Методическая статья

Оптическое картирование электрофизиологических аномалий предсердий и обработки кальция в модели стерильного перикардита у крыс

244 просмотров

⸱

DOI:

10.3791/69767

⸱

27 января 2026 г.

 ,  ,  , 
1Department of Cardiology, Union Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 2Research Center of Ion Channelopathy, Union Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 3Institute of Cardiology, Union Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 4Key Lab for Biological Targeted Therapy of Education Ministry, 5Hubei Provincial Engineering Research Center of Immunological Diagnosis and Therapy for Cardiovascular Diseases, Union Hospital, Tongji Medical College, Huazhong University of Science and Technology, 6Department of Cardiology, Xuzhou Central Hospital, 7Institute of Cardiovascular Diseases & Department of Cardiology, Sichuan Provincial People's Hospital, School of Medicine, University of Electronic Science and Technology of China

* These authors contributed equally

В этой статье

Краткое содержание

Этот протокол описывает двойное оптическое картирование транзиентов напряжения и кальция в сердцах с стерильным перикардитом у крыс для оценки воспаление-индуцированного ремоделирования предсердий, лежащего в основе послеоперационной фибрилляции предсердий.

Аннотация

Послеоперационная фибрилляция предсердий (ПОАФ) часто возникает после кардиохирургии и сопровождается воспалением предсердий и ремоделированием. Модель стерильного перикардита (СП) воспроизводит это состояние у крыс, предоставляя ценную платформу для изучения электрофизиологии предсердий, вызванной воспалением. Этот протокол описывает приготовление сердец крыс с перфузией по Лангендорфу после индукции SP и использование одновременного двойного оптического картирования для записи трансмембранного напряжения и кальциевых транзиентов. Сердца окрашивают чувствительным к напряжению красителем RH237 и кальциевым индикатором Rhod-2 AM, а сократимость подавляется блеббистатином для минимизации артефактов движения. Высокоскоростная визуализация позволяет пространственно-временное картирование потенциалов действия предсердий и динамики кальция в рамках контролируемых протоколов пейсинга. Количественные параметры включают длительность потенциала действия, скорость проводимости, длительность кальциевых переходных элементов, время до пика и величину альтернана. Метод позволяет точно оценить гетерогенность проводящих предсердий, электрокальциевую связь и уязвимость аритмий при воспалительном стрессе. Этот визуализированный подход предоставляет воспроизводимую и универсальную платформу для изучения механизмов POAF и тестирования фармакологических или генетических вмешательств, направленных на ремоделирование предсердий.

Введение

Послеоперационная фибрилляция предсердий (ПОФ) — это распространённое осложнение после кардиоторакальной операции, характеризующееся временными эпизодами фибрилляции предсердий (ФП), которые обычно достигают пика в течение 2-4 дней после операции. Хотя POAF часто является самоограниченным, он связан с повышенным риском инсульта, более длительными пребываниеми в больнице и повышенными затратами намедицинское обслуживание 1. Воспалительный стресс в предсердном миокарде считается ключевым фактором егопатогенеза 2.

Модель стерильного перикардита (SP) — хорошо известная модель мелких животных для изучения POAF 3,4. В этой модели нанесение эпикардиального талька вызывает локализованное воспаление перикарда, имитирующее послеоперационные изменения. Предыдущие исследования с этой моделью демонстрировали структурное ремоделирование, изменённую экспрессию зазорных соединений и нарушения обращения с кальцием, предрасположенные каритмогенезу 5,6,7. Однако традиционные электрофизиологические методы предоставляют ограниченную пространственно-временную информацию, что затрудняет фиксировать гетерогенность проводимости и динамику электрокальциевого взаимодействия на целостной поверхности предсердий.

Оптическое картографирование позволяет одновременно с высокой разрешением визуализировать трансмембранное напряжение и кальциевые транзиенты (CaT) на поверхности предсердий, обеспечивая точную визуализацию проводимости предсердий, реполяризации и кальциевойсигнализации 8. В этом протоколе мы описываем двойное оптическое отображение в сердцах крыс с SP с перфузией Лангендорфа. Этот подход позволяет количественно оценивать скорость проводимости, длительность потенциала действия (APD), свойства CaT и альтернаны в рамках контролируемых протоколов пейсинга. Интегрируя электрическую и кальциевую оценку в препарат воспалённых предсердий, метод предоставляет мощный инструмент для изучения механистической основы POAF и для тестирования целенаправленных терапевтических вмешательств.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Протокол

