Методическая статья

Хроматин Пробирной по правам ткани мозга

DOI:

10.3791/717

21 марта 2008 г.

В этой статье

Краткое содержание

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

До недавнего времени выражение исследования человеческого мозга были ограничены количественного РНК или белка. С хроматин иммунопреципитации методы описаны в этой статье, можно будет сопоставить гистонов метилирование и других эпигенетических регуляторов экспрессии генов в посмертных мозг.

Аннотация

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Хронический психоневрологических заболеваний, таких как шизофрения, биполярное заболевание и аутизмом, как полагают, является результатом сочетания генетических и экологических факторов, которые могут привести к эпигенетических изменений экспрессии генов и других молекулярных патологии. Традиционно, однако, выражение исследований в посмертных мозга были приурочены к количественной оценке мРНК или белка. Ограничения встречаются в посмертных исследований мозга, такие как изменчивость в аутолиза времени и ткани целостностей также возможных последствий любого исследования высшей структуры хроматина порядке. Тем не менее, нуклеосомной организации геномной ДНК, включая ДНК: основные гистонов обязательным - как представляется, в значительной степени сохранились в репрезентативных выборок, предоставляемых различными банками мозга. Таким образом, можно изучать метилирования и другие ковалентные модификации гистонов ядро ​​в определенные геномных локусов в посмертных мозг. Здесь мы приведем упрощенную родной хроматин иммунопреципитации (NChIP) протокол для замороженных (никогда не фиксированной) образцы человеческого мозга. Начиная с микрококковой нуклеазы пищеварения мозга гомогенатов NChIP следуют КПЦР может быть завершена в течение трех дней. Методология, представленная здесь, должно быть полезным для выяснения эпигенетические механизмы экспрессии генов в нормальных и больных человеческого мозга.

Протокол

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Порядок действий:

1-й день

1. Однородный 50-500 мг замороженных посмертного серое вещество ткани с Douncing буфера.

! ВНИМАНИЕ -! Правам ткани должны быть обработаны с осторожностью, под строгим условиям безопасности. Обращайтесь в BSL-2 или более высоким стандартам безопасности.

  1. Возьмите ранее рассеченные, посмертные мозг от -80 ° C, Dounce их в 5 раз объем мозга Douncing буфера, и место в трубку 2,0 микроцентрифужных мл. Согласованные образца и контроля пар обрабатываются одновременно.

2. Микрококковой нуклеазой (MN) Пищеварение

  1. Добавить 5U/mL из микрококковой нуклеазы к образцу и смешивать в растворе с помощью пипетки вверх и вниз перед размещением на льду.
    * Важный шаг - Важно сделать этот шаг, быстро, поскольку MN имеет способность действовать на еще 4 ° C.
  2. Инкубируйте образцы в течение 7 минут при температуре 37 ° C.
  3. После 7 минут инкубации, добавляют 0,5 М ЭДТА до концентрации 10 мМ, чтобы остановить MNase деятельности.

3. Hypotonisation

  1. Место образцов в 15 мл трубки сокола. Добавить 10X образца объемом 0,2 ЭДТА, 1 / 2000 объем пробы 0,2 М benzamidine и 1 / 1000 образцов объемом phenylmethanesulphonylfluoride 0,1 М (PMSF). Последние два соединения используются в качестве ингибиторов протеазы.
    * Важный шаг - Важно сохранить образцы на льду во время всех этих шагов.
  2. Инкубируйте образца на 1 час, в то время вортексе его каждые 10 минут.
  3. В конце часовой инкубации, добавить 1 / 2000 объема образца 3М DTT, еще один ингибитор протеазы.
  4. Vortex образец еще раз и центрифуге при 3175 RCF в течение 10 минут при 4 ° C.
    * Факультативный шаг - Precleansing с Protein G агарозы.
    1. Возьмите супернатант и поставить в новый 15 мл трубки сокола.
    2. Добавить 500 мкл белка G агарозы.
    3. Поворот при комнатной температуре в течение 30 мин.
    4. Центрифуга при 4000 оборотов в минуту в течение 10 мин при 4 ° C.
  5. Распространение супернатант, так что 500 мкл используются в качестве входного контроля (содержащие только геномной ДНК), а остальное разделить на две пробирки, содержащие 1600 мкл образца каждого, - которые для иммунопреципитации хроматина (чип) образцов.
  6. Входной контроль находится при температуре -80 ° CO / N до последующего использования.
  7. Для ChIP образцов - добавить 1:10 Объем 10XFSB и 4μg антител, то вихрь образцов и поворачивать их при температуре 4 ° С в течение ночи.
    ! ВНИМАНИЕ -! Количество и разведение антител может потребовать оптимизации.

