-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Роботизированная Дозирование Техника для ориентации поверхности и Bioprinting клеток
Роботизированная Дозирование Техника для ориентации поверхности и Bioprinting клеток
JoVE Journal
Bioengineering
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Journal Bioengineering
Automated Robotic Dispensing Technique for Surface Guidance and Bioprinting of Cells

Роботизированная Дозирование Техника для ориентации поверхности и Bioprinting клеток

Full Text
7,607 Views
10:14 min
November 18, 2016

DOI: 10.3791/54604-v

Ramya Bhuthalingam1, Pei Q. Lim1, Scott A. Irvine1, Subbu S. Venkatraman1

1School of Materials Science and Engineering,Nanyang Technological University

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Этот протокол описывает методологию биопечати с использованием автоматизированной роботизированной системы осаждения, которая включает в себя вытравленные топографические подсказки с прецизионным осаждением клетки, содержащей гидрогелевые биочернила. Напечатанные элементы доставляются непосредственно к вытравленным элементам и способны воспринимать и ориентироваться с их помощью.

Общая цель этой автоматизированной роботизированной техники дозирования состоит в том, чтобы создать поверхность для топографического наведения клеток, а затем доставить клетки к этим элементам по запрограммированному шаблону, что позволяет контролировать поведение и распределение клеток. Этот метод может помочь ответить на ключевые вопросы в области биомедицинской инженерии, например, как поверхностные топологии могут влиять на поведение клеток, как в монокультуре, так и в кокультуре. Основное преимущество этого метода заключается в том, что он требует меньше времени на программирование и печать шаблона управления ячейкой по сравнению с более устоявшимися методами.

Он также включает в себя этап доставки клеток для контролируемого дозирования. Впервые идея этого метода пришла нам в голову, когда мы поняли, что двумерные узоры клеток, помещенных в гидрогели, могут выиграть от поверхностного наведения. Таким образом, мы разработали эту технику для печати гидрогелей таким образом, чтобы они соответствовали особенностям поверхности.

Этот протокол описывает использование роботизированной системы дозирования с обратным давлением в качестве биопринтера на основе поверхностного травления и экструзии. Чтобы подготовить поверхность из полистирола к травлению и печати, выберите лист полистирола толщиной в один миллиметр. Более толстые листы будут больше гнуться.

Затем обработайте лист кислородной плазмой. Установите регулятор газообразного кислорода на два деления. Затем включите плазменный аппарат и включите вакуумный насос.

Приступайте к программированию машины на 150 Вт и 30 стандартных кубических сантиметров в минуту потока газообразного кислорода, и подвергайте лист воздействию этих условий в течение 10 минут. Затем опорожните камеру, загерметизируйте дверцу и запустите цикл. Далее погрузите обработанный лист в чистую бычью сыворотку плода и инкубируйте его при температуре 37 градусов Цельсия в течение двух часов с перемешиванием.

После обработки сывороткой вымойте лист три раза с 1X PBS и простерилизуйте лист. После окончательной стирки оставьте лист в духовке при температуре 37 градусов Цельсия для высыхания на ночь примерно на 12 часов. Сначала подготовьте печатный стилус для травления.

С большой осторожностью вставьте текстильную иглу диаметром 1,5 миллиметра в сопло дозирующего шприца до тех пор, пока она не заклинится и не закрепится. При первой попытке создать биопечатную композицию набросайте желаемый узор на миллиметровой бумаге с пронумерованными осями, чтобы получить координаты x, y. Затем введите координаты узора в таблицу.

Затем в программе для печати выберите «Программа», «Добавить программу», а затем «Редактировать», «Добавить точку», чтобы установить программу. Затем скопируйте значения координат x и y из электронной таблицы в программное обеспечение для дозирования печати. Перед каждым запуском калибруйте высоту по оси Z робота, чтобы установить положение контакта щупа.

Сначала выберите опцию «Робот». Затем нажмите «Изменить режим» и включите опцию «Режим обучения». Это позволяет роботу выполнять функцию JOG.

Чтобы выполнить JOG робота, сначала поместите робота в положение по умолчанию, выбрав Robot, Meca Initialize. Затем Робот, ДЖОГ. Затем в слотах x и y введите расстояние в миллиметрах, необходимое для точного размещения стилуса в начале шаблона.

Затем, также в миллиметрах, введите числовое значение в паз z, чтобы поместить щуп или сопло в контакт с поверхностью без изгиба или вдавливания поверхности. Это значение обозначается как начальное значение z. Глубину каждой канавки можно варьировать с помощью высоты z.

Например, глубина прорезанных канавок может быть 40, 80 или 170 микрон. Требуется концентрация и тщательное наблюдение, чтобы найти точку контакта, в которой не будет сгибания щупа или заметного углубления на поверхности. Чтобы обеспечить успех, мы рекомендуем подготовить несколько листов и запустить программу на разной высоте z, чтобы найти идеальную исходную позицию.

Следующим шагом будет определение инструкции печати для каждой из координатных точек. Используйте инструмент Начало линейного дозирования для определения первой точки и начала печати. Используйте команду Line Passing для обозначения промежуточных точек, и, наконец, используйте команду End of Line Dispense, чтобы подать сигнал роботу о прекращении тиража.

Чтобы передать программу роботу, выберите «Робот», «Отправить данные C&T». Затем запустите прогон, выбрав Robot, Changing Mode, Switch Run Mode и переключив настройку на Run. Наконец, начните печать.

Чтобы сделать биочернила, растворите 2% желатина в Alpha MEM с добавлением 10% FBS и 2% антибиотического антимикотика. Поместите среду при температуре 60 градусов Цельсия на два часа, чтобы желатин растворился в среде. Культивируйте клетки для биочернил до 70% конфлюенции в 10-сантиметровой посуде.