Все процедуры с животными были одобрены Институциональным комитетом по уходу и использованию животных (IACUC) под идентификатором одобрения [2024] IACUC No 4241 и проводились в соответствии с институциональными и национальными рекомендациями. На протяжении всего исследования строго соблюдалось соблюдение рекомендаций по благополучию животных с чётко определёнными гуманными последствиями: крысы с постоянной вялостью, резкой потерей веса более 20%, дыхательной недостаточностью, неспособностью нормально есть и пить или тяжелыми послеоперационными осложнениями немедленно усыплялись с помощью передозировки изофлурана (5% с кислородом 1 л/мин) для минимизации страданий.

1. Подготовка растворов и реагентов

  1. Приготовьте раствор модифицированного тирода (в мМ): 128,2 NaCl, 4,7 KCl, 1,3CaCl 2, 1,05 MgCl2, 1,192PO4, 20NaHCO 3, 11,1 глюкозы. Увеличить пузырь с 95%O 2/5%CO2, отрегулировать pH до 7,38-7,42 и нагреть до 37 ± 1 °C.
  2. Блеббистатин: растворяется в ДМСО (5 мг/мл), хранится при -20°C, защищается от света. Используйте при конечной концентрации 10 мкм.
  3. RH237 (чувствительный к напряжению краситель): растворяется в DMSO (2 мг/мл), хранится при −20 °C, защищённый светом. Используйте при конечной концентрации 2 мкм.
  4. Rhod-2 AM (индикатор кальция): растворяется в ДМСО (1 мг/мл); Храните при −20 °C, защищены светом. Используйте при конечной концентрации 0,89 мкм.
  5. Pluronic F-127 (ПАВ): 20% раствор в DMSO (коммерчески доступные реагенты).
  6. Пентобарбитал натрия (1%): растворить 0,1 г в 10 мл физиологического раствора для анестезии (40 мг/кг, при..).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Обращайтесь с красителями и запасами DMSO с соответствующими средствами индивидуальной защиты; Защищайте блеббистатин и красители от света. Соблюдайте правила биобезопасности и химической безопасности.

2. Оборудование

  1. Система Лангендорфа с регулированием температуры (37 ± 1 °C), резервуаром, пузырьковой колонной и перистальтическим насосом (расход 10-12 мл/мин).
  2. Визуализация: высокоскоростная CMOS-камера (≥ частота кадров 1 кГц; ≥ поле зрения 80 × 80 пикселей для атриума), источник светодиодного возбуждения (530 ± 25 нм), дихроический делитель луча (~630 нм), эмиссионные фильтры (Род-2 ~590 нм; RH237 >700 нм), объектив с регулируемой диафрагмой, оптический стол с вибрационной изоляцией. Источник возбуждения: светодиодный лазер с максимальным током 5 А, зелёный свет с максимальной мощностью 2,2 Вт.
  3. Стимуляция: стимулятор постоянного напряжения, электроды с биполярным стимулированием.
  4. Физиология: погружные электроды для ЭКГ; термисторный зонд; субстрат на чёрном фоне (резина) для снижения освещения желудочков; тонкие хирургические инструменты; Аппарат для крыс. Подробный инвентарь доступен в Таблице материалов.

