Методическая статья

iNEXT-Discovery и Instruct-ERIC: интеграция высокотехнологичных услуг для трансляционных исследований в структурной биологии

DOI:

10.3791/63435

16 ноября 2021 г.

В этой статье

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ОБСУЖДАЕМЫЕ СТАТЬИ:

Ahmad, M. U. D. et al. Нанодифференциальная сканирующая флуориметрия для скрининга при обнаружении свинца на основе фрагментов. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (171), e62469 (2021).

Barbieri, L., Luchinat, E. Мониторинг белок-лигандных взаимодействий в клетках человека с помощью количественного внутриклеточного ЯМР в реальном времени с использованием биореактора с высокой плотностью клеток. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (169), e62323 (2021).

Berg, H. et al. Скрининг фрагментов на основе ЯМР в режиме минимальной выборки, но максимальной автоматизации. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (172), e62262 (2021).

Бериашвили, Д., Шеллевис, Р. Д., Наполи, Ф., Вайнгарт, М., Балдус, М. Исследования белков в естественных мембранах с высоким разрешением с помощью твердотельного ЯМР. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (169), e62197 (2021).

Cornaciu, I. et al. Автоматизированные кристаллографические конвейеры на предприятии EMBL HTX в Гренобле. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (172), e62200 (2021).

Crawshaw, A. et al. Трубопровод пробоподготовки микрокристаллов на линии пучка VMXm. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (172), e62306 (2021).

Douangamath, A. et al. Достижение эффективного скрининга фрагментов на установке XChem на алмазном источнике света. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (171), E62414 (2021).

Groen, J. et al. 3D-картографическое описание клетки с помощью рентгеновской томографии Cryo Soft. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (169), E62190 (2021).

Horrell, S. et al. Фиксированный сбор данных о последовательных данных цели на алмазном источнике света. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (168), E62491 (2021).

Jiménez-Moreno, A. et al. Крио-ЭМ и анализ одиночных частиц с помощью сципиона. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (171), e62261 (2021).

Moravcová, J., Pinkas, M., Holbová, R., Nováček, J. Подготовка и микрообработка CryoFIB Saccharomyces cerevisiae для томографии CryoElectron. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. Е62351 (2021).

Vyas, N. et al. Сбор микроскопических данных криоструктурированного освещения из криогенных клеток. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (171), e62274 (2021).

Вайс, Ф., Хаген, В. ДЖ. Х., Шорб, М., Маттеи, С. Стратегии оптимизации сбора данных криогенной электронной томографии. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (169), e62383 (2021).

White, J. B. R. et al. Криоэлектронная микроскопия одиночных частиц: от образца к структуре. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (171), e62415 (2021).

Wollenhaupt, J. et al. Рабочий процесс и инструменты для экранирования кристаллографических фрагментов в центре Гельмгольца в Берлине. Журнал визуализированных экспериментов: JoVE. (169), e62208 (2021).

Редакционная статья

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Область структурной биологии превратилась в мощную систему понимания биологии через атомные детали биомолекулярных структур, обогащая наше понимание биохимических путей и молекулярной основы заболеваний, а также предлагая незаменимый инструмент для трансляционных исследований.

С годами структурная биология вышла далеко за рамки описания статических структур, она также сообщает о молекулярных взаимодействиях, как в растворе, так и в клетках, изучая временные масштабы и динамику. Можно получить информацию для объяснения процессов в разных масштабах размеров, а именно, от атомов и отдельных молекул до целых вирусных частиц и клеток. Различные технологии обеспечивают синергетический набор экспериментальных подходов, включая методы рассеяния на основе рентгеновских лучей, нейтронов или электронов, например, рентгеновскую кристаллографию (MX) или малоугловое рентгеновское рассеяние (SAXS); твердотельный и растворный ядерный магнитный резонанс (ЯМР); и реконструкция отдельных частиц с помощью криоэлектронной микроскопии (крио-ЭМ). Такие методы, как крио-ЭМ томография, крио-мягкая рентгеновская томография и внутриклеточный ЯМР, дополняют этот арсенал подходов к изучению высокомолекулярных систем, особенно в сочетании с другими инструментами визуализации. Вместе с дополнительными биофизическими методами, которые предоставляют дополнительную информацию о сродстве и временных масштабах молекулярного взаимодействия, интегративная структурная биология в настоящее время предлагает внушительный пакет для понимания жизни и разработки лекарств, биологических препаратов (антител, нанотел, вакцин), биоматериалов и других биологических агентов, таких как ферменты, которые могут быть использованы для разложения пластика и помощи окружающей среде.

