25 de novembro de 2012
Esta técnica cirúrgica ilustra a injecção de vectores de terapia genética e de células estaminais para o espaço sub-retiniano do olho do rato.
O primeiro passo é montar o dispositivo a partir de um conjunto para coleta de sangue. Corte uma agulha de calibre 25 e três quartos deste trecho de oito centímetros de tubo estéril. Com um conector tipo lure lock, você pode adquirir uma agulha capilar de vidro com diâmetro de cem mícrons, ou fabricar uma você mesmo com um puxador de pipetas Sutter P 97, e então aspirar solução salina estéril para preencher o espaço morto no tubo.
Fixe um tubo capilar de vidro na extremidade do tubo plástico estéril, e jogue um pouco de solução salina através da agulha para garantir que esteja corretamente fixado e sem vazamentos. Se você observar ao microscópio, verifique a pressão aplicada e a taxa de ejeção do fluido pela ponta fina; usaremos uma solução colorida para representar o vetor viral ou as células-tronco. Coloque isso em uma placa de Petri estéril, aspire um pouco de ar e, em seguida, a solução de injeção.
Para os nossos propósitos, utilizamos P cinco camundongos. Nesta imagem, é possível observar o focinho. A localização do olho está coberta por uma pálpebra.
As linhas pontilhadas mostram a margem palpebral e o sulco palpebral onde será feita a incisão. Tesouras retas de Vanis são usadas para fazer uma incisão de um milímetro e meio ao longo da pálpebra fechada. Pinças de pressão para fissura são utilizadas para afastar as pálpebras e projetar o olho com a margem palpebral ligeiramente atrás do globo ocular.
Para realizar a esclerectomia, é importante ser capaz de identificar algumas referências anatômicas. A transição entre a córnea transparente e a esclera é marcada pelo limbo. Logo abaixo da esclera encontra-se o epitélio pigmentado da retina, seguido pela retina e, em seguida, pelo vítreo. O Matomy é posicionado na metade posterior ou no equador do globo ocular, realizando um pequeno corte na superfície com uma lâmina microcirúrgica de 15 graus, especialmente em animais de pigmentação escura.
Um tecido pigmentado marrom escuro ficará visível no ponto da incisão. Se a incisão for feita muito profunda, você realmente verá fluido saindo. Isso representa o vítreo e significa que você foi longe demais.
Passando pela retina RPE. Essa incisão pode ser usada para uma injeção intravítrea. Agora, animal BYO.
O corte neste ponto está completo. Cortes adicionais e arranhões liberarão o vítreo para uma injeção subretiniana; o objetivo é posicionar o tubo de capilar de vidro no espaço subretiniano, exatamente entre a retina e o epitélio pigmentado da retina (RPE). Se o corte for muito profundo, a agulha poderá atravessar a retina e penetrar no vítreo. Insira a agulha paralelamente à parede externa do olho.
Para acessar o espaço sub-retiniano. Aplique leve pressão ao êmbolo e comece a injetar o fluido. Se a agulha estiver corretamente posicionada, será sentida uma pressão contrária moderada e uma bolha sub-retiniana (BLE) será criada no espaço sub-retiniano.
Se a agulha estiver no vítreo, há uma pressão contrária significativamente menor. Para evitar refluxo significativo, mantenha o êmbolo no lugar por mais 15 segundos antes de remover a agulha. Isso permitirá que a pressão intraocular se estabilize.
Empurre suavemente o olho de volta para trás das pálpebras, para dentro da órbita, usando pinças curvas para curativos. Aqui há outro exemplo de injeção sub-retiniana em que o corante preenche o espaço sub-retiniano e é claramente visível em um animal albino. O menisco de ar permite que você veja quando atingir o final da injeção.
Injeções de fluido em um olho fortemente pigmentado são um pouco mais desafiadoras. A inserção cuidadosa da agulha proporcionará excelentes resultados.
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Esta técnica cirúrgica ilustra a injeção de vetores de terapia gênica e células-tronco no espaço sub-retiniano do olho de camundongo. O processo envolve a montagem cuidadosa de um dispositivo para a entrega precisa dos agentes terapêuticos.
Essa técnica cirúrgica permite a administração precisa de vetores de terapia gênica e células-tronco no espaço sub-retiniano de olhos de camundongos perinatais, apoiando a validação pré-clínica de terapêuticas oculares. Ao minimizar danos teciduais e garantir um direcionamento preciso, o método aumenta a reprodutibilidade em fluxos de trabalho de descoberta em estágios iniciais para modelos de doenças retinianas. Ele fornece uma plataforma escalonável para avaliação de candidatos terapêuticos antes de avançar para estudos em animais maiores ou pesquisas habilitadoras para pedido de autorização para ensaios clínicos (IND).
O método integra-se ao continuum de descoberta, desde a validação do alvo até a identificação de compostos promissores e avaliação pré-clínica, especialmente para terapias oculares genéticas e celulares.