22 апреля 2014 г.
Эта технология 3D-микрофлюидной печати печатает массивы клеток на погруженных поверхностях. Мы описываем, как массивы ячеек доставляются микрофлюидно в 3D-проточных ячейках на погруженные поверхности. Путем печати на погружных поверхностях были получены клеточные микрочипы, которые позволяют проводить скрининг лекарств и оценку цитотоксичности во множестве областей.
Общая цель данной процедуры заключается в печати фибробластов линии T3 на поверхность, покрытую сывороткой. Это достигается путем предварительной адсорбции сыворотки на поверхность для культивирования тканей. На втором этапе суспензия фибробластов наносится на поверхность с помощью микроспоттера с непрерывным потоком, после чего следует инкубация клеток при 37 °C в течение двух часов.
Затем напечатанные клетки, так же как и клетки, высеянные стандартным методом культивирования, окрашивают пропидиййодидом и визуализируют с помощью инвертированного микроскопа для сравнения. В конечном итоге используют флуоресцентную микроскопию для оценки жизнеспособности, плотности и морфологии клеток в соответствующие временные точки. Основным преимуществом данного метода по сравнению с существующими способами, такими как контактная печать (pin printing), является то, что печатающая головка создает герметичное уплотнение с поверхностью, что позволяет осуществлять печать клеток при их погружении в культуральную среду.
Хотя погружная печать клеток полезна для скрининга новых лекарственных кандидатов на безопасность и эффективность, погружная печать в целом применима и для других целей. Например, с ее помощью можно анализировать действие новых лекарственных кандидатов на срезы тканей или использовать ее в качестве модели органных систем. Примером может служить модель перфузии печени.
Как правило, специалисты, впервые использующие данный метод, сталкиваются с трудностями, так как при подготовке принтера и печати клеток в линии не должен попадать воздух, поскольку это может привести к гибели клеток. Для начала разморозьте клетки NIH 3T3 в течение двух-трех минут в шейкере с водяной баней при 37 °C. Ресуспендируйте клетки в 5 мл полной среды и центрифугируйте при 1500 ×g в течение трех минут.
Удалите супернатант, не затрагивая осадок клеток. Затем ресуспендируйте клетки в 5 мл среды и перенесите 10 µL клеточной суспензии в микроцентрифужную пробирку объемом 0,5 мл. Далее добавьте к клеточной суспензии 10 µL красителя трипан синий и перемешайте кончиком пипетки; затем перенесите 10 µL окрашенных клеток в камеру гемоцитометра.
Перед подсчетом клеток при 10-кратном увеличении подсчитайте живые клетки, которые выглядят как маленькие белые шарики, в четырех из девяти больших квадратов. Учитывайте только живые клетки, которые не окрашены в темно-синий цвет красителем трипановым синим. Вычислите среднее количество клеток на один большой квадрат; полученное значение, умноженное на 10 000, будет соответствовать количеству клеток на миллилитр в исходной клеточной суспензии.
Затем проведите посев клеток с плотностью 100 000 клеток на мл, используя общий объем пять мл в каждом флаконе T 25. Культивируйте клетки до достижения конфлюэнтности от 70 до 80% перед началом экспериментов. Для подготовки поверхности печати с помощью маркера отметьте на дне полистирольного планшета 12 с обработкой для культивирования тканей прямоугольник по размеру печатающей головки.
С помощью дозатора внесите 50 µL фетальной бычьей сыворотки в прямоугольную область луночного планшета и распределите её по всей этой зоне. Оставьте планшет в стерильном боксе биологической безопасности на ночь, чтобы пятно сыворотки полностью высохло. Для начала погружной печати промойте печатающую головку дистиллированной водой.
Затем наполните чашку Петри диаметром 60 мм дистиллированной водой и опустите печатающую головку на поверхность; с помощью пневматического насоса прокачивайте дистиллированную воду через каждую линию в течение двух минут со скоростью 150 µL/min. После этого слейте воду из чашки Петри и наполните ее чистой водой. Затем переместите печатающую головку вверх и вниз в воде три раза.
Установите печатающую головку по центру пятна с нанесенной сывороткой в предварительно подготовленном 12-луночном планшете. Затем промойте печатающую головку с помощью Prewarm. Полная среда в объеме 300 µL на канал.
При выполнении нескольких отпечатков между ними, помимо промывки водой, добавьте промывку отбеливателем. Приступите к печати суспендированных клеток с концентрацией 50, 000 cells per milliliter на поверхность со скоростью 60 µL per minute. 100 µL на канал.
После печати клеток поместите печатающую головку в левое доковое положение вплотную к поверхности, а коллектор — в инкубатор для культур клеток. Установите параметры: 5% carbon dioxide и от 37 градусов Цельсия в течение двух часов. По истечении двухчасовой инкубации извлеките печатающую головку и накройте чашку с культурой крышкой.
