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DOI: 10.3791/60562-v
Qimiao Hu*1, Xiaoli Zheng*1, Ruixiang Chen1, Boyu Liu1, Yan Tai2, Xiaomei Shao1, Jianqiao Fang1, Boyi Liu1
1Department of Neurobiology and Acupuncture Research, The Third Clinical Medical College, Zhejiang Chinese Medical University,Key Laboratory of Acupuncture and Neurology of Zhejiang Province, 2Academy of Chinese Medical Sciences,Zhejiang Chinese Medical University
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Fornecido aqui é um protocolo que detalha etapas para estabelecer um modelo animal da dor crônica do borne-isquemia (CPIP). Este é um modelo bem reconhecido imitando a síndrome da dor regional complexa humana tipo I. As hipersensibilidades mecânicas e térmicas são avaliadas, bem como comportamentos nocifensivos induzidos por capsaicina observados no modelo de ratazana CPIP.
O mecanismo subjacente ao CRPS I ainda não está claro. Estabelecer um modelo animal pré-clínico imitando CRPS I será crucial para explorar os mecanismos subjacentes ao CRPS I.O modelo CPIP de rato exibe muitos CRPS I como simitance, que incluem edema de subida traseira e hiperemia no estágio inicial. Após o estabelecimento do modelo, seguido por persistentes hipersensibilidades térmicas e mecânicas.
Comece anestesiando todos os ratos com fenobarbital de sódio. Certifique-se de que os ratos estão devidamente anestesiados beliscando sua pata traseira ou cauda com fórceps. E coloque pomada veterinária nos olhos.
Mantenha o rato em uma almofada aquecida de 37 graus Celsius durante o procedimento. Lubrifique a pata traseira direita e o tornozelo com glicerol. Em seguida, deslize um anel de 70 durometer O para o lado maior de um tubo de um ponto cinco mililitros com a tampa de encaixe cortada.
Insira cuidadosamente a pata traseira no tubo oco até chegar ao fundo. Deslize gradualmente o anel O do tubo para a linha traseira direita perto da articulação do tornozelo. E deixe lá por três horas.
Aplique o mesmo tratamento ao grupo falso de ratos, exceto com um anel O quebrado que não deve induzir isquemia. Depois de três horas, corte o anel O e monitore o rato até que ele recupere a consciência suficiente para manter a recumbência severa. Não coloque o rato na companhia de outros ratos até que ele esteja totalmente recuperado da anestesia.
Coloque o rato em uma câmara de plexiglass transparente em um piso de malha e habite o rato ao ambiente por 30 minutos antes de qualquer teste comportamental. Use filamentos von frey para testar o rato para a aodínia mecânica. Inicie o teste a partir do filamento médio aplicando-o verticalmente à superfície plantar média da pata traseira.
Aplique força adequada para dobrar o filamento por até cinco segundos. Uma retração súbita da pata é considerada um comportamento não-defensivo. Realize o teste de aodínia mecânica nos dias três, dois, um, e todos os dias até o dia 13.
Aplique o método de teste para cima para baixo para testar o limiar e um método dickson para calcular o limiar de retirada da pata de 50%. Para testar a hiperalgesia térmica, use o método hargreaves apontando diretamente o feixe de luz emitido de uma lâmpada de 50 watts para a pata traseira. Meça a latência da retirada da pata, definindo 20 segundos como o limiar de corte para evitar ferimentos excessivos.
Repita cada teste três vezes em intervalos de cinco minutos para cada pata traseira, e tome a média como latência de retirada da pata. Realize o teste de hiperalgesia térmica nos dias três, dois, um, e todos os dias até o dia 13. Para testar o comportamento não defensivo agudo induzido por capsaicina, prepare a solução de caldão de capsaicina de 200 milimos milialares com DMSO e dilua-a ainda mais de 1 a 1.000 em PBS para injeção.
Capsaicina é um reagente, que pode causar irritação articular na pele, olhos e respiração. É importante usar máscara e óculos ao preparar a solução de capsaicina. Em seguida, injete 50 microliters da capsaicina ou um veículo na pata traseira usando uma agulha de calibre 30 presa a uma seringa de um mililitro.
Regisso comportamento não defensivo, como lamber, morder ou vacilar a pata injetada usando uma câmera de vídeo por 10 minutos após a injeção. Avalie o edema da pata traseira medindo o aumento do diâmetro da pata em 15 minutos, 24 horas, 48 horas e 72 horas após o estabelecimento do modelo. Depois de colocar o anel O no tornozelo, a pele da pata traseira ipsilateral mostrou cianose, uma indicação de hipóxia tecidual.
Após cortar o anel O, a pata começou a se encher de sangue e mostrou inchaço robusto, indicando hiperemia intensa. O inchaço diminuiu gradualmente e voltou ao normal 48 horas após o procedimento. Um dia após o estabelecimento do modelo, a pata traseira ipsilateral do grupo CPIP exibiu alusionia mecânica óbvia que persistiu por 13 dias do período de observação.
A pata traseira contralateral do grupo CPIP também apresentou hiperalgesia mecânica por 13 dias. Quando a hiperalgesia térmica foi medida, as patas traseiras bilaterais dos ratos DO CPIP apresentaram latência de retirada significativamente reduzida em resposta a estímulos térmicos nocivos, em comparação com os ratos do grupo falso. A hiperalgesia térmica da pata traseira ipsilateral persistiu até o fim do período de observação, enquanto a hiperalgesia térmica da pata traseira contralateral durou sete dias.
Os grupos sham e CPIP foram testados para comportamento não-defensivo com a injeção de capsaicina. Quando um veículo foi injetado, o grupo falso apresentou uma ligeira resposta não-defensiva e o grupo CPIP apresentou uma resposta significativamente maior. Mais importante, os ratos do CPIP apresentaram respostas significativamente maiores à injeção de capsaicina do que o grupo falso, o que sugere que os ratos do CPIP apresentam um fenômeno semelhante aos pacientes humanos com CRPS I.By esse procedimento, os ratos são anestesiados antes e durante o estabelecimento do modelo.
O modelo de rato CPIP descrito neste protocolo estabelecido pela isquemia e CRPS Humano I gosta de simitance. Famílias desses modelos, mais mecanismo sobre CRPS eu posso ser explorado.
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