Можно использовать любые клетки, реагирующие на поверхностные направляющие признаки, и они должны выражать флуоресцентную метку, чтобы их можно было увидеть в процессе встраивания. Выпустите прикрепленные клетки в суспензию, удалив среду, промыв клетки PBS и покрыв клетки раствором 1X Trypsin-EDTA в течение пяти минут при температуре 37 градусов Цельсия. После нейтрализации трипсина средой соберите клетки в суспензию и гранулируйте их по 1000 г в течение пяти минут.

Опишите надосадочную жидкость и повторно суспендируйте клетки в 0,5 миллилитрах среды. После измерения плотности клеток смешайте суспензию с охлажденным раствором биочернил, чтобы получить раствор с пятью миллионами клеток на миллиметр. Затем налейте биочернила, несущие клетки, в подготовленный печатающий шприц, заблокированный колпачком приманки.

Охладите заряженный шприц до четырех градусов Цельсия, чтобы достичь вязкости, пригодной для печати. Затем выньте заряженный и охлажденный шприц, снимите колпачок шприца и прикрепите сопло для печати. Затем присоедините заряженный шприц к системе дозирования и подключите его к линиям давления воздуха.

Для того, чтобы напечатать биочернила на заранее разработанном рисунке, края и линии должны быть четкими. Точная печать фактически достигается за счет оптимизации обратного давления дозатора и игольчатого манометра печатающего сопла. Установите противодавление дозатора на 0,05 мегапаскаль для шприца объемом 10 миллилитров с конической иглой 34-го калибра.

Затем в программном обеспечении установите скорость записи на поверхность полистирольной пленки на уровне пяти миллиметров в секунду. Теперь, следуя запрограммированной схеме, нанесите клеточные биочернила на предварительно протравленные бороздки. После отсадки ячеек дайте листу поинкубироваться в течение 20 минут при комнатной температуре.

Позже накройте напечатанный каркас клеток соответствующей питательной средой и инкубируйте клетки в течение 24 часов, чтобы клетки прикрепились перед дальнейшими экспериментами. Стволовые клетки, посеянные с помощью биопечати в биочернилах, в конечном итоге оседали на поверхности, ощущались и удлинялись вдоль направления незаметно вытравленных линий. Клетки, посеянные в культуральную среду без биопечати, также выровнены по направлению признаков.

Однако они также покрывали всю поверхность, таким образом, биочернила приковывали клетки к напечатанному следу. При посеве на листы без протравленных элементов клетки не показали ориентации или выравнивания. После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как точно вытравливать пазы на листе полистирола, а затем точно биопечатать ячейки в пазы.

После освоения этой техники ее можно выполнить примерно за два-три часа. Исследователям в области биоинженерии очень полезно выявлять взаимодействия клеточной поверхности в моделях, где требуется анизотропия и позиционирование клеток. Не забывайте, что биочернила содержат живые клетки, и очень важно использовать стерильную технику при печати листов.

View the full transcript and gain access to thousands of scientific videos

Sign In Start Free Trial

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 117 осаждение клеток bioprinting стволовые клетки клеточная ориентация травление поверхности гидрогель печать

Related Videos

Подводная Печать клеток на модифицированной поверхности с помощью непрерывного потока Microspotter

08:29

Подводная Печать клеток на модифицированной поверхности с помощью непрерывного потока Microspotter

Related Videos

9K Views

Роботизированная Производство раковой клетки сфероидов с водной двухфазной системе для тестирования на наркотики

09:58

Роботизированная Производство раковой клетки сфероидов с водной двухфазной системе для тестирования на наркотики

Related Videos

9.4K Views

Показания 3-D прямой записи Подвесные мкм / субмикронных Масштаб волокнистые структуры с помощью роботизированной распределительной системе

10:36

Показания 3-D прямой записи Подвесные мкм / субмикронных Масштаб волокнистые структуры с помощью роботизированной распределительной системе

Related Videos

8.3K Views

Жизнеспособность Bioprinted Сотовые конструктов Использование Три диспенсер декартово принтера

07:05

Жизнеспособность Bioprinted Сотовые конструктов Использование Три диспенсер декартово принтера

Related Videos

10.4K Views

Создание сердечной ткани, обеспечивающей механическую интеграцию сфероидов с использованием 3D-биопреобразования

04:40

Создание сердечной ткани, обеспечивающей механическую интеграцию сфероидов с использованием 3D-биопреобразования

Related Videos

10.6K Views

Microfluidic подложке для инженерных васкуляризированной ткани и Organoids

08:22

Microfluidic подложке для инженерных васкуляризированной ткани и Organoids

Related Videos

16.2K Views

Подложке хряща и аналогов ткани кожи, используя Роман пассивного смешивания единицы техники для Bioink Precellularization

09:03

Подложке хряща и аналогов ткани кожи, используя Роман пассивного смешивания единицы техники для Bioink Precellularization

Related Videos

13.8K Views

Доступная кислородная микроскопия с помощью биофабрикации многоклеточных сфероидов

13:21

Доступная кислородная микроскопия с помощью биофабрикации многоклеточных сфероидов

Related Videos

3.7K Views

Крупномасштабное автоматизированное производство сфероидов стволовых клеток, полученных из жировой ткани, для 3D-биопечати

07:40

Крупномасштабное автоматизированное производство сфероидов стволовых клеток, полученных из жировой ткани, для 3D-биопечати

Related Videos

3K Views

Агарозные жидкие гели, образованные сдвиговой обработкой во время гелеобразования для суспензионной 3D-биопечати

07:26

Агарозные жидкие гели, образованные сдвиговой обработкой во время гелеобразования для суспензионной 3D-биопечати

Related Videos

2.9K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code