Method Article

Селективный маркировки на поверхности клеток белков, используя CyDye ПГЛП Fluor Минимальная Красители

DOI:

10.3791/945

November 26th, 2008

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Простой и конкретный метод был продемонстрирован для флуоресцентной маркировки и усовершенствованные функции обнаружения белков клеточной поверхности, без фракционирования шаг. Дифференциальная обилие белков клеточной поверхности, были проанализированы с использованием двумерных (2-D), электрофорез и Ettan ™ ПГЛП технологии.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Поверхностные белки играют центральную роль в способности клеток к реагируют на окружающую среду и взаимодействие с соседними клетками. Они, как известно, индукторы практически всех внутриклеточных сигнальных. Более того, они играют важную роль в экологической адаптации и лечения наркозависимости, и часто участвует в патогенезе заболевания и патологии (1). Белок-белковые взаимодействия присущи сигнальных путей, а также получить более глубокое в этих сложных биологических процессов, чувствительных и надежных методов, необходимых для изучения белков клеточной поверхности. Двумерные (2-D) электрофореза широко используется для обнаружения биомаркеров и другие цели в сложных образцов белков изучать дифференциальные изменения. Сотовые поверхностных белков, частично из-за их низкой численности (1 2% клеточных белков), которые трудно обнаружить в 2-D гель без фракционирования или какой-либо другой тип обогащения. Они также часто слабо представлены в 2-D гелями из-за их гидрофобной природы и высокой молекулярной массой (2). В этом исследовании мы представляем новый протокол для нетронутыми клетки, используя CyDye ПГЛП Fluor минимальным красители для конкретной маркировки и обнаружения этой важной группы белков. Результаты показали, конкретных маркировки большого количества белков клеточной поверхности с минимальной маркировки внутриклеточных белков. Этот протокол является быстрым, простым в использовании, и все три CyDye ПГЛП Fluor минимальным красителей (Су 2, 3 и Су Су 5) может быть использован для обозначения на поверхности клеток белков. Эти функции позволяют мультиплексирования использованием 2-D флуоресцентный гель-электрофореза Разница (2-D ПГЛП) с Ettan ПГЛП технологии и анализ экспрессии белка изменения с помощью DeCyder 2-D Дифференциальный анализ программного обеспечения. Уровень поверхности клеток белков последовало во время сыворотке голодание клеток СНО для различных периодов времени (см. Таблицу 1). Небольшие изменения в изобилии были обнаружены с высокой точностью, и результаты поддерживаются определены статистические методы.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Клеточные культуры

  1. Рост китайского хомячка яичников клеток (СНО-К1) с использованием стандартных процедур культур клеток, в F-12 Хэм среде с GlutaMAX Я, содержащей 10% эмбриональной телячьей сыворотки, 50 ед / мл пенициллина, 50 мкг / мл стрептомицина сульфат (Invitrogen).
  2. Биржа питательной среды для бессывороточной СМИ. Этикетка белков клеточной поверхности, были в различные моменты времени с CyDye ПГЛП Fluor Cy3 или Cy5 минимальным красителей (см. раздел клеточной поверхности, маркировки, ниже).
  3. Бассейн равное количество клеток из каждой точки времени и этикетка с CyDye ПГЛП Fluor Су2. Используйте их в качестве внутреннего стандарта для каждого 2-D геле.
  4. Большинство экспериментов могут быть выполнены с СНО-К1 клетки, но мышиных эмбриональных фибробластов (3T3 L1) и мышь асцит лимфомы лимфобластов (EL4) также может использоваться (данные не приведены).
  5. Рост последних двух типов клеток в DMEM среде с GlutaMAX II, но, в противном случае используйте одинаковые условия для CHO-K1 клеток.

Маркировки на поверхности клетки

  1. Аккуратно отделить прилипшие клетки неферментативно, подсчета и деления на аликвоты 5-10 x106 клеток. Для клеток, растущих в виде суспензии, опустите отсоединения шаг.
  2. Центрифуга клеточные суспензии около 800 мкг в течение 5 минут. Удалить надосадочную жидкость содержащие среды.
  3. Вымойте окатышей resuspendion в Сбалансированный Соль 1 мл ледяной Хэнка Решение (HBSS) рН 8,5. Центрифугировали при 800 мкг при 4 ° С в течение 2 минут.
  4. Удалить супернатант и ресуспендируют осадок клеток в 200 мкл буфера ледяной маркировки (HBSS рН 8,5, 1 М мочевина).
  5. Этикетка неповрежденных клетках с 600 пмоль CyDye ПГЛП Fluor минимальным красителей в течение 20 минут на льду в темноте.
  6. Quench реакцию добавлением 20 мкл 10 мМ лизина. Инкубируйте в течение 10 минут.
  7. Вымойте поверхность-меченых клеток дважды ресуспендирования в 500 мкл HBSS рН 7,4, с последующим центрифугированием при 800 мкг при 4 ° С в течение 2 минут.