Момент извлечения печатающей головки считается нулевой временной точкой. Для сравнения также проводится стандартное культивирование клеток. Добавьте 1 mL предварительно нагретой среды в одну из 12-луночных планшетов с нанесенной сывороткой, затем возьмите 1 mL оставшейся клеточной суспензии и перенесите ее пипеткой в одну лунку 12-луночного планшета.
В результате в чашке будет получена культура, содержащая 50 000 клеток. Поместите планшет с клеточной культурой в инкубатор при 37 °C на два часа. По истечении двухчасовой инкубации начните отсчет времени для обеспечения согласованности между образцами для печати и посева.
Этот момент времени считается нулевым. Через 0, 2, 24 и 48 часов подготовьте клетки, полученные обоими методами, для визуализации путем окрашивания пропидиййодидом, который встраивается только в ядра погибших клеток. Сначала осторожно промойте клетки трижды одним миллилитром фосфатно-солевого буферного раствора с добавлением кальция и магния для удаления остаточного клеточного детрита.
Затем добавьте по 1 mL предварительно нагретой культуральной среды в каждый культуральный сосуд, а затем по 1 µL пропидиййодида из стокового раствора. Инкубируйте клетки, окрашенные пропидиййодидом, при 37 °C в течение 10 минут, после чего проведите визуализацию клеток с помощью инвертированного микроскопа при 10-кратном и 40-кратном увеличении. В завершение утилизируйте клетки в соответствующий контейнер для биоопасных отходов.
Линию фибробластов NIH 3T3 распечатывали или высевали на погруженную поверхность. После распечатывания и высева клетки визуализировали для оценки плотности и морфологии в соответствующие моменты времени. Изображения показали, что клетки обладают почти идентичными фенотипами в каждой временной точке и при каждом увеличении.
На основании этих данных было установлено, что эффективность печати была минимальной. Жизнеспособность клеток оценивали с помощью окрашивания пропидиййодидом, и результаты показали, что жизнеспособность напечатанных клеток существенно не отличалась от жизнеспособности высеянных клеток в каждой временной точке. Основным различием между двумя методами прикрепления клеток к поверхности была плотность клеток.
Плотность напечатанных клеток через два часа снижается более чем на 50% как в группе посева, так и в группе печати. Для определения причины этого снижения требуются дальнейшие исследования. Тем не менее, общие коэффициенты плотности напечатанных клеток по сравнению с посевными остаются значительно более высокими.
Плотность напечатанных клеток в проточной кювете в каждой временной точке была примерно в 10 раз выше, чем плотность посеянных клеток, поскольку клетки печатались с той же плотностью, что и при посеве, но на меньшей площади. В конечной временной точке плотность клеток выравнивается, что, вероятно, обусловлено подвижностью клеток и ограничениями в потреблении ресурсов. С момента своей разработки этот метод открыл исследователям в области разработки лекарственных средств возможность изучать эффекты токсичности и эффективности препаратов на клетках, а также проводить исследования в таких востребованных областях, как борьба с раком, сердечно-сосудистые заболевания и другие.
Используя метод погружного печатания клеток в сочетании с другими технологиями, такими как адгезия и программируемая клеточная адгезия, мы можем распространить применение данного метода на суспензионные клетки для расширения скрининга в области поиска и разработки лекарственных препаратов. После просмотра этого видео вы должны получить четкое представление о том, как печатать клетки с помощью нашей методики погружной печати.
Просмотрите полный транскрипт и получите доступ к тысячам научных видео
В данном исследовании представлена новая технология 3D-микрофлюидной печати, позволяющая печатать клеточные массивы на погруженных поверхностях. Этот метод упрощает скрининг лекарственных препаратов и оценку цитотоксичности, обеспечивая точную доставку клеток в контролируемую микросреду.
Погружная микрофлюидная печать клеток обеспечивает поддержание физиологически релевантного фенотипа клеток и точную пространственную организацию для применения в скрининге лекарственных препаратов. Эта технология устраняет основные недостатки традиционных методов печати, позволяя осуществлять автоматизированное мультиплексное нанесение клеток на погруженные поверхности без изменения свойств материалов. Данный подход позволяет проводить прогностическую оценку цитотоксичности и эффективности в таких терапевтических областях, как онкология, метаболические заболевания и иммунология.
Данный метод интегрируется в рабочие процессы раннего поиска путем обеспечения точного осаждения клеток для разработки анализа, поддержки идентификации лид-соединений посредством количественной оценки жизнеспособности и морфологии, а также обоснования доклинических решений с помощью фенотипического анализа на основе плотности.