3. Индукция стерильного перикардита (СП) у крыс

  1. Анестезизируйте самцов крыс типа Sprague-Dawley (200-220 г) 1% пентобарбитала натрия (40 мг/кг, i.p.). Подтвердите глубину анестезии (потеря педального рефлекса).
  2. Интубировать крысу с помощью полиэтиленовой или металлической канюли под прямой визуализацией. Аккуратно продвиньте трубку в трахею, расположившись чуть выше карины, и закрепите её, чтобы предотвратить смещение. Подключите к аппарату ИВЛ с приливным объёмом 2 мл/100 г, 55 вдохов в минуту, I:E = 1:1. Подтвердите эффективную вентиляцию, наблюдая симметричное расширение грудной клетки и стабильное дыхание.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Избегайте глубокого или поверхностного размещения, чтобы предотвратить бронхиальную интубацию или случайную экстубацию.
  3. Подготовьте хирургическое поле. Выполните небольшую парастеринальную торакотомию (второе межреберное пространство возле грудины). Аккуратно обнажите сердце.
  4. Поднимите тимус, чтобы визуализировать оба предсердия. Аккуратно откройте перикард над поверхностью предсердий тонкими щипцами.
  5. Равномерно нанесите стерильный тальк на левую и правую предсердии с помощью мелкой лопатки (доза талька: 50 мг/100 г массы тела крысы). Избегайте попадания на крупные сосуды или желудочки. Замените тимус поверх предсердий, чтобы ограничить миграцию талька.
  6. Переместите мышцы грудной клетки, чтобы закрыть межреберный хирургический разрез. После дезинфекции 0,5% повидона-йода зашивайте мышцы и кожу для закрытия грудной полости и вводите пенициллин (160 000 U/100 г, ин) послеоперационно.
  7. Шам: торакотомия без перикардиотомии и нанесения талька.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Наносите тонкий равномерный слой талька только на эпикард предсердий; Чрезмерное загрязнение тальком или желудочковым загрязнением увеличивает смертность и может запутать специфические для предсердий показатели. Предыдущие исследования подтвердили, что операция на асептическом перикардите у крыс вызывает тяжёлый предсердный миокардит с выраженным фиброзом и повышенными воспалительными факторами, включая IL-6, IL-1β и TGF-β1 3,9.

4. Изоляция сердца и перфузия Лангендорфа

  1. На третий день после операции анестезируйте крыс изофлураном (2-3%) через носовой конус и введите системный гепарин (250 U/кг, i.p.), чтобы предотвратить образование внутрисосудистых тромбов, которые могут блокировать коронарный кровообращение и нарушать перфузию Лангендорфа. Этот момент был выбран на основе наших предыдущих результатов in vivo , согласно которым индукционируемость ФП достигает пиков через 3–4 дня после SP3, что позволяет захватить острую, вызванную воспалением аритмогенную фазу, при этом избегая последующих спаек, мешающих загрузке красителем и оптической записи.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Прежде чем начать, приготовьтесь заново; уравновесить газ и температуру. Выровняйте оптику и подтверждайте фильтры/дихроик. Настройте программное обеспечение для сбора (1-2 кГц, экспозиция 1 мс) и выполните калибровку с помощью флуоресцентной карты.
  2. Проведите быструю срединную торакотомию, чтобы обнажить грудную полость. Изрезать сердце в блоке с частью дуги аорты и немедленно погрузить его в ледяный, насыщенный кислородом раствор Тирода, чтобы остановить метаболизм и сохранить жизнеспособность тканей. Тщательно вскрыть окружающую соединительной ткани, сохраняя длину аорты 0,5 мм для канюляции. Закрепите аорту на канюле Лангендорфа с помощью швов из 4-0 шелковых швов, чтобы обеспечить герметичность и выровнять нижний край катетера с верхней границей предсердия. Начните ретроградную перфузию с насыщенными кислородом тиродов при постоянном расходе 10-12 мл/мин, поддерживая температуру перфузата на уровне 37 ± 1 °C. Для воспроизводимости характеристики канюли аорты крысы следующие: внешний диаметр: 1,4 мм; внутренний диаметр: 1,0 мм; общая длина: 3–4 см; глубина вставления: примерно 0,5–1,0 см в корень аорты; форма кончика: слегка сужается; Материал: нержавеющая сталь или тупая металлическая труба. Канюля должна быть достаточно жёсткой, чтобы выдерживать давление перфузии (обычно 60-80 мм рт. ст.) без изгиба, а кончик не должен закрывать коронарную остию.
  3. Наблюдайте за сердцем на предмет немедленного реперфузионного эффекта. Успешная перфузия определяется быстрым и быстрым вымывом остаточной крови из коронарной сосудистой системы, восстановлением равномерного розового цвета миокарда и возобновлением спонтанных ритмических сокращений. Для дальнейших экспериментов требуется минимальный отёк миокарда и стабильный пульс (обычно 300-400 уд/мин). Одновременно записывайте электрокардиограмму сердца. Дайте сердцу уравновеситься не менее 20 минут при постоянной перфузии перед началом оптических протоколов картирования.

