-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

RU

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

ru_RU

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Bioengineering
Реконфигурируемые Microfluidic канал с Pin дискретизированы бортами
Реконфигурируемые Microfluidic канал с Pin дискретизированы бортами
JoVE Journal
Bioengineering
This content is Free Access.
JoVE Journal Bioengineering
Reconfigurable Microfluidic Channel with Pin-discretized Sidewalls

Реконфигурируемые Microfluidic канал с Pin дискретизированы бортами

Full Text
7,843 Views
10:39 min
April 12, 2018

DOI: 10.3791/57230-v

Nobuyuki Futai1, Kenji Fujita1, Wataru Ikuta1

1Department of Mechanical Engineering,Shibaura Institute of Technology

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This article presents a method for fabricating a reconfigurable microfluidic device with deformable sidewalls made of an array of pins. The device allows for enhanced flow control and particle handling, adapting to various experimental conditions.

Key Study Components

Area of Science

  • Microfluidics
  • Device fabrication
  • Biomedical engineering

Background

  • Microfluidic devices are essential for various biological applications.
  • Traditional devices often struggle with unknown flow conditions.
  • Reconfigurable designs can improve adaptability in experiments.
  • Visual demonstrations enhance understanding of complex assembly processes.

Purpose of Study

  • To develop a microfluidic device that can be easily reconfigured during use.
  • To provide a detailed fabrication protocol for researchers.
  • To demonstrate the advantages of using pins for sidewall deformation.

Methods Used

  • Etching stainless steel pins for sidewall construction.
  • Using PDMS for the microchannel assembly.
  • Employing silicone adhesive for bonding components.
  • Conducting fluorescence tests to assess leakage and functionality.

Main Results

  • The fabricated device successfully demonstrated reconfigurability.
  • Flow control was effectively managed through adjustable sidewalls.
  • Visual aids improved the understanding of the assembly process.
  • Tests confirmed the integrity and performance of the microfluidic channels.

Conclusions

  • The method provides a reliable approach to creating adaptable microfluidic devices.
  • Future applications could benefit from the flexibility of this design.
  • Further research may explore additional configurations and uses.

Frequently Asked Questions

What are the main advantages of the reconfigurable microfluidic device?
The main advantages include enhanced flow control, adaptability to various experimental conditions, and improved handling of difficult-to-flow objects.
What materials are used in the fabrication process?
The primary materials include stainless steel for the pins, PDMS for the microchannel, and silicone adhesive for bonding.
How does the device handle different flow conditions?
The deformable sidewalls allow for adjustments in channel dimensions, enabling the device to adapt to varying flow conditions.
Is visual demonstration important in this method?
Yes, visual demonstrations are critical for understanding the complex assembly and operation of the microfluidic device.
What tests are conducted to ensure device functionality?
Fluorescence tests are performed to check for leakage and to confirm the integrity of the microfluidic channels.
Can this method be applied to other microfluidic designs?
Yes, the principles of this method can be adapted for various microfluidic designs and applications.

Microfluidic канал с деформируемым бортами предлагает управление потоком, обработка частиц, канал измерения настройки и другие изменения конфигурации во время использования. Мы описываем метод для изготовления microfluidic канал с бортами из массива булавки, позволяющий изменить их форму.

Общая цель этой процедуры заключается в изготовлении реконфигурируемого микрофлюидного устройства с боковыми стенками, состоящими из массива контактов. Основным преимуществом этого микрофлюидного устройства является его способность работать с труднодоступными объектами и ситуациями, которые могут быть неизвестны на этапе проектирования канала. Как правило, новичкам в этом методе будет трудно вытравить крошечные булавки в форме костей собаки.

Визуальная демонстрация этого метода имеет решающее значение, так как сборку многих микрофлюидных деталей и монтаж их на основании трудно изучить только по письменному протоколу. На этой фотографии изображено готовое микрофлюидное устройство с реконфигурируемым каналом. Здесь реконфигурируемая часть находится в верхней части изображения.

На схеме разнесенного вида видятся некоторые из его основных компонентов. В частности, обратите внимание на микроканал и контакты, используемые для его перенастройки. В качестве первого шага протравите булавки.

Начните с обезжиренных L-образных штифтов из нержавеющей стали разной длины толщиной 0,3 миллиметра. Имейте готовые четыре миллилитра 10%-ной азотной кислоты, и погружайте в нее булавки. Затем поместите контейнер в духовку с температурой 65 градусов Цельсия на 30 минут.

После извлечения штифтов перенесите их пинцетом один за другим в емкость с деионизированной водой. Далее проработайте их ультразвуком в воде в течение пяти минут. Когда все будет готово, высушите их бумажным полотенцем.

Имейте готовое 0,5 миллилитра разделительного средства для пресс-формы, и погружайте в него штифты. Через два часа поместите штифты в деионизированную воду и обрабатывайте их ультразвуком в течение пяти минут. Для продолжения требуется форма для травли.

