RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
ru_RU
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/54303-v
Wasay M. Shaikh Qureshi1, Lianjie Miao1, David Shieh1, Jingjing Li1, Yangyang Lu1, Saiyang Hu1, Margarida Barroso1, Joseph Mazurkiewicz2, Mingfu Wu1
1Department of Molecular and Cellular Physiology,Albany Medical College, 2Department of Neuroscience and Experimental Therapeutics,Albany Medical College
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Мы описываем протокол для объемного изображения флуоресцентных белков, меченных белком, глубоко внутри интактного эмбрионального и постнатального сердца. Используя методы очистки тканей в сочетании с окрашиванием по всей монте, можно четко и точно визуализировать отдельные флуоресцентные клетки, меченные белками, внутри эмбрионального или постнатального сердца.
Общая цель этой процедуры состоит в том, чтобы объемно визуализировать флуоресцентные клетки, меченные белками, глубоко внутри интактных сердец, изучить функцию генов с разрешением одной клетки во время сердечного развития и в постнатальном сердце. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы во время развития сердца, такие как изучение функций генов и помощь в получении изображений с разрешением отдельных клеток во время развития сердца и анимидных артефактов. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он относительно прост, недорог и выгоден в том смысле, что специальный временной анализ функций гена и белка при разрешении одной клетки в интактном эмбрионе или сердце
является таковым.Хотя мы используем эту систему для изучения развития сердца у мышей, вы также можете использовать ее для изучения других систем органов, таких как мышцы, мозг и легкие, а также других модельных организмов. Здесь используются флуоресцентные белковоположительные эмбрионы из обработанных тамоксифреном дамов R-26 Cre-RET2 для конфетти. Начните окрашивание с погружения каждого параформальдегид-фиксированного эмбриона в один миллилитр 0,1% PBST в лунки 48-луночного планшета.
Выдерживайте в течение двух часов в шейкере при комнатной температуре, чтобы ткани пропитались. Затем замените раствор для пермеабилизации одним мл блокирующего буфера и инкубируйте, встряхивая, в течение двух часов при комнатной температуре или в течение ночи при четырех градусах Цельсия. Затем приготовьте разведение 1 к 100 специфического антитела к эндотелиальным клеткам, PECAM, в 0,3 мл блокирующего буфера для каждой лунки и добавьте его в лунки, содержащие эмбрионы.
Выдерживать в течение 48 часов при встряхивании при четырех градусах Цельсия. После инкубации пятикратно промойте эмбрионы PBST в течение 30 минут каждый раз, чтобы удалить избыток первичных антител из тканей. Затем погрузите эмбрионы в раствор вторичного антитела Alexa Fluor 647 для козьего антивата и инкубируйте с встряхиванием в течение 48 часов при температуре четыре градуса Цельсия, находясь в защищенном от света месте.
Через 48 часов, после предварительного вымывания зафиксируйте эмбрионы 4% PFA в течение одного часа при комнатной температуре с встряхиванием. Затем, после двукратной промывки PBS в течение пяти минут каждый раз, инкубируйте эмбрионы с ядерным окрашиванием DAPI в течение десяти минут. Затем проведите два омовения PBS по пять минут каждое, затем приступайте к очищению тканей.
Очищение тканей является наиболее важным этапом в этом протоколе для получения изображений сердца с разрешением одной клетки. Кроме того, выбор метода очищения от чешуи или CUBIC также очень важен для сохранения флуоресцентных сигналов в интактном эмбриональном сердце. Переложите промытые, окрашенные эмбрионы в сцинтилляционный флакон, завернутый в алюминиевую фольгу, в котором содержится один миллилитр раствора накипи А2.
Инкубировать при температуре четыре градуса Цельсия с редким легким встряхиванием рукой в течение 48 часов. После инкубации весов А2 замените раствор во флаконе одним миллилитром раствора накипи В4, и инкубируйте при четырех градусах Цельсия с периодическим легким встряхиванием еще 48 часов. Инкубируйте эмбрионы еще 48 часов с помощью одного миллилитра чешуи 70 при четырех градусах Цельсия, время от времени осторожно встряхивая, как и раньше.
Наконец, погрузите очищенный от накипи образец в один миллилитр 90% глицерина и храните при температуре четыре градуса Цельсия до получения изображения. Для получения изображения перенесите образец в чашку Петри со стеклянным дном с минимальным количеством глицерина 90% и сделайте изображение с помощью конфокального микроскопа, оснащенного двухфотонными возможностями. Для очистки CUBIC погрузите каждый эмбрион в один миллилитр CUBIC с редким легким встряхиванием в течение 48 часов при температуре 37 градусов Цельсия.
Через 48 часов замените раствор тем же объемом свежего реагента CUBIC one и инкубируйте образец еще 48 часов, как и раньше. После инкубации несколько раз промыть обработанные CUBIC эмбрионы PBS с легким встряхиванием вручную, чтобы удалить излишки раствора CUBIC one. Затем погрузите эмбрионы в раствор CUBIC two на 48 часов при температуре 37 градусов Цельсия, время от времени осторожно встряхивая рукой.
Если перед визуализацией будет задержка, последовательно инкубируйте образцы с одним миллилитром 30% 50% и 70% глицерина и PBS в течение 30 минут каждый. После перемещения по ряду переложите в 90%-ный раствор глицерина для хранения при четырех градусах Цельсия. Когда все будет готово, изобразите изображение в чашке петри со стеклянным дном с 90% глицерина, как и раньше.
В этом ролике показаны оптические срезы обработанного окалиной сердца E 8.75, от поверхности сердца до просвета. Желтым цветом отмечена экспрессия PECAM, а все кардиомиоциты отображаются зеленым. Глубина составляет 110,4 мкм, всего насчитывается 93 среза.
Это только что показанное 3D-изображение поверхности реконструированного сердца. Опять же, желтым цветом обозначена экспрессия PECAM, а зеленым – все кардиомиоциты. В этом фильме показаны фрагменты одного клона-предшественника из обработанного окалиной сердца E 9.5 в области выходного тракта.
Желтым цветом обозначено выражение PECAM, а зеленым цветом обозначен клон. Глубина составляет 36 мкм, всего имеется 10 срезов. В этом видеоролике показаны участки обработанного CUBIC P two сердца от поверхности до просвета.
Глубина составляет 130 мкм по три мкм на секцию. В этом видеоролике показаны участки обработанного CUBIC сердца E 17.5 от поверхности до просвета. Глубина составляет 630 мкм, по шесть мкм на секцию.
Это только что показанное 3D-изображение поверхности сердца, реконструированное с помощью программного обеспечения для 3D-реконструкции. При попытке проведения этой процедуры важно помнить, что эмбрион хрупкий и сердечную патологию можно легко нарушить. После этой процедуры можно получить другой белок, используя окрашивание для изучения функции гена в постостлатентном периоде и вспенивания.
View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos
Related Videos
07:20
Related Videos
14.5K Views
10:56
Related Videos
21.9K Views
08:25
Related Videos
8.6K Views
09:41
Related Videos
9.1K Views
09:42
Related Videos
10.1K Views
08:42
Related Videos
9.7K Views
08:14
Related Videos
6.2K Views
08:53
Related Videos
2.6K Views
07:02
Related Videos
1.8K Views
05:58
Related Videos
1.5K Views