2-го дня

! ВНИМАНИЕ! - Начало 2-й день, если мыться Protein G агарозы, который будет использоваться для изоляции нуклеосомной ДНК. С агарозном бисер очень чувствительны, надо отрезать глав советов, когда любой пипетки раствор, содержащий агарозном бисером.

1. Зондирование Protein G агарозном Бусины с ДНК

  1. Добавить 1,6 мл 1XFSB до 245 мкл белка G-агарозы (достаточно для 4 труб) в 2 мл микроцентрифужных трубы (петли).
  2. Отдельное решение на две 2 мл труб и пополнить каждая до 1,6 мл с 1X ФСБ.
  3. Поворот при комнатной температуре в течение 30 сек и центрифуги на 0,1 RCF на 30 сек.
  4. Удалить супернатант использованием вакуума.
  5. Добавить 1,6 мл 1X ФСБ еще раз. Поворот образцов в течение 30 секунд, а затем центрифуги на 0,1 RCF на 30 сек.
  6. Удалить супернатант еще раз, и объединить обе трубы с 1,5 мл 1XFSB.
  7. Добавьте 15 мкл ультразвуком ДНК спермы лосося (10mg/mL).
    ! ВНИМАНИЕ -! Этот шаг должен, в принципе, уменьшить неспецифическое связывание иммунопреципитации с бисером. Однако это также может привести к ложным положительным результатам для некоторых (человека) последовательностей ДНК.
  8. Поворот при комнатной температуре в течение 30 мин, затем центрифуги на 0,1 RCF на 30 сек.
  9. Удалить супернатант. Добавить 200 мкл 1XFSB.
  10. Добавить 90 мкл из бисера агарозы в каждый чип образца. Поворот при 4 ° С в течение 1 часа.
  11. Добавить 1 мл 1XFSB в оставшиеся бисером агарозы в качестве отрицательного контроля и вращаются на 4 ° С в течение 1 часа.
  12. После часовой инкубации, центрифуги образцов и отрицательного контроля на уровне 0,1 RCF на 30 сек. Удалите супернатант.

2. Стиральная бисер

! ВНИМАНИЕ! - Стиральная буферы должны храниться при температуре 4 ° С до использования, и будут использоваться только в том случае меньше, чем месяц назад.

  1. Добавить 1 мл каждого мытья решение бисером и вращаться в течение 3 мин при комнатной температуре.
  2. Центрифуга на 0,1 RCF на 30 сек.
  3. Удалите надосадочную использованием вакуума.

* Каждый моющего раствора

- Низкий буфер мытье соли

- Высокая буфера стиральной соли

- Раствор Хлорид лития - только вращаться при комнатной температуре в течение 1 минуты!

- TE буфера (10 мМ Tris, 1 мМ ЭДТА рН = 8)

3. Элюирование

* Важный шаг - Сделать свежие буфера элюции для каждого эксперимента на день она будет использоваться.

  1. Добавьте 250 мкл свежеприготовленного элюции буфера каждого образца.
  2. Поворот на 15 минут при комнатной температуре, а затем центрифуги в 0,4 RCF в течение 1 мин.
  3. Сохранить супернатант в микроцентрифужных 2,0 мл трубки (Loop).
  4. Добавьте 250 мкл буфера для элюции каждого образца и вихревые вручную в течение нескольких секунд. Затем вихрь образцов в течение 15 минут на mulitvortexer.
  5. Центрифуга на 16 оборотов в минуту RCF в течение 4 минут и сохранить супернатант в том же 2,0 мл трубки (Loop).

4. Дайджест белка

  1. Добавьте 10 мкл 0,5 М ЭДТА, 25 мкл 0.8M Tris-HCl, рН 6,5, 10 мг / мл протеиназы К (1 / 200 проба), чтобы каждый чип образца.
  2. Для каждого входного контроля, добавить буфер для лизиса протеиназы К пищеварения (1 / 10 образца буфера) и 10mg/ml протеиназы К (1 / 200 образца буфера).
  3. Инкубируйте Входные и ChIP образцов в 52 ° С в течение 3 часов.

5. Фенол / хлороформ добычи

! ВНИМАНИЕ -! Эксперимент требует фенол / хлороформ должна быть выполнена под капотом. Используйте нитриловые перчатки при работе с фенол / хлороформ.

  1. После 3-часовой инкубации, мы добавляем 500 мкл фенол-хлороформ для каждого образца.
  2. Vortex всех образцов в течение нескольких секунд, затем центрифуге при 13 RCF оборотов в минуту в течение 5 мин.
  3. На данный момент, две фазы будут присутствовать, и мы заинтересованы в содержании верхней фазе. Выньте верхнюю фазу и положить его в 2 мл микроцентрифужных трубки.
  4. Добавить смесь 2μL гликогена и 50 мкл 3М ацетата натрия к каждому образцу наряду с 1,375 мл 100% этанола.
  5. Vortex всех образцов энергично. Поместите их в -80 ° С в течение ночи.

