Для просмотра этого контента требуется подписка на JoVE. Войдите или начните свой бесплатный пробный период.

Методическая статья

Ортотопическая мышиной модели колоректального рака

46.7K просмотров

⸱

DOI:

10.3791/484

⸱

4 декабря 2007 г.

В этой статье

Краткое содержание

Два метода могут быть использованы для создания этой модели: введение суспензии клеток рака в слепой кишки стену или трансплантация части опухоли подкожной на слепой кишки. Эта модель полезна для изучения естественное развитие колоректального рака и тестирования новых лекарственных средств против колоректального рака.

Аннотация

Традиционные опухоли подкожной модели далеки от идеальных для изучения рака прямой кишки. Ортотопическая модели мыши колоректального рака, особенностью которой раковые клетки растут в их естественном месте, копировать человеческие заболевания с высокой точностью. Два метода могут быть использованы для создания этой модели. Оба метода схожи и требуют анестезии мыши и лапаротомию для выявления слепой кишки. Один метод предполагает введение колоректального рака суспензии клеток в слепой кишки стену. Раковые клетки вырастили первый в области культуры, собранных при subconfluent и готовят суспензии отдельных клеток. Небольшой объем клетки вводят медленно, чтобы избежать утечки. Другая техника включает в себя трансплантацию части опухоли подкожной на слепой кишки. Мышь с ранее установленной опухоли подкожной колоректального является эвтаназии и опухоль удаляется с использованием стерильной техники. Опухоль часть разделена на мелкие кусочки для пересадки на другой мыши. До трансплантации, слепой кишки стены слегка поврежденных чтобы облегчить опухолевой инфильтрации клеток. Время развитие первичной опухоли и метастазов в печень будет варьироваться в зависимости от техники, клеточной линии, и мышь видов, используемых. Это ортотопической модели мыши полезны для изучения естественное развитие колоректального рака и тестирования новых лекарственных средств против колоректального рака.

Протокол

I. Подготовка сотовый

  1. Колоректальный раковые клетки выращиваются в культуре и собираться после subconfluent.
  2. Суспензии отдельных клеток готовят в фосфатном буферном растворе и держал на льду.

II. Опухоль подготовка

  1. Мышь с ранее установленной опухоли подкожной колоректального является эвтаназии.
  2. Опухоль подкожной удаляется с использованием стерильной техники и разделен на части 2-3 мм
  3. Опухоль части хранятся в фосфатном буферном растворе на льду.

III. Мышь Подготовка

Примечание: В нашей лаборатории мы используем вдыхании изофлуран на анестезию мыши; альтернативно, можно использовать инъекционного наркоза, чтобы достичь того же эффекта

  1. Глубины анестезии оценивается с помощью ног крайнем случае. Там должно быть никаких снять рефлекс с ног крайнем случае.
  2. Антибиотики могут быть даны в этой точке.
  3. Наркозом мыши, которая ранее была выбрита, правильно расположен.
  4. Живот нацелен с бетадин решение.
  5. Брюшной полости и хирургические сайта завернуто в стерильных моды.

IV. Лапаротомия

  1. Небольшой ник выполнен в коже
  2. Брюшная мускулатура стены схватил и поднял
  3. Брюшную полость вводится и одного лезвия ножниц используется для передачи внутрибрюшного содержимого от
  4. Разрез продлен до 2-3 см.

В. Воздействие Слепая кишка

  1. Слепая кишка с ее слепой мешок окончание выявлены и экстериоризируется
  2. Слепая кишка изолированы от остальной части мыши, используя нарезанные, стерильные марлевые
  3. Теплые солевые используется для хранения влажного слепой кишки

VI. Введение клеток в слепой кишки стены

  1. 27 G или тоньше игла для инъекций 50 мкл объема клеток в слепой кишки стену
  2. Игла удаляется
  3. Место инъекции осматривается, чтобы убедиться в отсутствии утечки
  4. Слепая кишка возвращается в брюшную полость

VII. Трансплантация опухоли на Слепая кишка

Примечание: В дополнение к инъекционным клеток в слепой кишки стены, Альтернативный подход заключается в трансплантации опухоли на слепой кишки

  1. Фигура 8 стежка помещается на слепой кишки использованием 6-0 или 7-0 размера шва
  2. Слепой кишки стены слегка поврежденных
  3. Затем опухоль кусок позиционируется
  4. Стежка увязла
  5. Слепая кишка возвращается в брюшную полость

VIII. Мышь брюшной Закрытие стены и восстановление

  1. Мышь брюшной стенки закрыта с помощью трех прервал стежки использованием 3-0 или 4-0 размера шва
  2. Кроме того, можно использовать простой работает стежка
  3. Послеоперационные анальгетики и жидкости болюсно может быть дана в этом пункте
  4. Мышь, допускается, чтобы оправиться от наркоза.

