$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Представленные результаты показывают, что высокая пропускная способность трубопровода для изучения S. эпидермальный и М. Marinum инфекции было успешно установлено и что может быть распространен и на другие модели инфекции. Во-первых, использование большого разведения сосуда (рис. 1А), на основе опубликованной системе по Adatto и соавт. (2011) 11, дает возможность генерировать большое число синхронных яиц в единичных событий, дающими высокую контроль процесса нереста. Следующая, чтобы иметь возможность вводить большое количество эмбрионов в течение короткого периода времени, был использован улучшенная версия ранее разработанной автоматизированной системы микро-инъекции 7 (рис. 1А). Для ослов, который является лучшим стадия развития для желтка инфекции, инъекции с S. эпидермальный и М. Маринум проводились на всех различных стадий между 1 и 512 клеточной стадии, в соответствии с описанием, сделанного Kimmel и соавт. (1995) 12
Инъекции с 100 КОЕ S. эпидермальный между сценой 16 и 128 клеток обеспечивает лучшую инфекции шаблон (рис. 2). Бактерии распространение внутри желтка течение 3 дней и распространяться в организме из 3 руб годов. Выполнение инъекции до стадии 16 клеток приводило к высокой смертности от 4 точек на дюйм, и после инъекции этап 256 клеток показал, главным образом рост бактерий внутри желтка с трудом любых бактерий, распространяющихся в теле эмбриона. Количественное определение бактериальной нагрузки проводили с помощью анализа интенсивности флуоресценции с использованием большого частиц проточного цитометра как описано Veneman и соавт. (2013) 8 (рис. 3).
Наблюдения показали, что оптимальная стадия развития для инъекций 30 КОЕ M. Marinum инъекции лишь от 16 до 128 клеточной стадии для деформации E11 (Рисунок 4А) и между 16-64 клеточной стадии с более опасную M Straiн (рис. 4В). Эмбрионы вводили на этих этапах показали рост бактерий внутри желтка и распространение бактерий через эмбриона (рис. 7). Заражение обоих штаммов на ранних стадиях представлены неспецифическую обобщенный рост бактерий ведущую эмбрионов умереть после 4 руб. С другой стороны, в эмбрионах, инъецированных на более поздних стадиях бактериальный нагрузка была ограничена желтка.
Далее, предварительная сортировка с крупной частицы проточного цитометра (рис. 1В) генерируется большие однородные группы зараженных рыб за исключением не-или сильно зараженных эмбрионов (5А и 6А). После предварительной сортировки, М. Marinum инфицированных эмбрионов лечили рифампицина, первый линия противотуберкулезной препарата. Предыдущие исследования показали, что лечение с рифампицином в дозе 200 мкМ эффективно снижает M. Marinum инфекция у рыбок данио 7, 13. Принимая advantagе большим количеством равномерно инфицированных эмбрионов, полученных с высокой пропускной способностью установки, обработки различными дозами был выполнен. Эмбрионы, инфицированных M. Marinum М штамм и обрабатывали в течение 48 часов с 12, 24 и 200 мкМ рифампицин показал, чтобы уменьшить эффективно микобактерий инфекции в зависимости от дозы (рис. 5б). С учетом эффективного уменьшения инфекции с использованием рифампицин в дозе 200 мкМ эту концентрацию использовали для будущих экспериментов. В соответствии с предыдущим результатом, изучая бактериальной прогрессирование бремени с помощью М. штамм Marinum E11 значительное снижение 24 часа в сутки и далее после обработки 200 мкМ рифампицина наблюдалось (рис. 6Б).
Кроме того, если изображения с большим увеличением, что требуется от этих эмбрионов, они могут быть отображены автоматически в 96-луночных планшетах (фиг. 1С), откуда образцы могут быть проанализированы с помощьюсистема скрининга Технология позвоночных Автоматизированная с крупной частицы Sampler установлен на CLSM.
Система скрининга Технология позвоночных Автоматизированная с Sampler крупной частицы представляет собой систему, которая может быть смонтирована на CLSM или стерео микроскопа. Это устройство позволяет загрузку живых или фиксированных эмбрионов из 96-луночный планшет или контейнер для массовых грузов автоматически через стеклянный капилляр, и ориентирует его в передней части камеры под нужным углом (например, спинной или боковой). Изображения эмбриона в любой ориентации могут быть сделаны с на камеры борту или с внешним CLSM (рис. 7). Эмбрионы будут впоследствии переданы в сборе или контейнер для отходов.