5. Подавление движения и вентиляция

  1. Добавьте блеббистатин в перфузат (конечные 10 мкм). Перфузия в течение ~10 минут, пока схватки не прекратятся.
  2. Введите гипотензивный катетер в левый желудочек через лёгочную вену через митральный клапан, чтобы декомпрессировать желудочек, тем самым снижая внутрикавитарное давление при сохранении морфологии предсердий и целостности сигнала. Для воспроизводимости характеристики катетера следующие: внешний диаметр: 1,4 мм; внутренний диаметр: 1,0 мм; общая длина: 1,5 см; Глубина ввода в сердце: 1,0 см. Не открывайте предсердия для сохранения геометрии предсердий и сигналов.

6. Загрузка красителями

  1. Перфузия сердца: после остановки сердца перфузируйте сердце при комнатной температуре при постоянном расходе 10-12 мл/мин.
  2. Окрашивание кальциевым индикатором: добавьте Rhod-2 AM (конечная концентрация 0,89 мкм) и 20 мкл 20% плюронного F-127 до 100 мл перфузионного раствора. Перфузируйте сердце этим раствором примерно 30 минут, пока предсердия и желудочки не проявят равномерную красную флуоресценцию.
  3. Чувствительное к напряжению окрашивание красителем: добавьте RH237 (конечная концентрация 2 мкм) к 100 мл перфузионного раствора. Перфузируйте сердце в течение ~5 минут, пока предсердия и желудочки не станут розовыми.
  4. Разогрев и размывка: Переведите сердце обратно в исходную систему перфузии. Прогрейте до физиологической температуры и пропустите 5-10 минут, чтобы смыть невпитанный краситель.
    ПРИМЕЧАНИЕ: слабые CaT-сигналы часто отражают недостаточную нагрузку на Rhod-2; Продлите загрузку на 10-15 минут и убедитесь, что Pluronic свежий. Если движение сохраняется, подтвердите силу блеббистатина и защиту от света.

7. Геометрия визуализации и изоляция сигналов

  1. Поместите сердце в ванну при 37 °C. Направить левое предсердие (LA) к камере. Выровняйте основные и вторичные светодиодные источники света в сторону LA.
  2. Поддерживайте сердце, чтобы предотвратить дрейф; Аккуратно раздвините предсердие и закрепите его иглоукалыванием для оптимальной визуализации. Накройте желудочки чёрной резиновой плёнкой, чтобы минимизировать световое загрязнение желудочков.
  3. Разместите биполярные электроды для стимуляции на правом предсердии (РА). Разместите электроды ЭКГ рядом с предсерддями для захвата больших P-волн.

8. Протоколы захвата и темпирования

  1. Запустите программное обеспечение для картографирования (OMapRecord4.0). Установите частоту кадров на 1-2 кГц; отрегулировать нагрузку светодиодов на 3-4 А; поле зрения охватывает весь Лос-Анджелес. Регулируйте усиление/экспозицию, чтобы избежать насыщения в обоих каналах. Оптимизируйте усиление и экспозицию камеры, чтобы избежать насыщения, при этом максимизируя отношение сигнал/шум. Параметры изображения: экспозиция 1 мс; максимальная частота камеры 30 кГц; частота дискретизации 12,5 кГц; разрешение 2048 × 2048 пикселей; ROI частоты кадров до 3,5 кГц; пространственное разрешение 70 мкм. Эти настройки обеспечивают высокоточную запись AP и CaT.
  2. Пейсинг S1S1 (базовый): РА при 7 Гц (ширина импульса 2-4 мс; двойной диастолический порог). Получите ≥ 5-секундные фильмы для длительности APD/Cat (CaD), времени до пика и скорости проводимости.
  3. Протокол S1S2 (огнеупорность/автофокус): Передайте 30 ударов S1 на частоте 7 Гц, затем один S2; Уменьшить интервал S1-S2 с 140 мс по шагам (10/5/1 мс) до огнеупорности. Запись восстановления CaT (A2/A1), эффективный рефрактерный период (ERP), индуцируемость/длительность ФП.
  4. Инкрементальный темп (alternans): Увеличьте темп RA с 8 до 18 Гц за шаги 1-2 Гц. Записывайте ≥ 5 секунд на каждой скорости, чтобы количественно определить Ca-ALT, APD-ALT и DIS-ALT. Сохраняйте одновременные двухканальные видео и синхронизированные ЭКГ/стимуляционные трассы для анализа.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Поддерживайте постоянную температуру и перфузию во время ходьбы; Гипотермия снижает проводимость и усиливает артефакты альтернана.

