Die Studie stellt Zebra II vor, ein fortschrittliches System zur verlängerten EKG-Erfassung und -Analyse bei Zebrafischen. Dieses System verfügt über ein unabhängiges Perfusionssystem und Mehrpunktelektroden für den Umgang mit mehreren Fischen in kontrollierten Umgebungen. Akute Wirkungen von Amiodaron wurden mit Wildtyp-Zebrafischen bewertet und analysiert.
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Methodenartikel
Zebra II als neuartiges System zur Aufzeichnung elektrophysiologischer Signale im Zebrafisch
In diesem Artikel
Zusammenfassung
Zusammenfassung
Zebrafische und ihre Mutantenlinien wurden ausgiebig in biomedizinischen Untersuchungen, kardiovaskulären Studien und Medikamentenscreenings eingesetzt. In der aktuellen Studie wird die kommerzielle Version des neuartigen Systems, Zebra II, vorgestellt. Das Protokoll demonstriert die Erfassung und Analyse von Elektrokardiogrammen (EKG) von mehreren Zebrafischen in kontrollierbaren Arbeitsumgebungen. Das Gerät besteht aus einem externen und unabhängigen Perfusionssystem, einer 4-Punkt-Elektrode, Temperatursensoren und einem eingebetteten elektronischen System. In früheren Studien wurde der Geräteprototyp in mehreren Tests gegen das etablierte iWORX-System validiert und zeigte eine ähnliche Datenqualität und ein ähnliches EKG-Ansprechen wie bei medikamentösen Interventionen. Im Anschluss daran befasste sich die Studie mit der Untersuchung der Auswirkungen von Narkosemitteln und Temperaturschwankungen auf das Zebrafisch-EKG, was eine sofortige Datenauswertung erforderlich machte. Dank der Fähigkeit des Geräts zur konsistenten Verabreichung von Anästhetika und Medikamenten war es möglich, die EKG-Datenerfassung auf bis zu 1 Stunde zu verlängern, deutlich länger als die von den aktuellen Systemen unterstützte Dauer von 5 Minuten. In diesem Artikel wird eine bahnbrechende, cloudbasierte, automatisierte Analyse unter Verwendung von Daten von vier Zebrafischen vorgestellt, die eine effiziente Methode zur Durchführung von Kombinationsexperimenten bietet und den Zeit- und Arbeitsaufwand erheblich reduziert. Das System erwies sich als effektiv bei der Erfassung und Analyse von EKGs, insbesondere bei der Erkennung von medikamenteninduzierten Arrhythmien bei Wildtyp-Zebrafischen. Darüber hinaus erleichterte die Möglichkeit, Daten über mehrere Kanäle zu sammeln, die Durchführung randomisierter kontrollierter Studien mit Zebrafischmodellen. Das entwickelte EKG-System überwindet bestehende Einschränkungen und zeigt das Potenzial, die Wirkstoffforschung und die kardiovaskuläre Forschung mit Zebrafischen erheblich zu beschleunigen.
Einleitung
Herz-Kreislauf-Erkrankungen (CVDs) sind weltweit die häufigste Todesursache. Laut dem AHA Update Report 2024 sterben in den USA jeden Tag rund 2552 Menschen an Herz-Kreislauf-Erkrankungen, und die durchschnittlichen direkten und indirekten Kosten von Herz-Kreislauf-Erkrankungen wurden 2017-2018 auf 378,0 Milliarden US-Dollar geschätzt1. Vorhofflimmern (VHF) ist eine der häufigsten Herzrhythmusstörungen in den USA2 und ist mit einer ungünstigen Prognose verbunden, die das Schlaganfall- und Todesrisiko sowohl bei Herz-Kreislauf-Erkrankungen als auch bei nicht-kardiovaskulären Erkrankungen erhöht, was zu einem erhöhten Risiko für unerwünschte Ergebnisse führt3. Diese Art von Herzrhythmusstörungen zeichnet sich durch eine schnelle und unregelmäßige elektrische Aktivität in den Vorhöfen aus, die in der Regel zu einem schnellen und unregelmäßigen ventrikulären Rhythmus führt4. Darüber hinaus gibt es angesichts der jüngsten Ereignisse von COVID-19 eine erhöhte Anzahl von Studien und Beweisen, die ein vermehrtes Auftreten von Herzrhythmusstörungen im Zusammenhang mit COVID-19 zeigen, vor allem bei Sinusbradykardie5. Auf der anderen Seite des Vorhofflimmerns weist die Sinusbradykardie einen verminderten und langsameren Herzrhythmus mit einer Herzfrequenz von weniger als 60 Schlägen pro Minute (bpm) auf. Diese Diagnose erfordert ein Elektrokardiogramm (EKG), das einen normalen Sinusrhythmus mit einer Frequenz von weniger als 60 Schlägen pro Minute zeigt.
