本实验方案旨在建立并维持一种新皮层脑片的器官型培养体系,以便对锥体神经元进行电生理记录。
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本实验方案旨在建立并维持一种新皮层脑片的器官型培养体系,以便对锥体神经元进行电生理记录。
我们一直在研究大鼠新皮层锥体神经元中电压门控钾通道的表达及其功能作用。由于目前缺乏针对这些通道的特异性药理学工具,我们采用了遗传学方法来调控通道的表达。我们采用脑片器官型培养方法(16),以维持细胞形态以及皮层的分层结构。通常在出生后第8至10天急性分离新皮层脑片,并将脑片在体外培养3至7天。这种方法使我们能够在与急性脑片实验相似的发育阶段研究神经元,同时最大限度地减少脑片中过度兴奋性连接的形成。我们通过红外照明(IR)结合微分干涉差显微镜(DIC)技术,在电流钳或电压钳模式下进行全细胞膜片钳记录,对II/III层或V层中经视觉识别的锥体神经元进行电生理记录。为调控钾通道的表达以研究其功能,我们采用基因枪(生物弹道)法转染野生型或突变型钾通道DNA。通过共转染绿色荧光蛋白(GFP)的cDNA,可在转染后利用落射荧光显微镜轻松识别转染的细胞。我们将同一脑片同一皮层内转染细胞的记录结果与邻近未转染神经元的记录结果进行比较。
1. 切片日前的准备工作
我们发现,在切片当天之前对手术器械进行高压灭菌并配制溶液更为高效。
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我们一直在研究大鼠新皮层锥体神经元中电压门控性钾通道的表达及其功能作用(4, 9-11)。由于目前缺乏针对这些通道的特异性药理学工具,我们采用遗传学方法来调控通道的表达(1,14,15,17-19)。我们采用一种改良自Stoppini et al.(16)的器官型脑片培养方法(2,3;5-8;12,13,15-22),以维持细胞形态以及皮层的分层结构。我们在出生后第6至17天获取急性新皮层脑片,并在体外培养2至7天。这种方法使我们能够研究与急性脑片实验中年龄相近的神经元,同时最大限度地减少脑片中过度兴奋性连接的形成。我们通过红外照明(IR)结合微分干涉差显微镜(DIC)技术,在电流钳或电压钳模式下对II/III层或V层中视觉识别的锥体神经元进行全细胞膜片钳记录。通过基因枪(Biolistic)转染野生型或突变型钾通道DNA,调控通道表达以研究其功能(1,14,15,17)。通过与GFP的cDNA共转染,可在落射荧光显微镜下轻松识别转染的细胞。我们将同一脑片同一皮层层中相邻的未转染神经元作为对照,与转染细胞的记录结果进行比较(1,17)。
本文所述的所有操作步骤均.......
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未声明任何利益冲突。
作者谨此感谢 Mayumi Sakuraba 和 Rebecca Foehring 提供出色的技术支持。此外,我们感谢 Rodrigo Andrade 博士在实施器官型脑片培养和基因枪转染实验方案方面提供的帮助,以及 Jeanne Nerbonne 博士为我们提供用于转染的 cDNA 构建体。本研究工作由美国国立神经疾病与卒中研究所(NINDS)资助:NIH 基金项目 NS044163(资助对象:RCF)。
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| 姓名 | 公司 | 目录编号 | 评论 |
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手术 / 转染 / 培养
媒体:
第6-8项物品购自:Fisher Scientific,1241 Ambassador Blvd,P.O. Box 14989,St. Louis,MO 63132。 记录:
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