С самого начала Европейская комиссия (ЕК) признала преимущества, которые исследования в области структурной биологии имеют для общества, и с 1980-х годов Европа активно инвестировала в бесплатное открытие дорогостоящего оборудования для структурной биологии для более широкого научного сообщества. Эта демократизация доступа к многомиллионным объектам стала движущей силой и краеугольным камнем для развития области структурной биологии на международном уровне. Это поставило Европу на передний край в этой области, тем самым способствуя сильному промышленному сектору и внося вклад в местную экономику.

ЕК бережно хранит давнюю и впечатляющую традицию доступа внешних исследователей и обучения в области технологий структурной биологии. Вслед за успешной программой iNEXT (Инфраструктура для ЯМР, ЭМ и рентгеновских исследований для трансляционных исследований), которая предоставила бесплатный доступ к высококлассным объектам и всем европейским исследователям в области структурной биологии до конца 2019 года, в феврале 2020 года стартовал проект Horizon2020 iNEXT-Discovery на еще один четырехлетний период полностью финансируемого доступа к инфраструктурам структурной биологии. В то же время, Instruct-ERIC является ориентиром Европейского стратегического форума по исследовательским инфраструктурам, представляя собой устойчивый оплот в структурной биологии для европейского и международного научного сообщества. Вместе они стремятся вовлечь медиков и других специалистов в исследования в области структурной биологии, и для этого они предлагают доступ к некоторым из лучших знаний, технологий и средств в области структурной биологии во всем мире, как исследователям из академических кругов, так и из промышленности. Вместе с дополнительными партнерами они также организуют семинары и практические тренинги.

Из-за пандемии Covid-19 поездки в исследовательские центры iNEXT-Discovery и Instruct-ERIC были в значительной степени затруднены, что по сути сделало невозможным практическое обучение. Чтобы частично компенсировать это, iNEXT-Discovery и Instruct-ERIC организовали серию вебинаров (https://inext-discovery.eu/events/what-can-inext-discovery-do-for-us, https://instruct-eric.eu/content/instructeric-webinar-series-structure-meets-function), а также специальный выпуск журнала Journal of Visualized Experiments. Здесь вы найдете подробное описание не только некоторых из наших основных процедур доступа, но и специализированных процедур, которые находятся в стадии разработки в области интегративной структурной биологии. Несмотря на то, что наши методы подробно описаны в этом выпуске, некоторые из них требуют специальных знаний и оборудования, которые трудно установить на месте. Установки Instruct-ERIC и iNEXT-Discovery доступны для предоставления этих методов, включая производство биомолекул, необходимых для структурных исследований, с помощью и под контролем высококвалифицированного местного персонала.

Усовершенствованные методы определения высокомолекулярных структур
За последнее десятилетие крио-ЭМ превратилась в очень популярную технологию для определения высокомолекулярных сложных структур. Команда из Университета Лидса (Великобритания) представляет обзор всех этапов, связанных с одночастичным электромагнитным анализом, уделяя особое внимание переменным, которые могут быть оптимизированы в ходе рабочего процесса, и устранениюраспространенных проблем. В связи с тем, что работа с онлайн-микроскопом внешними пользователями становится стандартом, требуются протоколы для эффективного удаленного управления и визуализации. С помощью анализа отдельных частиц остеклованные образцы визуализируются для создания видеороликов, показывающих частицы в случайной ориентации. Рабочий процесс обработки изображений определяет параметры для реконструкции исследуемого образца. Программное обеспечение Scipion от CSIC (ES) предоставляет все инструменты для создания этого рабочего процесса, а также обеспечивает прямую прослеживаемость результатов2.

