Методическая статья

Получение одноклеточные подвесок для Cytofluorimetric анализа из различных регионов мышиной кожи

DOI:

10.3791/52589

20 апреля 2016 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кожа является домом для сложной иммунной клеточной сети. Мы описываем эффективную методологию переваривания кожи мышей из различных частей тела животного с целью получения одноклеточной суспензии и анализа различных популяций лейкоцитов, находящихся в коже, с помощью проточной цитометрии.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кожа является барьерным органом, который взаимодействует с внешней средой. Постоянно подвергаясь потенциальному микробному вторжению, дерма и эпидермис являются домом для различных иммунных клеток как в гомеостатических, так и в воспалительных состояниях. Таким образом, инструменты для получения высвобождения клеток кожи для цитофлуориметрических анализов очень полезны для изучения сложной сети иммунных клеток, находящихся в коже, и их реакции на микробные стимулы. В этой статье мы описываем эффективную методологию переваривания кожи мышей с целью быстрого и эффективного получения суспензий одиночных клеток. Этот протокол позволяет поддерживать максимальную жизнеспособность клеток без ущерба для экспрессии поверхностных антигенов. Мы также описываем, как брать и переваривать образцы кожи из различных анатомических мест, таких как ухо, туловище, хвост и подушечка лапы. Полученные суспензии затем окрашивают и анализируют с помощью проточной цитометрии для различения различных популяций лейкоцитов.

Введение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кожа является одним из самых больших органов тела, и ее большая поверхность постоянно подвергается воздействию внешней среды. Поэтому кожа должна защищать организм от потенциальных угроз, чтобы поддерживать гомеостаз, как физическими средствами, так и обеспечивая активную защиту от потенциального проникновения патогена. Подобно слизистой оболочке кишечника и легких, кожа содержит множество иммунных клеток, которые постоянно взаимодействуют с эпителием, поддерживая иммунный надзор. Эта сложная система, которая включает в себя как иммунные, так и неиммунные клетки кожи, была признана с первых дней иммунологии, когда в 1978 году впервые был придуман термин «кожно-ассоциированная лимфоидная ткань» (SALT) 1 для описания такой сложности.

Большое количество иммунных клеток, находящихся в коже, помогает организму не только бороться с потенциальными инвазиями, но и организовывать заживление ран и поддерживать толерантность к аутоантигенам и микробиоте кожи 2,3.

Среди резидентных иммунных клеток кожи дендритные клетки (ДК) играют решающую роль в формировании иммунных реакций и поддержании гомеостаза 4. Дермальные ДК и клетки Лангерганса легко реагируют на инвазии патогенов и при миграции в лимфатические узлы активируют Т-клетки и индуцируют экспрессию рецепторов самонаведения кожи на вновь образованных эффекторных Т-клетках5. ДК также играют фундаментальную роль в регулировании гомеостаза кожи. ДК, мигрирующие из дермы в лимфатические узлы в гомеостатических условиях, транспортируют изолированные в коже антигены с целью индуцирования толерантности к Т-клеткам, в основном за счет дифференцировки регуляторных Т-клеток (Tregs), специфичных к кожным антигенам 6-8.

Т-клетки представляют собой наиболее распространенную популяцию иммунных клеток в коже. Они не только проникают в кожу во время инфекции, но и представляют собой стабильную популяцию среди резидентных лимфоцитов кожи 9,10. Как CD8+, так и CD4+ резидентные Т-клетки памяти (rm)T находятся в коже и после инфекции могут реагировать задолго до того, как эффекторные Т-клетки будут рекрутированы из крови. В коже также обитает популяция тканевых резидентных Tregs, способных поддерживать толерантность к кожным антигенам и тканевому гомеостазу. Эти клетки быстро и мощно активируются после воздействия родственного им антигена и поэтому были определены как Tregs памяти 11,12.

Наряду с ДК и Т-клетками, многие клетки врожденного иммунитета, такие как NK-клетки, гамма-дельта Т-клетки, ILCs 2-й группы 13, тучные клетки и макрофаги, заселяют кожу и вносят свой вклад в защиту хозяина. Для анализа такой сложной среды в обязательном порядке необходимо получение одноклеточных суспензий из образцов кожи с высокой эффективностью при сохранении экспрессии поверхностных маркеров для проточного цитофлуориметрического анализа или сортировки.