Тарелка для травления изготовлена из стекла и силиконового клея. Начните процесс травления с нанесения силиконового клея на концы булавок на блюде. Расположите штифты так, чтобы кончики на их прямых концах были погружены в клей.

Это блюдо после того, как все штифты будут на месте и готовы к следующему шагу. Переложите форму для травления во увлажненную ферментерку, нагретую до 38 градусов Цельсия, и подождите ночь, чтобы клей застыл. Когда она будет готова, поставьте форму для травления булавками на конфорку с температурой 65 градусов Цельсия.

Налейте 0,8 миллилитра травляющей кислоты на непокрытую область штифтов. Через 10 минут переложите кислоту в стакан с помощью микропипетки. Затем добавьте в блюдо еще кислоты для травления, чтобы повторить этап травления.

После травления проверьте, чтобы ширина протравленного участка составляла около 0,2 миллиметра. Если это так, нанесите микропипеткой пять миллилитров раствора гидрокарбоната натрия на протравливающую чашку, чтобы нейтрализовать оставшуюся кислоту. Затем с помощью пинцета удалите штифты, потянув их в продольном направлении.

Начните с готовой формы. Как и на этой схеме, пресс-форма предназначена для устройства с неподвижной боковой стенкой и местом для штифтов. Создайте форму на предметном стекле с помощью литографии.

Подготовленную горку выложите на дно пластиковой посуды. Теперь залейте преполимер PDMS на форму толщиной три миллиметра. Поместите форму в вакуумный эксикатор на 10 минут.

После этого переместите его в духовку при температуре 65 градусов Цельсия на один час. В результате получается частично отвержденная плита. Используйте скальпель, чтобы снять плиту для следующих шагов.

Поместите плиту в духовку при температуре 120 градусов Цельсия на час для полного отверждения. Теперь работайте с полностью отвержденной плитой. Он будет иметь неровные края вдоль направляющей линии.

Используйте скальпель, чтобы точно и чисто обрезать неровные края. Уделите особое внимание поверхности для вставки штырьков, чтобы создать наилучшее устройство. Перфорируйте отверстия на входе/выходе из основной камеры и в других местах с помощью пуансонов для биопсии.

Теперь изготовьте узел микроканала. Нагрейте чистящий раствор до 60 градусов Цельсия и получите покровное стекло под номером четыре. Покровное стекло имеет размеры 10 на 20 миллиметров.

Погрузите покровное стекло в раствор на 10 минут. Поместите промытое и высушенное покровное стекло и пластину PDMS на нижний электрод распылительной коатеральной машины. Генерируйте воздушно-вакуумную плазму в течение 30 секунд.

Соедините извлеченный элемент так, чтобы края выровнялись, а элементы канала были видны через покровное стекло. Используйте стерильный контейнер, чтобы отнести склеенные слои к ламинарному колпаку для их стерилизации. Когда закончите, вставьте контакты в слот.

Соседние кегли должны быть разной длины. Штифты образуют другую боковую стенку микрокамеры. Продолжайте работу в ламинарном капюшоне.

Для следующих шагов подготовьте основание для устройства. Приготовьте заполнитель зазоров путем гомогенизации смеси белого вазелина и порошка политетрафторэтилена. Налейте гомогенизированную смесь в шприц-дозатор и вставьте поршень.

Нажмите на поршень, чтобы заполнить кончик шприца. Затем прикрепите иглу и нажимайте на поршень, пока игла не заполнится. Аналогичным образом приготовьте второй шприц с силиконовым клеем и подсоедините каждый к пневматическому дозатору.

Теперь нанесите силиконовый клей на основание. Положите его вдоль одного из карманов. Затем поместите покровное стекло под номером четыре в карман и плотно прижмите его, чтобы приклеить.

Затем распределите силиконовый клей по двум внешним прорезям основания, нарисовав сегменты глубиной около одного миллиметра. Вдоль еще одной прорези посередине распределите заполнитель зазоров в сегменте глубиной один миллиметр. Нанесите еще клея на край другого кармана.

Поместите микроканальный узел на карман и плотно прижмите его. Еще раз положите заполнитель зазоров в прорезь по середине основания. После этого нанесите клей на соседние прорези.

Дайте устройству постоять одни сутки в стерильной вытяжке. После отверждения, в ламинарном колпаке, переместите каждый штифт на расстояние до одного миллиметра вдоль соседних штифтов, чтобы освободить их от эластомерного барьера. Настройте флуоресцентный тест на утечку, разбавив зеленый флуоресцентный краситель в ионизированной воде.

Затем откройте микроканал, чтобы получить одинаковую ширину по всей длине. С помощью микропипетки перенесите краситель в один из конечных портов микроканала, и заполните его раствором. В большую пластиковую посуду поместите два листа впитывающей бумаги, смоченных деионизированной водой, и внутрь устройство.