Der Zebrafisch, Danio rerio, hat sich aufgrund seiner Homologie zum Menschen sowohl in der Morphologie, Physiologie als auch in der Genetik als ideales Modell für kardiovaskuläre und Arzneimittelentwicklungsstudien erwiesen6,7. Obwohl der Zebrafisch im Vergleich zum Vierkammerherzen beim Menschen nur zwei erkennbare Kammern hat, besitzt er eine ähnliche kontraktile Struktur mit einem analogen Leitungssystem8,9. Daher eignet sich das Zebrafischmodell zur Erforschung von Herzrhythmusstörungen und zur Erforschung des Zusammenhangs zwischen verwandten genetischen Signalwegen und elektrophysiologischen Eigenschaften durch EKG-Analyse. In Bezug auf das Sensordesign für die EKG-Aufzeichnung im Zebrafisch werden üblicherweise herkömmliche Nadelelektroden verwendet10. Andere Studien präsentierten Alternativen für herkömmliche Nadeln, indem sie einen anderen Nadeltyp aus anderen Materialien entwarfen 11, wobei Materialien wie Wolframfilament, Edelstahl und Silberdraht verwendet wurden, um die Qualität der aufgezeichneten Daten zu bewerten. Zusammen mit dem tragbaren EKG-Kit wollten sie eine universelle Plattform sowohl für Forschungs- als auch für Bildungslabore schaffen.
Das Nadelsystem wurde auch in anderen Studien eingesetzt11,12,13,14 zur Durchführung von Forschungsarbeiten über biologische und/oder arzneimittelinduzierte Wirkungen, in denen es ermutigende Ergebnisse zeigte. Um jedoch optimale Signale zu erhalten, war es notwendig, die Nadeln vorsichtig durch die Dermis des Zebrafisches zu stechen. Dieses invasive Verfahren kann aufgrund der Schärfe der Nadeln zu Verletzungen des Fischherzens führen, wodurch möglicherweise die Signalmorphologie verändert wird13. Darüber hinaus stellt die genaue Platzierung der Elektrode auf dem kleinen Herzen, ohne Schäden zu verursachen, um eine klare EKG-Erfassung zu gewährleisten, eine erhebliche Lernkurve dar. In der Folge wurden verschiedene Substitutionssondensysteme eingeführt, wie z. B. Mikroelektrodenarrays (MEA) und 3D-gedruckte Sensoren. Sowohl unser Team als auch andere Forscher haben MEA erfolgreich für die Datenerfassung eingesetzt und Daten erzielt, die ein gutes Signal-Rausch-Verhältnis (SNR) zusammen mit einer hohen räumlichen und zeitlichen Auflösung bieten15,16,17. Zum Beispiel haben wir eine MEA eingeführt, die das Herz des Fisches umhüllt und die Erfassung von standortspezifischen EKG-Signalen ermöglicht15,16. Im Gegensatz dazu entwickelte ein anderes Team eine andere Art von MEA, die auf einer flexiblen Leiterplatte (FPCB) aus Polyimidfolie basiert, die zur Aufzeichnung mehrerer Elektroenzephalogramme (EEGs) für die Epilepsieforschung gedacht ist 18. MEAs ermöglichen zwar die Aufzeichnung zahlreicher Signale, sind aber aufgrund der begrenzten Anzahl von Elektrodenkanälen durch die Fähigkeit, jeweils nur einen Fisch zu beurteilen, begrenzt. Als Reaktion auf diese Einschränkung haben wir kürzlich ein fortschrittliches System vorgestellt, das in der Lage ist, gleichzeitige EKG-Aufzeichnungen von mehreren fish19 zu ermöglichen. Bei diesem System kommen zwei Elektroden mit einer Dicke von jeweils 125 μm aus Polyimid zum Einsatz, wobei goldgesputterte Elektroden an der Unterseite des Gehäuses positioniert sind, um die Datenerfassung zu erleichtern. Der Einbau einer Wasserumwälzpumpe führte jedoch zu Rauschen, das die Signal-Rausch-Verhältnis-Qualität (SNR) der EKG-Signale beeinträchtigte. Darüber hinaus war der Einsatz von sperrigen und kostspieligen Datenerfassungstools erforderlich, die eine kabelgebundene Verbindung zu einem Computer erforderten. Auf dem Markt erhältliche Systeme wie iWORX bieten eine verbesserte Portabilität durch einen kompakten Verstärker, stehen jedoch vor ungelösten Problemen: (i) Ihre Aufzeichnungszeit ist zu kurz (3-5 Minuten) für Experimente, die eine längere Dauer erfordern, wie z. B. solche mit akuten Arzneimittelwirkungen; ii) das Erfordernis einer Betäubung der Tiere, was zu Stress führen und die elektrophysiologischen Daten des angeborenen