Мышиная кожа представляет собой наружный эпидермальный слой, состоящий в основном из кератиноцитов, клеток Лангерганса и дендритных эпидермальных Т-клеток; и дермальный слой под ним. Дерма является домом для большинства иммунных клеток и состоит из внеклеточного матрикса, в котором коллагеновые волокна находятся в наибольшем количестве, особенно коллаген-I и коллаген-IV. В отличие от человеческой кожи, кожа мыши покрыта мехом, и поэтому больше населена волосяными фолликулами. Кроме того, он намного тоньше человеческой кожи и содержит мышечный слой, панникулюс карнозус, который способствует заживлению ран 14. Эти характеристики затрудняют эффективное разрушение коллагеновой сети дермы с целью выведения иммунных клеток.

В этой статье мы предлагаем подходящий метод для расщепления внеклеточного матрикса, который основан на коктейле из коллагеназы высокой чистоты 1 и 2 и термолизина. Более того, поскольку анализ кожи из разных регионов требует разных экспериментальных процедур, мы покажем различные методы эффективного получения образцов кожи из подушечки ноги, хвоста, уха и туловища. Затем мы пометим образцы, чтобы оценить наличие ДК (MHCII+CD11c+CD45+), макрофагов (CD11b+F4/80+CD45+), CD8+ и CD4+ Т-клеток.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Утверждение исследования: экспериментальные протоколы были одобрены Министерством здравоохранения Италии (Рим, Италия) в соответствии с Decreto Legislativo 27 Gennaio 1992, п. 116 "Attuazione делла Direttiva п 86. / 609 / CEE в Materia ди Protezione дельи animali utilizzati Фини sperimentali о объявления Altri Фини scientifici."

1. Получение образцов кожи

  1. Эвтаназии мышь путем смещения шейных позвонков.
  2. Ухо:
    1. Вырежьте голую часть ушей мыши.
    2. Отдельный спинной и брюшной стороне, потянув их друг от друга с пинцетом. Удалите все оставшиеся хрящи, аккуратно очищая внутреннюю часть ушей с пинцетом.
  3. кожа Ствол:
    1. Бритье всю кожу животного и с электрической бритвы и с тонким депиляции лосьон.
    2. Отрежьте нужный образец кожи (от 2 см 2 до всей кожи животных).
      1. Если отрезать весь спинной и ажеТрал кожи мыши, сделайте вертикальный разрез в середине мыши обратно, а затем разрезанной вдоль границ бритыми областей вокруг тела мыши.
      2. Аккуратно отделить кожу от брюшины и мышц спины, держа образец кожи до сих пор с пинцетом при отделении образца кожи с закрытым круглым обрамленными наконечниками хирургическими ножницами или скальпелем.
    3. Приготовьте 100 мм для культивирования клеток планшет, содержащий 10 мл охлажденного льдом PBS.
    4. Устранить подкожного жира погружением пробы кожи в PBS в пластине, приготовленным на стадии 1.3.3 и соскоб образец кожи пинцетом.
  4. Хвост:
    1. Отрезать хвост мыши.
    2. Сделать вертикальный разрез на хвост с хирургическими ножницами или хирургическим скальпелем, начиная от основания хвоста и доходящим до кончика хвоста.
    3. Используйте пинцет, чтобы отделить кожу от хвоста. Захватите края разреза у основания хвоста и осторожно вытяните в сторону наконечника, удерживаяТело хвоста пинцетом.
    4. Удалите лишний жир, аккуратно очищая образец кожи.
  5. разбойник
    1. Вырежьте всю ногу мыши с хирургическими ножницами. Как избежать резки любой волосатые кожи.
    2. Разрежьте кожу стопы в продольном направлении от голеностопного сустава до начала цифр.
    3. Держите кости лодыжки с пинцетом или рукой, захватывая кожу с пинцетом и подтягивает кожу в сторону цифр, как будто снимая перчатки.