3-го дня

  1. Удалить образцы формы -80 ° C и поместите их на лед для них оттепели.
  2. Центрифуга на 15 RCF в течение 10 минут при 4 ° C.
  3. Осторожно удалите супернатант, не нарушая гранул в нижней части трубы.
  4. Добавьте 1 мл холодного 75% этанола на каждого образца, затем инвертировать их 4-6 раз.
  5. Центрифуга на 18 RCF в течение 5 мин при 4 ° C.
  6. Удалить супернатант еще раз и позволяют гранулы высохнуть на воздухе.
  7. Растворить сухой гранул в 50 мкл 4 мм Трис-HCl, PH8 и хранить при температуре -80 ° C до последующего использования.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Обсуждение

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Протокол изложенных здесь особенно полезен для следователей интересует гистонов и / или метилирования ДНК подписей человеческого мозга, потому что эти хроматина маркировка может быть менее склонными к посмертной артефакты по сравнению с другими типами модификаций, в том числе (гистонов) ацетилирования и фосфорилирования 1, 2. Посмертных мозг поддается изучению моно-нуклеосомной препаратов; ДНК остается в значительной степени придает основной гистонов, по крайней мере в образцах с представителем интервалы аутолиза (время между сме...

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Благодарности

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Эта работа была поддержана грантом Национального института психического здоровья (5R01MH071476).

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Материалы

Решения:

  • nChIP Douncing буфера: 10 мМ Трис, 4 мМ MgCl 2, 1 мМ CaCl 2 настроить рН до 7,5
  • 10x ФСБ: 50 мМ ЭДТА, 200 мМ Tris, 500 мМ NaCl регулировать рН до 7,5
  • Низкий соль моющий буфер: 0,1% SDS, 1% Triton X-100, 2 мМ EDTA, 20 мМ трис (рН 8), 150 мМ NaCl
  • Высокая соль стиральной буфера: 0,1% SDS, 1% Triton X-100, 2 мМ EDTA, 20 мМ трис (рН 8), 500 мМ NaCl
  • Литий хлорид буфера: 1% Igepal-CA 630, 1% Deoxycholic кислоты, 1 мМ ЭДТА (рН 8), 10 мМ трис (рН 8), 0,25 М LiCl
  • ТЕ-буфера: 10 мМ трис (рН 8), 1 мМ ЭДТА
  • Элюции буфера: 0,1 М NaHCO 3, 1% SDS
  • Протеиназы К пищеварения буфера (10X): 1М Трис, 50 ​​мМ ЭДТА, 2% SDS, 2 М NaCl регулировать рН до 8,0
  • 3 М ацетата натрия: 24,61 г безводного ацетата натрия (MW = 82,03) в 100 мл дистиллированной воды автоклаве. Отрегулируйте рН до 5,2 использованием концентрированной уксусной кислоты.

Ссылки

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Huang, H. S., Matevossian, A., Jiang, Y. Akbarian S. Chromatin immunoprecipitation in postmortem brain. J Neurosci Methods. 156, 284-292 Forthcoming.
  2. Huang, H. S., Matevossian, A., Whittle, C. Prefrontal dysfunction in schizophrenia involves mixed-lineage leukemia 1-regulated histone methylation at GABAergic gene promoters. J Neurosci. 27, 11254-11262 Forthcoming.
  3. O'Neill, L. P., Turner, B. M. Immunoprecipitation of native chromatin: NChIP. Methods. 31, 76-82 Forthcoming.
  4. Spiteri, E., Konopka, G., Coppola, G., et al. Identification of the transcriptional targets of FOXP2, a gene linked to speech and language, in developing human brain. Am J Hum Genet. 81, 1144-1157 Forthcoming.
  5. Huang, H. uang, Akbarian, S. GAD1 mRNA expression and DNA methylation in prefrontal cortex of subjects with schizophrenia. PLoS ONE. 2, Forthcoming.
  6. Stadler, F., Kolb, G., Rubusch, L., Baker, S. P., Jones, E. G., Akbarian, S. Histone methylation at gene promoters is associated with developmental regulation and region-specific expression of ionotropic and metabotropic glutamate receptors in human brain. J Neurochem. 94, 324-336 Forthcoming.

Доступ ограничен. Войдите в систему или начните пробный период, чтобы просмотреть этот контент.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на повторное использование текста или иллюстраций этой статьи JoVE

Запросить разрешение

Теги

ChIPK

Похожие статьи