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O protocolo de estudo foi aprovado pelo Comitê de Ética da Faculdade de Medicina da Universidade de Harran (decisão nº HRU/23.12.23; 10 de julho de 2023). Devido ao desenho retroativo, o consentimento informado foi renunciado. Todos os procedimentos foram conduzidos de acordo com os padrões institucionais do laboratório. As ferramentas de pesquisa usadas neste protocolo estão listadas na Tabela de Materiais.
1. Desenho do estudo e seleção de pacientes
Os resultados da cultura do trato respiratório inferior de pacientes internados em uma UTI de doenças torácicas de hospital universitário entre março de 2017 e março de 2023 foram revisados retrospectivamente. Os pacientes foram incluídos se a COVID-19 não fosse suspeita clínica ou radiologicamente e os resultados do teste de reação em cadeia da polimerase SARS-CoV-2 (PCR) fossem negativos. Pacientes com menos de 18 anos e aqueles com resultados positivos em PCR foram excluídos.
Os pacientes foram categorizados em grupos pré-COVID-19 (antes de março de 2020) e pós-COVID-19 (março de 2020 e posteriores) com base na data do primeiro caso confirmado de COVID-19 na Turquia.
2. Coleta de espécimes
Amostras do trato respiratório inferior incluíram escarro, aspiração traqueal profunda (DTA) e lavagem broncoalveolar (BAL) coletadas sob condições assépticas, conforme práticas clínicas padrão de UTI.
Amostras de escarro e DTA foram obtidas de pacientes intubados e não intubados utilizando técnicas de sucção estéril. Amostras de BAL foram coletadas durante broncoscopia de fibra óptica usando instilação salina estéril seguida de aspiração.
3. Avaliação preliminar do espécime
Estípias de escarro e DTA foram inicialmente avaliadas por coloração de Gram. As amostras foram consideradas adequadas para cultivo se contivessem pelo menos 25 leucócitos polimorfonucleares e menos de 10 células epiteliais escamosas por campo de baixa potência com ampliação de 100x. Espécimes que não atenderam a esses critérios foram excluídos.
4. Processamento cultural
As amostras de escarro foram processadas usando um método de cultura qualitativa. As amostras foram inoculadas em ágar sanguíneo de ovelha a 5%, ágar azul de metilena e ágar chocolate, depois incubadas aeróbicamente a 37°C e avaliadas após 24 e 48 horas. Apenas microrganismos predominantes que demonstraram crescimento que se estende até pelo menos o segundo setor de estriação foram considerados clinicamente significativos.
As amostras DTA e BAL foram processadas usando métodos quantitativos de cultura. Aliquotas foram inoculadas no mesmo meio e incubadas sob condições idênticas. Limiares de crescimento de pelo menos 100.000 unidades formadoras de colônia (CFU) por mL para DTA e pelo menos 10.000 CFU por mL para amostras de BAL foram considerados significativos.
5. Identificação de microrganismos
Todos os isolados que atenderam a critérios pré-definidos foram identificados usando espectrometria de massas de tempo de voo por ionização por dessorção a laser assistida por matriz (MALDI-TOF MS), de acordo com procedimentos laboratoriais padrão.
6. Registro e análise de dados
Características demográficas, tipos de amostras, resultados de cultura, microrganismos identificados e resultados de descarga foram registrados sistematicamente. As distribuições de microrganismos foram comparadas entre os períodos pré e pós-COVID-19.
7. Análise estatística
As análises estatísticas foram realizadas usando SPSS (versão 15.0) e o software Minitab. A normalidade das variáveis contínuas foi avaliada usando o teste de Shapiro-Wilk. Variáveis categóricas foram comparadas usando o teste qui-quadrado. Foi realizada uma análise de regressão logística para avaliar associações entre distribuição de microrganismos e mortalidade. Um valor p menor que 0,05 foi considerado estatisticamente significativo.