2. Переваривание

  1. Подготовьте переваривания коктейль из исходного раствора (приготовленного, как в списке материалов) со следующим рецептом: смесь энзимов (см список материалов для спецификаций) 300 мкг / мл, DNAse1 50 Ед / мл. Развести в RPMI 5% FBS.
  2. Нарезать образцы кожи с ножницами на мелкие кусочки в чашку Петри 35 мм с 2 мл Пищеварение Коктейль (для ствола кожи: 2 мл Пищеварение Коктейль каждые 2 см 2 кожи, общая до 3 мл).
  3. Инкубируют при 37 ° С в течение 90 мин. Осторожно потрясите чашку Петри 1-2 раза во время инкубации.
  4. Налейте переваривается образцы кожи на 70 мкм клеточный фильтр на 66 мм в чашку Петри, содержащую 1 мл RPMI1640 5% FBS.
  5. Промыть фильтр грубой очистки с 5 мл RPMI 1640 5% FBS.
  6. Сожмите пробы через сито клеток с поршень шприца.
  7. Промывка плунжер, чашку Петри и сетчатый фильтр с 20 мл RPMI 1640 5% FBS, перенесите в 50 мл пробирку.

3. Антитела и этикетирование

  1. Промыть полученной суспензии дважды 5 мл PBS 1% FBS (или БСА).
  2. Этикетка полученной суспензии клеток с требуемыми антителами.
    1. Ресуспендируют образцы в количестве 100 мкл / образец из смеси, содержащей 2 мкг / мл aCD16 / CD32 (клон 2.4G2), разведенного в PBS 1% FBS.
    2. Инкубировать в течение 15 мин при 4 ° С для того, чтобы блокировать неспецифическое связывание желаемых антител через рецепторы Fc.
    3. Добавление антител , указанные в таблице1.
      1. Готовят смесь разбавляя желаемые антитела в 100 мкл / образец PBS 1% FBS в концентрации 4 мкг / мл.
      2. Добавьте 100 мкл смеси, полученного на стадии 3.2.3.1 для каждого образца так, что в трубке, будет объемом 200 мкл смеси антител в конечной концентрации 2 мкг / мл.
    4. Инкубировать в течение 30 мин при 4 ° С и покрывают от света.
  3. Мытье с 1 мл PBS 1% FBS, центрифуги в течение 5 мин при 400 мкг, отбросить супернатант и ресуспендируют в 300 мкл PBS 1% FBS.
  4. Добавить DAPI в конечной концентрации 2 мкг / мл и инкубируют при 4 ° С, в защищенном от света месте в течение 10 мин.
  5. Анализ образцов, полученных с помощью FACS.
    1. Для того чтобы выделить лейкоциты, используйте следующую стратегию стробирования:
      1. Во-первых устранить любые мертвые клетки с помощью стробирования на население DAPI-.
      2. Выберите синглеты в FSC-A против FSC W участка , как показано на рисунке 1 .
      3. Ворота клетки в зависимости от размера и зернистости, характерной для лейкоцитов, представляющих интерес.
      4. Выберите CD45 + клеток в FSC-A CD45 участка , как показано на рисунке 1.
    2. Выделяют различных популяций лейкоцитов по экспрессии поверхностных маркеров следующим образом:
      1. Определить , как контроллеры домена CD11c + MHC II + клеток. Они могут быть впоследствии проанализированы на экспрессию CD207, чтобы различать клетки Лангерганса и CD207 + Dermal ДК из CD207- Кожное ГЦ.
      2. Определение Макрофаги, как / 80 + клеток CD64 + F4.
      3. Определение В-клеток как CD19 + MHCII + клеток.
      4. Определение Т-клеток, как CD8 + или + клеток CD4.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Кожа из другой области тела переваривают в соответствии с протоколом, описанным и окрашивают с указанными антителами. Стратегия стробирования изображена на рисунке 1. Сначала выберите живые клетки (DAPI- клетки), то ворота на синглеты (FSC-A против FSC-W) и на клетках с морфологией лимфоцитов (FSC-A по сравнению с SSC-A). Когда указано, CD45 + клетки кроветворной происхождения выбраны.

Контроллеры д...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы описали способ получения одноклеточных суспензий из различных областей кожи мыши. Метод пищеварения мы приняли, не только дает высокие урожаи, но и сохраняет экспрессию поверхностных маркеров, что является фундаментальным для последующего анализа FACS.