Рисунок 1. Mainstream экспериментальная OUTLНИС. А) рыбы взрослых ставятся вместе, чтобы сцепиться, яйца собираются, выстраиваются в агарозном пластины и вводят. Б) Инъецированные яйца инкубируют при 28 ° С и будет предварительно отсортированы для возможного лечения наркомании. C) Последующий анализ на большой частиц проточного цитометра и / или большая частиц Sampler / позвоночных Автоматизированная технология Скрининг с CLSM. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 2. Создание лучшего клеточной стадии для S. эпидермальный желток инъекции. Эмбрионы рыбок данио вводили в желтке на разных стадиях развития от 1 до 512 клеточной стадии с 100 КОЕ S. эпидермальный. Эмбрионы введенные в период с 1 ай 8 клеточной стадии показал рост бактерий в желтке и высокой смертностью от 4 руб. Эмбрионы вводили между 16 и 128 клеточной стадии показал рост бактерий в желтке и внутри тела, начиная с 3 руб. Эмбрионы вводили между этапе 256 и 512 клеток показали многие рост бактерий внутри желтка. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 3. Количественное определение бактериального бремени, используя большой поток частиц цитометр. 100 КОЕ S. эпидермальный вводили в желток эмбрионов данио рерио.) до 5 точек на дюйм, каждый день, группы по 10 эмбрионов были гомогенизируют и помещают непосредственно, показывающий среднюю экспоненциальный рост, основанный на биологической два реплик (Столбики ошибок= SEM). Б) Большой поток частиц цитометр анализа показывает среднее сигнала флуоресценции от неинъекционные и S. эпидермальный вводят эмбрионы. Были проанализированы 30-160 эмбрионы в состоянии (планки погрешностей = SEM), разные буквы указывают статистические значимые различия по той ANOVA с последующим после специальной тест Тьюки (P <0,001), нс:. Не существенные различия С) корреляция между КОЕ и средний сигнал флуоресценции групп 10 S. эпидермальный инфицированных эмбрионов (планки погрешностей = SEM). Эта цифра была изменена с Венеман и др.. (2013) 8. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 4. Establishment из лучших клеточной стадии для М. Marinum желток впрыска. Эмбрионы рыбок данио вводили на всех различных стадиях развития от 1 до 512 клеточной стадии с 30 КОЕ M. Marinum E11 и М штамм. A, B) Эмбрионы впрыскивается из 1-8 клеточной стадии показал аналогичный распространения и смертности с обоих штаммов.) Эмбрионы вводят между 16-128 клеточной стадии с штамм E11 показал образование гранулем и системной инфекции в то время как инъекции от 256 до 512 клеточной стадии хранится бактериальную нагрузку в желток. Б) Эмбрионы вводят между 16-64 клеточной стадии с M штамма показали формирование гранулемы, как структуры и системной инфекции в то время как те, вводят от 128 до 512 клеточной стадии хранится бактериальную нагрузку в желток . Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
Рисунок 5. Лечение М. Marinum острая инфекция с первой линии к противотуберкулезным препаратам. Эмбрионы вводят между 16-64 клеточной стадии с 30 КОЕ M. Marinum М штамм пропускались через крупной частицы проточного цитометра в 3 руб, где они сортируются в две группы после отбрасывания не-и / или высоко зараженных эмбрионов.) флуоресценции отдельных эмбрионов в обеих группах. B) эмбрионов, обработанных с рифампицином (РИФ ) в течение 48 ч при дозах 12, 24 и 200 мкМ были проанализированы на 4 точек на дюйм; их бактериальная нагрузка значительно снижается. в) представитель Copas профили эмбрионов, обработанных с ДМСО и рифампицина в дозах 12, 24 и 200 мкм в течение 24 часов. Бактериальной нагрузки и распределение обозначается красной пиков. Синяя линия представляет профиля элемента отсортированного (4 DPF данио еmbryo) по Copas. Были проанализированы 60-90 эмбрионов в состоянии. Каждая точка данных представляет отдельный эмбрион. Значения указаны как среднее ± SEM. нс: не существенные различия. Анализ статистической значимости различий был выполнен так ANOVA с последующим posthoc теста Тьюки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.

Рисунок 6. Лечение М. Marinum хроническая инфекция с первым линия противотуберкулезной препарата. Эмбрионы вводят между 16-64 клеточной стадии с 30 КОЕ M. штамм Marinum E11 пропускались через большой поток частиц цитометр в 3 руб, где они сортируются в две группы после отбрасывания не-и / или высоко зараженных эмбрионов. A) флуоресценции индивидуальных эмбрионов в обеих группах. B) эмбрионов, обработанных с рифампицином (RIF) при 200 мкМ в течение 4 дней были проанализированы показывает значительное снижение бактериальной нагрузки через 1 день лечения. Были проанализированы 90 эмбрионов в состоянии. Значения указаны как среднее ± SEM. Различные буквы указывают на значительные различия между временными точками одного и того же лечения. * Обозначает значительные различия с контрольной группой. нс: не существенные различия. Анализ статистической значимости различий был выполнен так ANOVA с последующим posthoc теста Тьюки. (P <0,05). Рисунок B) после создания редактировался Spaink соавт. (2013) 13. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этой фигуры.
hres.jpg "Первоначально" / files/ftp_upload/51649/51649fig7.jpg "/>
Рисунок 7. Результат М. Marinum E11 впрыска желток отображаемого использованием позвоночных автоматизированной технологии скрининга и КЛСМ. конфокальной Z стек (сшитые 3 изображения) от 5 точек на дюйм FLI1-EGFP 14 эмбриона.) Живой эмбрион показ распространение М. Marinum E11 бактерии (красный) по всему телу. B) Исправлена 5 точек на дюйм FLI-EGFP эмбрион показывая М. Marinum E11 бактерии (красный) по всему телу совместно локализации с лейкоцитов (светло-голубой) обнаружены L-пластина иммуноокрашивания 15.