9. Обработка данных и количественная оценка

  1. Анализ оптических сигналов с помощью программного обеспечения OMapScope 4.0. Для снижения шума при сохранении морфологии сигнала применялся гауссов фильтр 3×3, усредняя каждый пиксель с его соседями. Время активации определяется как точка максимального dF/dt во время движения вверх, от которой скорость проводимости рассчитывается путём деления линейного расстояния между самыми ранними и поздними точками активации на соответствующую разницу времени активации. APD 70/90 определялся как время от максимального dF/dT потенциала действия до 70% или 90% реполяризации амплитуды AP. CaD 70/90 определялся как время от пика кальциевого транзиента (Ca²⁺) до 70% или 90% распада. Альтернаны количественно оценивались следующим образом: Ca-ALT рассчитывался как 1 минус отношение средней амплитуды малой и большей средней CaT, APD-ALT — как разница между длинными и короткими значениямиAPD 80 , а DIS-ALT — как пространственно вне фазы альтернаны, разделённые узловыми линиями. Коэффициент восстановления RyR рассчитывался как отношение двух последовательных пиков CaT (меньше/больше).

10. Критические параметры и критерии приема

  1. Перфузия: 10-12 мл/мин, 37 ± 1 °C; стабильный синус или ритм с темпом; Лос-Анджелес хорошо проник.
  2. SNR: Upstroke dF/F ≥ 3 для обоих каналов; Минимальное фотоотбеливание над окном приобретения.
  3. Движение: незначительное остаточное движение после блеббистатина; стабильная регистрация изображений по кадрам.
  4. Температура: непрерывный мониторинг; исключать наборы данных с ванной < 36 °C или > 38 °C во время накопления.

11. Статистический анализ

  1. Все статистические анализы проводились с помощью GraphPad Prism 9. Данные представлены как среднее ± SEM. Нормальность распределения данных оценивалась с помощью теста Шапиро-Вилка. Для данных с нормальным распределением различия между двумя группами анализировались с помощью непарного двухстороннего t-теста Стьюдента; для ненормально распределённых данных применялся тест Манна-Уитни U. Категориальные переменные анализировались с помощью теста χ2 . P < 0,05 считался статистически значимым.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Результаты

Индуцибилность AF
Внематочная активность и реинтеграция являются ключевыми механизмами, способствующими инициации и поддержаниюPOAF 2. Длина волны при входе в атмосферу (λ) определяется произведением ERP и скорости проводимости (CV), то есть λ = ERP × CV. В сердцах, оперируемых с имитацией, стимуляция S1S2 вызывала стабильные предсердные реакции без аритмии (см. рисунок 2A). В отличие от этого, сердца, обработанные СП, часто проявляли аномальные ре...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Этот протокол описывает двойное оптическое отображение AP и CaT в изолированных сердцах крыс после SP — модели POAF, управляемой воспалением. Одновременная запись сигналов Vm и Ca2 + с высоким разрешением по целой поверхности предсердия при программируемом пейсировании позволяет оценить APD, время до пика, скорость проводимости, пространственную гетерогенность реполяризации, CaD, амплитуду CaT, время CaT до пика и региональную вариабельность обработки Ca. Он также позволяет об...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Раскрытие информации

У авторов нет конфликтов интересов, которые нужно раскрывать.

Благодарности

Эта работа была поддержана Национальным фондом естественной науки Китая (No 82470328, 82170326to Y.D.; No 82300350 J.L.). Мы хотели бы выразить благодарность докторам Голян Хао и Гунсин Вану (Институт электрофизиологии Академия медицинских наук Хэнань, Чжэнчжоу, Китай) за их выдающуюся помощь в области оптического картографирования.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Список материалов, использованных в этой статье
ИмяКомпанияКаталожный номерКомментарии
БлеббистатинAbcamAB120425
CaCl2Сигма-Олдрич10043-52-4
CMOS-камераMappingLabOMS-PCIE-2002
Система ЭКГЧэнду ТехманBL-420F
FE32 -МетрМеттлер Толедо30254108
Фильтры/дихроические зеркалаMappingLabRH237 >700 морских миль;
CaT 590 нм
ГлюкозаСигма-Олдрич921-60-8
Имгаэ ваннаMappingLabН/Д
KClСигма-Олдрич7447-40-7
Перфузионная система ЛангендорфаRadnoti / CustomН/Д
Источник светодиодов (530 и плюсм; 25 нм)MappingLabН/Д
MgCl2Сигма-Олдрич7786-30-3
NaClСигма-Олдрич7647-14-5
2PO4Сигма-Олдрич10049-21-5
NaHCO3Сигма-Олдрич144-55-8
Программное обеспечение OMapRecord4.0MappingLabН/Д
Программное обеспечение OMapScope4.0MappingLabН/Д
Перистальтический насосКоул-ПармерMasterflex и рег; L/S&Reg;
Pluronic F-127ИнвитрогенP3000MP
RH237 (краситель напряжения)Термо Фишер / ИнвитрогенS1109
Rhod-2 AM (индикатор Ca)Термо Фишер / ИнвитрогенR1245MP
Аппараты для мелких животныхЮЯНБИОV-100
Пентобарбитал натрияСигма-ОлдричP3761
Крысы Спраг-Доули (200– 220 г, мужчины)Местный сертифицированный поставщикН/Д
Стерильный тальковый порошокСигма-ОлдричT1586
СтимуляторMappingLabLEDC-2002
Водяная баня (с контролируемой температурой)Нинбо СинчжиSC-15