Лизису клеток и фракционирования

  1. Lyse поверхностно-меченых клеток в 150 мкл холодного буфера для лизиса (7 М мочевины, 2 М тиомочевины, 4% CHAPS, 30 мМ Трис, 5 мМ ацетат магния рН 8,5). Оставьте на льду в течение не менее 1 ч с редкими вортексе.
  2. Центрифуга лизатов при 10 000 мкг при 4 ° С в течение 5 минут. Передача супернатант в новую пробирку. Этот образец не-фракционированного образца, содержащего всех клеточных белков.
  3. Параллельно с этим, мыть ячейки гранул, как и выше, то фракционирования (при использовании комплекта мембраны фракционирования, Пирс) в мембране и цитоплазме фракций до 2-D электрофореза геля. Мембранной фракции содержит внутренние и клеточных поверхностных белков мембран.
  4. Для сравнения, следуйте стандартной процедуре Ettan ПГЛП 3 и лизировать, этикетки, и, наконец, фракционирования клеток. Определить концентрацию белка в образцах с помощью 2 - D Квант Kit (GE Healthcare).

2-D электрофореза

  1. Увлажняет Immobiline DryStrip гели, рН 3-11NL (24 см) с использованием Immobiline DryStrip Reswelling лоток, 24 см в 450 мкл раствора Регидратация DeStreak (0,5% IPG буфера) в течение ночи.
  2. Применить CyDye меченные образцы (соответствует 50 мкг общего белка), чтобы Immobiline DryStrip гелей анодной загрузки кубок в многообразии и выполнять изоэлектрофокусировки (МЭФ), используя Ettan IPGphor II МЭФ системы в соответствии с инструкциями.
  3. После МЭФ, равновесие полосы в два этапа и место на вершине большой (26 х 20 см) 12,5% полиакриламидном геле (SDS-PAGE). Наложение с 0,5% агарозы (в беге буфер, содержащий бромфенола синий). Выполнить 2-D электрофореза использованием Ettan DALTtwelve Большие вертикальные системы на 5 Вт / геля в течение 30 минут, а затем на 15 Вт / гель, пока краситель фронт достигнет нижней части геля.

Изображений и анализа данных

  1. После завершения 2-D электрофореза, сканирования гелей для Су2, Cy3 или Cy5 использованием Тайфун 9410 Переменная Imager режиме.
  2. Сравните месте карты из мембранных фракций, цитозольного фракций, а не-фракционированного образцов с использованием DeCyder 2-D Дифференциальный анализ программного обеспечения 4.

После окрашивания

  1. После обработки изображений, серебряные пятна гели согласно стандартной процедуре 5.

Белки идентификации

  1. Расти, урожай, мойки и лизировать препаративных количествах (примерно 1 мг общего белка от 10 x106 клетки СНО) клеток, как описано выше для не-фракционированного образца. Используйте Cy5 поверхности клетки помечены образца (см. выше), шип, а также применять вместе с немеченого препаративных количествах белка.
  2. Проведение 2-D электрофореза, как описано выше, но на этот раз, aplly 600 мкг немеченого Клеточный лизат вместе с 50 мкг поверхности клетки помечены шип с применением анодного чашку. Используйте ссылки маркеров, чтобы правильный выбор места, и место бытьмежду стеклянными пластинами, прежде чем гель литья в соответствии с рекомендациями 3.
  3. Сканирование геля в Cy5 канала для получения Cy5 поверхности клетки месте карты, после чего общая окраска белка использованием Deep Purple белка общего пятно 3.
  4. Матч вместе второе место карты, используя DeCyder 2-D программное обеспечение и создать список выбора для всех пятен, соответствующих Cy 5 меченых белков клеточной поверхности. Pick поверхности клеток белков, используя обработку Ettan месте станции, выписка из геля пробок и trypsinate использованием реактора Ettan. Определить использованием MALDI-TOF масс-спектрометрии.

Таблица 1. Эксперимент Ettan ПГЛП проводилось с использованием образцов сыворотки обедненного клетки помечены в соответствии с поверхности клеток белков маркировки протокола на рисунке 1.