Примечание: При ингаляционных анестетиков это обычно занимает 30 секунд

IX. Результаты - Первичная опухоль и метастазы печени

figure-protocol-1figure-protocol-2figure-protocol-3
Первичные опухоли - показано на месте () и с признаками неоваскуляризации (B), с окрашиванием H & E, опухолях локально инвазивной (С)

figure-protocol-4
Метастазами в печень - показал бывший естественных условиях (D)

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Хотя мышиные модели подкожной опухоли легко установить и контролировать, то ясно, что эта модель не может воспроизвести оригинальную анатомических сайт колоректального рака. Из-за разницы в микросреде, толстой кишки раковые клетки растущего под кожей, как было показано изменение их фенотипа и почти всегда терпят неудачу на пути прогресса и метастазировать 1,2. На самом деле, ответ опухоли на лечение может значительно варьироваться в зависимости от того, раковые клетки имплантируются в внематочной (подкожно) по сравнению с ортотоп...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

Отделение хирургии, Университет Калифорнии, Сан-Франциско
Раймонд Шахин, доктор медицинских наук

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Среды и компоненты для культивирования клетокварьируются в зависимости от используемой клеточной линии
Фосфатно-солевой буферный растворBioWhittaker17-512Fтакже продается рядом других поставщиков
Центрифужные пробирки 15 mL, полипропиленовыеCorning430790
6-луночные планшеты с крышкойBD Biosciences353046
Пинцет ирисовый, прямой, с рифлеными концамиWorld Precision Instruments, Inc.15914рекомендуется иметь пару таких инструментов
Ножницы ирисовые для препарирования, прямые, острыеWorld Precision Instruments, Inc.14393
Иглодержатель (стандартный)World Precision Instruments, Inc.14109
Иглодержатель (Кастровиехо)World Precision Instruments, Inc.14137
Cidex PlusWorld Precision Instruments, Inc.7364инструменты следует периодически автоклавировать, но их также можно стерилизовать замачиванием в Cidex
Шовный материал 6-0 или 7-0для слепой кишки; предоставлено кафедрой хирургии UCSF
Шовный материал 3-0 или 4-0для брюшной стенки; предоставлено кафедрой хирургии UCSF
Анестезиологический аппарат / ИзофлуранJ.A. Baulch and Associates3206также продается рядом других поставщиков
Грелка, одноразовая, 6" x 6"Prism Technologies20419
Лента, оранжевая, 13 mm x 13 mFisher Scientific15901Fдля фиксации анестезированной мыши
Триммер Pro-Cord/CordlessOster Professional Products78997-010для бритья шерсти мыши
БетадинFisher Scientific19-027132также можно приобрести в любом магазине медицинских товаров
Марлевая салфетка 2 x 2, 3-слойнаяJohnson & Johnson7635также можно приобрести в любом магазине медицинских товаров
Стерильное поле, барьер, 16" x 29"Johnson & Johnson0905также можно приобрести в любом магазине медицинских товаров
Аппликаторы с ватным наконечником, 6"Fisher Scientific14-960-3Qтакже можно приобрести в любом магазине медицинских товаров
Шприц 10 cc, с Luer-lock наконечникомBD Biosciences309604
Шприц 1 cc, туберкулинный, с конусным наконечникомBD Biosciences309602
Игла 27 1/2 GBD Biosciences305109
Игла 30 GBD Biosciences305106

Ссылки

  1. Heijstek, M. W., Kraneburg, O., Rinkes Borel, I. H. Mouse models of colorectal cancer and liver metastases. Dig Surg. 22, 16-25 (2005).
  2. Kobaek-Larsen, M., Thorup, I., Diederichsen, A., Fenger, C., Hoitinga, M. R. Review of colorectal cancer and its metastases in rodent models: comparative aspects with those in humans. Comp Med. 50, 16-26 (2000).
  3. Wilmanns, C., Fan, D., O'Brian, C. A., Bucana, C. D., Fidler, I. J. Orthotopic and ectopic organ environments differentially influence the sensitivity of murine colon carcinoma cells to doxorubicin and 5-fluorouracil. Int J Cancer. 52, 98-104 (1992).
  4. Kashtan, H., Rabau, M., Mullen, J. B., Wong, A. H. C., Roder, J. C., Shiptz, B., Stern, H. S., Gallinger, S. Intra-rectal injection of tumor cells: a novel animal model of rectal cancer. Surg Oncol. 1, 251-256 (1992).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Теги

Инъекция в слепую кишкутрансплантация опухолианестезия мышейпроцедура лапаротомииклеточная суспензияподкожная опухольстенка слепой кишкизакрытие брюшной полости