Ссылки

  1. Gaudino, M., et al. Postoperative atrial fibrillation: From mechanisms to treatment. Eur Heart J. 44 (12), 1020-1039 (2023).
  2. Dobrev, D., Aguilar, M., Heijman, J., Guichard, J. B., Nattel, S. Postoperative atrial fibrillation: Mechanisms, manifestations and management. Nat Rev Cardiol. 16 (7), 417-436 (2019).
  3. Fu, X. X., et al. Interleukin-17A contributes to the development of postoperative atrial fibrillation by regulating inflammation and fibrosis in rats with sterile pericarditis. Int J Mol Med. 36 (1), 83-92 (2015).
  4. Liao, J., et al. TRPV4 blockade suppresses atrial fibrillation in sterile pericarditis rats. JCI Insight. 5 (23), e137528(2020).
  5. Huang, Z., et al. Signal transducer and activator of transcription 3/microRNA-21 feedback loop contributes to atrial fibrillation by promoting atrial fibrosis in a rat sterile pericarditis model. Circ Arrhythm Electrophysiol. 9 (7), e003396(2016).
  6. Liao, J., et al. Oral administration of TRPV4 inhibitor improves atrial calcium handling abnormalities in sterile pericarditis rats. Sheng Li Xue Bao. 74 (2), 188-200 (2022).
  7. Rossman, E. I., et al. The gap junction modifier GAP-134 improves conduction and reduces atrial fibrillation/flutter in the canine sterile pericarditis model. J Pharmacol Exp Ther. 329 (3), 1127-1133 (2009).
  8. Baines, O., et al. Optical mapping and optogenetics in cardiac electrophysiology research and therapy: A state-of-the-art review. Europace. 26 (2), euae017(2024).
  9. Wu, Q., et al. Colchicine prevents atrial fibrillation promotion by inhibiting IL1βinduced IL6 release and atrial fibrosis in the rat sterile pericarditis model. Biomed Pharmacother. 129, 110384(2020).
  10. Qu, Z., Weiss, J. N. Cardiac alternans: From bedside to bench and back. Circ Res. 132 (1), 127-149 (2023).
  11. Wang, L., et al. Optical mapping of sarcoplasmic reticulum Ca2+ in the intact heart: Ryanodine receptor refractoriness during alternans and fibrillation. Circ Res. 114 (9), 1410-1421 (2014).
  12. Liu, T., et al. Altered calcium handling produces reentrypromoting action potential alternans in atrial fibrillationremodeled hearts. JCI Insight. 5 (8), e133754(2020).
  13. Liao, J., et al. Interleukin6mediated Ca2+ handling abnormalities contribute to atrial fibrillation in sterile pericarditis rats. Front Immunol. 12, 758157(2021).
  14. Baines, O., et al. Optical mapping and optogenetics in cardiac electrophysiology research and therapy: A stateoftheart review. Europace. 26 (2), euae017(2024).
  15. Kanaporis, G., Blatter, L. A. Alternans in atria: Mechanisms and clinical relevance. Medicina (Kaunas). 53 (3), 139-149 (2017).
  16. Boukens, B. J., Efimov, I. R. A century of optocardiography. IEEE Rev Biomed Eng. 7, 115-125 (2014).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

Видео скоро будет доступно

Похожие статьи