Образец Время сыворотке истощения Маркируется CyDye Гель номер
1 - Cy 3, Cy 2 1
2 30 минут Cy 5, Су 2 1
3 2-х часов Cy 3, Cy 2 2
4 4 часа Cy 5, Су 2 2
5 16 часов Cy 5, Су 2 3

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Концентрация белка

Обзор двух рабочих процессов маркировки показан на рисунке 1. Поскольку клетки остаются нетронутыми, когда маркированный в соответствии со клеточной поверхности протокол маркировки белка, только белки клеточной поверхности, подвержены красителя. В стандартном Ettan ПГЛП протокол, клетки лизируют до маркировки и белков внутри, так и вне клетки помечены (рис. 1). Относительное количество красителя белка в клеточной поверхности протокол маркировки белка не известно, так как на ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Мы благодарим профессора Dontscho Kerjaschki, Корина Майрхофер и Сигурд Кригер в Институте клинической патологии, Венский университет, Австрия за сотрудничество.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
CyDye DIGE Kit, 2 нмольРеагентGE Healthcare28-9345-30
2-D Quant KitРеагентGE Healthcare80-6484-51
IPG Buffer pH 3-11NLРеагентGE Healthcare17-6004-40
Immobiline DryStrip pH 3-11NL, 24 смРеагентGE Healthcare17-6003-77
IPGboxToolGE Healthcare28-9334-65
Набор IPGboxИнструментGE Healthcare28-9334-92
Регидратационный раствор DeStreak РеагентGE Healthcare17-6003-19
Immobiline DryStrip Cover LiquidReagentGE Healthcare17-1335-01
Ettan IPGphor 3 IEF UnitInstrumentGE Healthcare11-0033-64
Ettan IPGphor ManifoldКомпонент прибораGE Healthcare80-6498-38
Ettan DALTtwelve Gel Caster ToolGE Healthcare80-6467-22
Ettan DALTtwelve Блок разделения и блок питания/управленияHealthcare80-6466-46230 В блок: 80-6466-27
Typhoon 9410 Переменный режим тепловизораИнструментGE Healthcare63-0055-81
Инструмент Ettan Spot PickerИнструментGE Healthcare18-1145-28
Ettan DigesterИнструментGE Healthcare18-1142-68
Ettan SpotterИнструментGE Healthcare18-1142-67
Ettan MALDI-TOFИнструментGE Healthcare18-1142-33
Программное обеспечение для дифференциального анализа DeCyder 2-DДругоеGE Healthcare28-4012-01
Программное обеспечение для анализа ImageQuantДругоеGE Healthcare28-9236-62
Реагент мочевиныGE Healthcare17-1319-01
Реагент CHAPSGE Healthcare17-1314-01
PlusOne Дитиотреитол (DTT)РеагентGE Healthcare17-1318-01
Бромфенол СинийРеагентGE Healthcare17-1329-01
ТрисРеагентGE Healthcare17-1321-01
Додецилсульфат натрия (SDS)РеагентGE Healthcare17-1313-01
PlusOne Глицерин 87%РеагентGE Healthcare17-1325-01
PlusOne ReadySol IEF 40% T, 3% CРеагентGE Healthcare17-1310-01
PlusOneTEMED РеагентGE Healthcare17-1312-01
PlusOne Реагент персульфата аммонияGE Healthcare17-1311-01
PlusOne Глицин РеагентGE Healthcare17-1323-01
2-D Подготовка образцов для мембранных белковРеагентPierce, Thermo Scientific89864
Реагент Стрептомицина сульфатРеагентInvitrogen15140-122
GE

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Jang, J. H., Hanash, S. M. Profiling of the cell surface proteome. Proteomics. 3, 1947-1954 (2003).
  2. Shin, B. K. Global profiling of the cell surface proteome of cancer cells uncovers an abundance of proteins with chaperone function. J Biol Chem. 9, 7607-7616 (2003).
  3. Ettan DIGE System User Manual. GE Healthcare user manual 18-1164-40. , (2006).
  4. DeCyder 2-D Differential Analysis Software v 6.0. GE Healthcare data file 11-0011-98 Edition AA. , (2004).
  5. 2-D Electrophoresis using immobilized pH gradients, principles and methods. GE Healthcare handbook 80-6429-60 Edition AB. , (2002).
  6. CyDye DIGE fluors and labeling kits. GE Healthcare data file 18-1164-84 Edition AB. , (2003).
  7. Mayrhofer, C., Krieger, S., Allmaier, G., Kerjaschki, D. DIGE compatible labeling of surface proteins on vital cells in vitro and in vivo. Proteomics. 2, 579-5785 (2006).
  8. Selective labeling of cell-surface proteins using CyDye DIGE Fluor minimal dyes. GE Healthcare Application Note 11-0033-92 Edition AB. , (2005).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Cell Surface ProteinsCyDye DIGE Fluor2D DIGEEttan DIGEDeCyder AnalysisIntact Cell LabelingMembrane Protein DetectionSerum Starvation CHOFluorescent ImagingSilver Staining

Related Articles