，而太细的导管将很难确保和可能之前或灌注过程中堵塞。导管尖端的角度和清晰度，还必须在一个中等范围;一个尖过于尖锐可刺破动脉壁，而前端过于平淡将难以插入到动脉。这里给出的测量是采用10周龄的C57BL / 6J小鼠，约20克衍生，作为模型模板。测量必须被缩放向上或向下经验，以适应个别车型。

颈动脉的隔离必须是一个微妙的，故意的过程中避免对不必要的组织损伤，并防止大规模出血。皮下脂肪通常可以很容易地分离低到中等锋利的钳。肌肉组织在颈动脉应该分开用中细尖镊子沿着肌肉纤维的偏压。如果更广泛的差距是必要的，技术人员必须格外小心，以避免破裂的小血管。一旦颈动脉是可见的，但仍然有筋膜需要被从带细尖镊子动脉tweezed远离收费金额。最后，迷走神经，必须从颈动脉中分离，而不损坏任一。当颈动脉被完全隔离，它应该有可能插入钳子的下面，以在动脉上的任一侧上的空的空间（参见图4E）。

当特鲁BLE拍摄可怜的输注，通过审查泵上的说明，以确保调查人员已正确地设定泵达到预期剂量开始。随后，仔细考虑更改将被引入到实验动物的数量。药物的稀释液必须被计算，使得该剂量体积为宜：体积一定不能太大，动物耐受，和理想地不会显著影响血压;然而体积必须足够大，以使泵可靠地传送，并​​且将创建一个稳流，以避免堵塞在路口。如果木屐成为一种经常发生，可考虑改用一个较小规格（直径较大）和针管。此外，如果血浆中药物的含量没有达到预期的水平，研究人员应检查小鼠验尸以确定导管是否仍远放置在动脉和自由流动的，并修改导管的形状/尺寸是必要的。

该usefuln这种方法的ESS的可能等因素的大小和被摄体的一般健康状况，并输注时间的预期长度是有限的。手术和输液可以负担过重已经心疼的主题。甚至在一个健康的动物，颈动脉导管是仅适用于短期输注，通常几个小时至几天。考虑什么疼痛缓解的方法将被使用，如果小鼠显示不适的迹象响应于药物输注，如局部麻醉的重复应用到伤口位点，或先发制人全身镇痛药。这将是必须有经当地动物监管机构或IACUC所有动物的工作，以获得相应的权限，才能执行此过程。如果有必要有一个较长的输液，或有鼠标生存输液为在延长的时间周期，可替代输注方法必须加以探讨。

具有在研究掌握颈动脉灌注后紫杉醇的药代动力学，我们计划使用这种技术在未来的研究中其他药物在C57BL / 6J和FVB小鼠，和其他小鼠模型的效果，并ABCC10调制器。

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Polyethylene tubing 0.024” OD X 0.011” ID	Braintree Scientific, Inc.	PE10
3 Blunted needles (30 gauge)	Braintree Scientific, Inc.	NB-30
Stainless steel port plug (28 gauge)	Braintree Scientific, Inc.	PP-28	Slightly larger than PE tubing ID, to fit snugly and keep a tight seal.
2 Stainless steel connector plugs (30 gauge)	Braintree Scientific, Inc.	C-30
Three 1 cc syringes	Becton, Dickinson and Co.	309659
Sterile 0.9% Saline solution	Hospira	0409-7984-37
Cath-Loc HGS Heparin/Glycerol Solution	Braintree Scientific, Inc.	HGS
Silk suture	Braintree Scientific, Inc.	SUT-S 113
Vanna Scissors (micro-scissors)	World Precision Instruments	14122	This model has a curved tip, but straight-tip scissors work as well.
Hartman Mesquito Hemostatic Forceps	World Precision Instruments	501705
Betadine Swabsticks	Perdue Products L.P.	BSWS1S
Bupivacaine	Hospira	0409-1160-01	May be replaced with Lidocaine, or similar local anesthesia.
Paclitaxel	LC Laboratories	P-9600
Methanol	Sigma-Aldrich	32213
Micro-Hematocrit Capillary Tubes, Heparinized	Fisher Scientific	22-362-566
Micro Capillary Tube Sealant	Fisher Scientific	02-678
C57BL/6J mice	Fox Chase Cancer Center, Laboratory Animal Facility in-house-bred
API 4000 Q-Trap mass spetrometer	Applied Biosystems