Ткани
- Легкие ткани, встроенные в формы в оптимальной температуры резания (октябрь) 4583 соединения, была разделена (5 мкм) с помощью CM Leica 1950 криостата и установлен на поли-L-лизин слайдов.
Замороженные образцы были получены от д-р Саймон Royce на научно-исследовательского института Мердока детей. Легкие ткани была получена из необработанного Balb / с мышами и с мышиной модели хронические аллергические заболевания дыхательных путей, который показывает многие из патологических особенностей человеческого астмы 6. Эксперименты на животных были проведены в соответствии с руководящими принципами и правилами, установленными Комитетом животных Этика научно-исследовательского института Мердока детей, которая придерживается австралийский Кодекс практики по уходу и использованию лабораторных животных для научных целей.
- Разделы было позволено высохнуть на воздухе при комнатной температуре в течение 1 часа.
Иммунофлуоресценции окрашивание
- Разделы были зафиксированы с 2% (м / о) параформальдегид в фосфатном буферном растворе (PBS) в течение 20 минут.
- Срезы уравновешенной с двумя моется в PBS в течение 15 минут каждый.
- Срезы обрабатывают 70% этанола (охлажденной до -20 ° С) в течение 20 минут, затем три моет в PBS в течение 10 минут каждый.
На данный момент слайды могут храниться в плотно закрытых емкостях при температуре 4 ° С в течение 2 недель.
- Срезы трижды промывали PBS в течение 10 минут каждый, а затем заблокировали с 100 мкл свежеприготовленного в PBS, содержащий 8% BSA в PBS, содержащем 0,5% Твин-20 и 0,1% Тритон Х-100 (PBS-ТТ) в течение 1 часа при комнатной температуре .
Все инкубации проводили в увлажненной корыта окрашивания. - Разделы промывали PBS-TT в течение 5 минут и гидрофобных периметру был отмечен вокруг ткани с Пап пера.
- Превышение буфер наклонили и 100 мкл первичных кролик поликлональных анти-γH2AX антител (разбавленной 1:500, в 1% БСА в ФСБ; Millipore), был добавлен в каждом разделе 2 часа инкубации при комнатной температуре.
Инкубация с первичными антителами может быть выполнена в течение ночи при 4 ° C.
Для дальнейшего доказательства, что γH2AX очаги представляют ДР, первичное антитело признании белка DSB ремонта могут быть также использованы. Например, совместно локализации γH2AX и фосфорно-банкомат обычно используется комбинация. - Разделы промывали два раза PBS-TT в течение 5 минут каждая, и инкубируют с 100 мкл вторичных антител (Alexa Fluor 488 козьего анти-IgG кролика разбавленной 1:500, в 1% BSA; Invitrogen) в течение 1 часа при комнатной температуре в темноте . (Разводненная антител был в неведении в течение всей процедуры).
- Срезы трижды промывали PBS-TT в течение 5 минут каждый, и инкубировали с 0.5mg/mL РНКазы в течение 30 минут при температуре 37 ° C.
- Ядерная counterstaining и монтаж был выполнен с Vectashield среде, содержащей пропидий йодида.
- Слайды были опечатаны с лаком для ногтей и храниться в течение ночи при 4 ° С в темноте перед проведением анализа.
Микроскопия / Анализ
- Мета Zeiss LSM510 конфокальной микроскопии был использован для приобретения изображений с помощью стандартного GFP (для γH2AX - Alexa Fluor 488 козьего анти-IgG кролика) и PI (543 нм) лазеры.
Изображения были приобретены в Z-серии модель с шагом в 0,5 мкм. При анализе отдельных самолетов deconvoluted и сложены для получения максимальной проецируемого изображения, чтобы минимизировать перекрытие очагов.
Метод создания максимально проецируемого изображения до количество частиц должно использоваться только в тех случаях, когда тонкий срез (например, 5 мкм) используется и где фоне окрашивание незначительно. Где толще разделов со значительным фон должен быть проанализирован, более сложного анализа, таких как 3D объект счетчика, как описано в Болте и Cordelieres (2006) должны быть использованы 7.
- Метаморф (Molecular Devices, США) была использована для создания объединенных (красный и зеленый) изображения для количественного определения количества очагов.
Хотя Метаморф может быть использована для количественного определения очагов номера, как правило, при использовании срезов ткани очагов подсчитываются вручную (на глаз) для большей точности.
Конкретные типы клеток интересов могут быть выбраны для количественного определения, например, легких эпителиальных клеток. Это может быть сделано на основе гистологических и со ссылкой на гематоксилин-эозином окрашенных серийных срезов.