Сбор данных рентгеновской дифракции на очень мелких кристаллических образцах открывает большие возможности для исследований, а также ставит перед ними технические задачи. Команда Diamond (Великобритания) представляет использование инструментов крио-ЭМ для получения сотен микрокристаллов на одной сетке с минимальным количеством окружающей жидкости на носителе с низким уровнем шума перед сбором данных в специальной среде пучка, которая включает вакуум в рентгеновском тракте до и после образца3. Последовательный сбор рентгеновских данных в синхротронах также является ключом к изучению других сложных кристаллических систем. В другом материале Даймонд показывает пошаговые инструкции, рисунки и видео по сбору данных с использованием различных систем доставки кристаллов с помощью серии примеров4.

Современная интегративная структурная биология в разработке лекарств
Рентгеновская кристаллография хорошо зарекомендовала себя для поиска лекарств на основе фрагментов и уже широко используется для идентификации попаданий, которые могут быть плавно развиты на ведущих кандидатов. Команды из Diamond5, Helmholtz-Zentrum Berlin (DE) и MAX IV (SE)6, а также подразделения EMBL в Гренобле (FR)7 рассказывают о своих последних разработках в области автоматизации рабочих процессов для эффективной кристаллизации мишеней, замачивания фрагментов, монтажа кристаллов, кристаллографического скрининга фрагментов и осаждения структур. Их конвейеры достаточно автоматизированы и используются внешними исследователями по всему миру. Они были применены к уже более чем 100 мишеням (часто удаленно) для выявления попаданий для дальнейшего проектирования сложных соединений и разработки свинцов с помощью структуры.

ЯМР также широко используется для скрининга фрагментов в кампаниях по разработке лекарств, нацеленных либо на белки, либо на полинуклеотиды, как растворимые, так и связанные с мембраной. Университет Гёте во Франкфурте (Германия) представляет оптимизированные конвейеры скрининга ЯМР, сокращающие ручное вмешательство во время экспериментов и анализов8. Их устройства смены образцов обрабатывают сотни образцов ЯМР за один прогон в течение нескольких дней непрерывных экспериментов и автоматизированного анализа.

Кроме того, биофизические методы являются комплементарными к рентгеновскому и ЯМР. Команда из Нидерландского института рака (NL) представляет рабочий процесс с использованием нанодифференциальной сканирующей калориметрии для анализа теплового сдвига для измерения изменений целевой температуры плавления при добавлениифрагментов. За предпосылками в отношении качества и концентрации белка следует аналитический протокол для планирования эксперимента, сбора и анализа данных.

На пути к клеточной структурной биологии
Криоэлектронная томография часто является методом выбора для изучения высокомолекулярных комплексов в клетках. Изображения из остеклованных образцов получают под разными углами наклона, и реконструируют 3D-томограмму, из которой извлекают подобъемы для получения более высокого разрешения путем усреднения субтомограммы. Поскольку электроны сильно взаимодействуют с веществом, для таких исследований требуются образцы толщиной менее 200 нм. Команда CEITEC (CZ) представляет протокол10 для подготовки ячеистых ламелей после погружной заморозки. Несмотря на то, что автоматизация в крио-ЭТ достигла впечатляющих успехов, требуется несколько часов сбора данных, прежде чем произойдет сбор данных с помощью серии наклона, и цели обычно по-прежнему идентифицируются с помощью визуального осмотра сетки. Компания EMBL Heidelberg (DE) подготовила протокол автоматизации для картографирования сеток и квадратов сетки, выбора целей и настройки захвата серии наклона11.

Синхротроны ALBA (ES) и Diamond совместно обсуждают подводные камни и преимущества альтернативы крио-ЭМ томографии, позволяющей исследовать интактные клетки, а именно криомягкой рентгеновской томографии (cryo-SXT)12. Адаптация методов сверхвысокого разрешения к криогенным температурам позволяет проводить корреляционную визуализацию с помощью крио-ET и cryo-SXT. Кроме того, высокопроизводительная криоструктурная световая микроскопия (cryo-SIM) удваивает разрешение обычной флуоресценции, что приводит к определенному расположению молекул или структур в толстых образцах. Это может быть соотнесено с крио-SXT для точного определения специфических особенностей в клеточном контексте.