Инкубируйте блюдо в 5% углекислом газе не менее 24 часов при температуре 37 градусов Цельсия. Просмотрите извлеченное устройство с помощью инвертированного флуоресцентного микроскопа и запишите изображения. Используйте их, чтобы убедиться в отсутствии утечки вокруг контактов.

На этих изображениях изображен протекающий и непротекающий образец. Еще одно испытание связано с засевом клеток. Откройте микроканал, чтобы получился прямой канал шириной 400 микрон с максимально плоской боковой стенкой.

Добавьте суспензию ячеек к одному из конечных портов, чтобы заполнить канал. Найдите контакты, определяющие боковую стенку области, чтобы начать культивирование клеток, и закройте их, чтобы закрыть клетки в этой области. Начиная с области, закройте все контакты, чтобы вытеснить ячейки в канале.

После откачки суспензии из торцевых отверстий добавьте среднюю. Поместите устройство в пластиковый контейнер с влажной впитывающей бумагой. Инкубируйте его не менее 24 часов.

Следите за тем, чтобы в закрытом помещении было около 10 ячеек на каждую. Затем медленно втяните штифт, чтобы расширить зону культивирования. На этих изображениях изображены клетки COS-7, выращенные в реконфигурируемом микроканале.

В течение девяти дней была расширена зона микроканального культивирования. Собранные данные позволяют построить график количества и плотности клеток в зависимости от времени. Синие точки и аппроксимация кривой предназначены для подсчета ячеек.

Красные символы и подгонки предназначены для плотности. Для плотности вертикальные стрелки указывают на расширение области клеточной культуры через два, пять и шесть дней. Плотности рассчитываются для одних и тех же площадей культивирования.

После просмотра этого видео у вас должно сложиться хорошее понимание того, как из небольших штифтов соорудить негерметичную боковую стенку микрофлюидного канала. После освоения этой техники ее можно сделать за одну неделю, если она выполнена правильно. Пытаясь выполнить эту процедуру, важно тщательно и тщательно выполнять каждый из этапов протокола.

Не забывайте, что работа с сильной кислотой может быть чрезвычайно опасной, поэтому всегда следует принимать меры предосторожности, такие как приготовление достаточного количества нейтрализующего средства. После этих процедур можно вводить другие клетки с жидкостью для создания более сложных клеточных культур.

Explore More Videos

Биоинженерия выпуск 134 Reconfigurable микрофлюидика дискретизированы боковины булавки уплотнения культура клетки

Related Videos

Микрожидкостных фишки Контролируемые с массивами эластомерных Microvalve

18:11

Микрожидкостных фишки Контролируемые с массивами эластомерных Microvalve

Related Videos

21.9K Views

Микрожидкостных основе гидродинамической Ловушка для одиночных частиц

10:13

Микрожидкостных основе гидродинамической Ловушка для одиночных частиц

Related Videos

17.4K Views

Порядок Создание многоуровневой углубленным круглым сечением Endothelialized Микроканалы-на-чипе

10:55

Порядок Создание многоуровневой углубленным круглым сечением Endothelialized Микроканалы-на-чипе

Related Videos

14.4K Views

Микрофлюидное изготовление полимерных и биогибридных волокон с заранее разработанным размером и формой

07:38

Микрофлюидное изготовление полимерных и биогибридных волокон с заранее разработанным размером и формой

Related Videos

9.3K Views

Микрожидком Пневматические Садки: Новый подход к В микросхеме Кристал Trapping, манипуляция и управляемому Химическая обработка

09:34

Микрожидком Пневматические Садки: Новый подход к В микросхеме Кристал Trapping, манипуляция и управляемому Химическая обработка

Related Videos

10K Views

Многоступенчатая переменной высоты фотолитографии для Valved Многослойные микрожидком устройств

10:18

Многоступенчатая переменной высоты фотолитографии для Valved Многослойные микрожидком устройств

Related Videos

15.2K Views

Мягкие литографических процедура для производства пластиковых Microfluidic устройства с видом портами прозрачно для видимого и инфракрасного света

10:26

Мягкие литографических процедура для производства пластиковых Microfluidic устройства с видом портами прозрачно для видимого и инфракрасного света

Related Videos

14.1K Views

Одноэтапный подход к фабрикации полидиметилсилоксан Microfluidic каналы различных геометрических секций путем последовательных мокрой офорт процессов

08:31

Одноэтапный подход к фабрикации полидиметилсилоксан Microfluidic каналы различных геометрических секций путем последовательных мокрой офорт процессов

Related Videos

10.5K Views

Многослойная микрофлюидная платформа для проведения длительного выражения генов без клеток

11:23

Многослойная микрофлюидная платформа для проведения длительного выражения генов без клеток

Related Videos

10.8K Views

Преобразование статических барьерных моделей тканей в динамические микрофизиологические системы

06:20

Преобразование статических барьерных моделей тканей в динамические микрофизиологические системы

Related Videos

1.6K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code