Использование коктейля коллагеназы I и II и термолизином, гарантирует минимальную партии к партии различий в активности фермента делает этот метод высокой воспроизводимостью. Другие опубликованные методы опираются на различные коктейли ферм...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана грантами от Associazione Italiana per la Ricerca sul Cancro (AIRC, IG14593, MFAG13235), Fondazione Cariplo (Grant 2010-0678 и NANOVAC) и Fondazione Regionale per la Ricerca Biomedica.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
Reagents
Enhanced RPMI 1640 medium RPMI1640 с добавкой L-glu, пен-стрептококком без бета-меркаптоэтанола
PBS
FBS
Liberase TM (Enzyme Mix)Roche5401119001ресуспендия [2.5  мг/мл] в dH2O; Магазин аликвот при -20  ° C
dnase isigma D4263-1VLресуспендирован в RPMI 1640 без сыворотки [1,000  U/ml]
Materials
Хирургические ножницы
Хирургические щипцы
Хирургический скальпель
35 мм чашки
Петри 66 мм Чашки
Петри
70 &микро; m Клеточные фильтрыBD352350
<Коктейль> для крепкого пищеваренияРазбавленный в RPMI 5% FBS
LIberase TM300 &; г/мл
ДНКаза150 U/мл
Антитела
NameCompany<strong>Clone<strong>Label
aCD45.2104PE-Cy5.5
aCD11cN418PE-Cy7
CD11bM1/70FITC
F4/80A 3-1APC-Cy7
aCD4Gk1.5APC-Cy7
aCD853-6.7PE
aCD64X54-5/7.1PE-Cy7
aCD2074C7APC
100 мм

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Streilein, W. J. Circuits and signals of the skin-associated lymphoid tissues (SALT). Journal of Investigative Dermatology. 85 (1 Suppl), 10s-13s (1985).
  2. Tay, S. S., Roediger, B., Tong, P. L., Tikoo, S., Weninger, W. The Skin-Resident Immune Network. Current dermatology reports. 3, 13-22 (2014).
  3. Shen, W., et al. Adaptive immunity to murine skin commensals. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111 (29), E2977-E2986 (2014).
  4. Broggi, A., Zanoni, I., Granucci, F. Migratory conventional dendritic cells in the induction of peripheral T cell tolerance. Journal of leukocyte biology. 94 (5), 903-911 (2013).
  5. Pan, J., et al. DCs metabolize sunlight-induced vitamin D3 to'program'T cell attraction to the epidermal chemokine CCL27. Nature Immunology. 8 (3), 285-293 (2007).
  6. Vitali, C., et al. Migratory, and not lymphoid-resident, dendritic cells maintain peripheral self-tolerance and prevent autoimmunity via induction of iTreg cells. Blood. 120 (6), 1237-1245 (2012).
  7. Azukizawa, H., et al. Steady state migratory RelB+ langerin+ dermal dendritic cells mediate peripheral induction of antigen-specific CD4+ CD25+ Foxp3+ regulatory T cells. European journal of immunology. 41 (5), 1420-1434 (2011).
  8. Idoyaga, J., et al. Specialized role of migratory dendritic cells in peripheral tolerance induction. The Journal of clinical investigation. 123 (2), 844-854 (2013).
  9. Boyman, O., Conrad, C., Tonel, G., Gilliet, M., Nestle, F. O. The pathogenic role of tissue-resident immune cells in psoriasis. Trends in immunology. 28 (2), 51-57 (2007).
  10. Di Meglio, P., Perera, G. K., Nestle, F. O. The multitasking organ: recent insights into skin immune function. Immunity. 35 (6), 857-869 (2011).
  11. Rosenblum, M. D., et al. Response to self antigen imprints regulatory memory in tissues. Nature. 480 (7378), 538-542 (2011).
  12. Rosenblum, M. D., Truong, H. A., Abbas, A. K., Gratz, I. K. 177: Maintenance of memory regulatory T cells in peripheral tissues. Cytokine. 63 (3), 284-285 (2013).
  13. Kim, B. S., et al. TSLP elicits IL-33-independent innate lymphoid cell responses to promote skin inflammation. Science translational medicine. 5 (170), (2013).
  14. Gopinathan, K. M. New insights into skin structure: scratching the surface. Advanced drug delivery reviews. 54 (Suppl 1), S3-S17 (2002).
  15. Sandrine, H., et al. CD207+ CD103+ dermal dendritic cells cross-present keratinocyte-derived antigens irrespective of the presence of Langerhans cells. The Journal of Experimental Medicine. 207 (1), 189-206 (2010).
  16. Bernard, M., Samira, T., Sandrine, H. The origins and functions of dendritic cells and macrophages in the skin. Nature Reviews Immunology. 14 (6), 417-428 (2014).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Похожие статьи