Команда Утрехтского университета (NL) сообщает о подготовке образцов и высокочувствительных твердотельных экспериментах ЯМР, которые могут быть использованы для изучения сложных физиологических систем, включая естественные мембраныи белок-липид-гликановые системы. Кроме того, быстро развивается внутриклеточный раствор ЯМР для выяснения функциональных процессов. Команда CERM/CIRMMP (IT) описывает, как собрать и эксплуатировать биореакторы, которые позволяют пополнять запасы питательных веществ и кислорода для живых клеток внутри зонда ЯМР в ядре магнита с высоким полем15. Это позволяет проводить расширенные измерения и эксперименты с временным разрешением, например, для мониторинга внутриклеточных белок-лигандных взаимодействий.

Заключительные замечания
Этот выпуск JoVE полностью посвящен последним разработкам в области структурной биологии и ее применению в европейских исследовательских инфраструктурах. Вместе iNEXT-Discovery и Instruct-ERIC позволяют специалистам в области структурной биологии, а также неспециалистам в области биологии и другим исследователям реализовывать свои исследовательские цели, предлагая самые современные услуги.

Раскрытие информации

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторам нечего раскрывать.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот выпуск коллекции методов JoVE финансируется iNEXT-Discovery, проект номер 871037, финансируется программой Horizon 2020 Европейской комиссии.

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. White, J. B. R., et al. Single particle cryo-electron microscopy: From sample to structure. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (171), e62415(2021).
  2. Jiménez-Moreno, A., et al. Cryo-EM and single-particle analysis with scipion. Journal of. Visualized Experiments: JoVE. (171), e62261(2021).
  3. Crawshaw, A., et al. A sample preparation pipeline for microcrystals at the VMXmbeamline. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (172), e62306(2021).
  4. Horrell, S., et al. Fixed target serial data collection at diamond light source. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (168), e62491(2021).
  5. Douangamath, A., et al. Achieving efficient fragment screening at XChemfacility at diamond light source. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (171), e62414(2021).
  6. Wollenhaupt, J., et al. Workflow and tools for crystallographic fragment screening at the helmholtz-zentrum Berlin. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (169), e62208(2021).
  7. Cornaciu, I., et al. The automated crystallography pipelines at the EMBL HTX facility in grenoble. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (172), e62200(2021).
  8. Berg, H., et al. NMR-based fragment screening in a minimum sample but maximum automation mode. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (172), e62262(2021).
  9. Ahmad, M. U. D., et al. Nano-differential scanning fluorimetry for screening in fragment-based lead discovery. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (171), e62469(2021).
  10. Moravcová, J., Pinkas, M., Holbová, R., Nováček, J. Preparation and CryoFIB micromachining of Saccharomyces cerevisiae for CryoElectrontomography. Journal of Visualized Experiments: JoVE. , e62351(2021).
  11. Weis, F., Hagen, W. J. H., Schorb, M., Mattei, S. Strategies for optimization of cryogenic electron tomography data acquisition. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (169), e62383(2021).
  12. Groen, J., et al. A 3D cartographic description of the cell by cryosoft X-ray tomography. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (169), e62190(2021).
  13. Vyas, N., et al. Cryo-structured illumination microscopic data collection from cryogenically preserved cells. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (171), e62274(2021).
  14. Beriashvili, D., Schellevis, R. D., Napoli, F., Weingarth, M., Baldus, M. High-resolution studies of proteins in natural membranes by solid-state NMR. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (169), e62197(2021).
  15. Barbieri, L., Luchinat, E. Monitoring protein-ligand interactions in human cells by real-time quantitative in-cell NMR using a high cell density bioreactor. Journal of Visualized Experiments: JoVE. (169), e62323(2021).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Nano differential Scanning FluorimetryProtein ligand InteractionsIn cell NMRFragment based Lead DiscoverySolid state NMRAutomated CrystallographyCryo EMSingle particle AnalysisCryo electron TomographyData Acquisition StrategiesHigh resolution Protein StudiesBioreactor Technology

Похожие статьи