Herzens verzerren kann; iii) manuelle, sequentielle Messungen behindern die Forschung mit einer großen Anzahl von Fischen; und (iv) die Notwendigkeit einer arbeitsintensiven Offline-EKG-Datenverarbeitung. Wichtig ist, dass es noch keine Hochdurchsatzsysteme mit Mikroelektronik zur Analyse mutierter Phänotypen gibt. Daher ist die Entwicklung von Hochdurchsatzsystemen, die eine erweiterte EKG-Aufzeichnung ermöglichen, von entscheidender Bedeutung, um Zusammenhänge zwischen arrhythmischen Phänotypen und mutierten Genotypen aufzudecken, mehrere arrhythmische Phänotypen zu identifizieren, die mit einzelnen mutierten Genotypen assoziiert sind, und die Wirksamkeit von Herzmedikamenten anhand des Zebrafischmodells zu testen. Daher haben wir im Jahr 2022 den bahnbrechenden Prototyp des Zebra II-Systems vorgestellt. Dieses neuartige System ist in der Lage, erweiterte EKG-Aufzeichnungen von mehreren Fischen gleichzeitig durchzuführen. Um dies zu erreichen, wurde ein hauseigenes elektronisches System entwickelt, das die Internet of Things (IoT)-Technologie für die drahtlose Datenübertragung nutzt und die Datenanalyse über eine mobile Anwendung ermöglicht. Die Einbeziehung der IoT-Technologie stärkte nicht nur die Flexibilität und Portabilität des Systems, sondern erleichterte auch die Zusammenarbeit aus der Ferne für die Forschung an Zebrafischmodellen. In einer früheren Studie haben wir die Wirksamkeit des Systems durch umfangreiche Tests validiert und seine Fähigkeit gezeigt, 1) EKG-Daten gleichzeitig von vier Fischen zu erfassen; 2) kontinuierliche EKG-Aufzeichnungen für bis zu 1 h durchzuführen, was die Kapazität bestehender Systeme, die nur wenige Minuten erfassen, deutlich übersteigt; 3) Minimieren Sie die verwirrenden Effekte der Anästhesie durch eine um 50% reduzierte Konzentration von Tricain. Darüber hinaus zeigte das System eine starke Fähigkeit für langwierige EKG-Aufzeichnungen in verschiedenen Experimenten, wie z. B. solchen mit natriuminduzierten Sinusblockaden (SA), temperaturinduzierten Herzfrequenzänderungen und medikamenteninduzierten Arrhythmien sowohl bei Tg(SCN5A-D1275N)-Mutanten als auch bei Wildtyp-Fischen unter kontrollierten experimentellen Bedingungen. Die Verwendung mehrerer Elektrodenkanäle für die erweiterte EKG-Aufzeichnung des Systems ermöglicht außerdem die Durchführung randomisierter kontrollierter Studien, so dass zwei Fische pro Versuchsgruppe unter identischen Bedingungen untersucht werden können20. In diesem Artikel stellen wir die aktualisierte Version des Systems mit einer 4-Punkt-Elektrode vor. Diese Verbesserung ermöglicht es dem Benutzer, EKG-Messwerte von verschiedenen Stellen am Fisch zu erfassen, wodurch die Wahrscheinlichkeit, EKG-Signale von geringer Qualität zu erhalten, erheblich reduziert wird. Darüber hinaus baut diese Iteration auf den meisten der Funktionen auf und verfeinert sie, die in früheren research19 beschrieben wurden. Dieses weiterentwickelte EKG-System ist vielversprechend, um bestehende Einschränkungen zu beheben und dadurch die Analyse arrhythmischer Phänotypen und das Screening von Medikamenten im Zebrafisch erheblich zu erleichtern. Die innovative Ergänzung der 4-Punkt-Elektrode wurde im Rahmen einer kurzen Studie über medikamenteninduzierte Arrhythmien bei Wildtyp-Zebrafischen rigoros getestet, um ihre Wirksamkeit weiter zu bestätigen.
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Protokoll
Die strikte Einhaltung ethischer Richtlinien gewährleistet das Wohlergehen und den angemessenen Umgang mit dem Zebrafisch, der an unseren Experimenten beteiligt ist. Alle experimentellen Aktivitäten wurden in Übereinstimmung mit den von den Institutional Animal Care and Use Committees (IACUC) festgelegten Standards durchgeführt. Die hier beschriebenen Experimente und Ergebnisse wurden mit Genehmigung der IACUC unter dem autorisierten Protokoll AUP-21-066 durchgeführt.
1. Zubereitung und Lagerung von Stammlösungen
VORSICHT: Bereiten Sie die Tricain-Stammlösung in einem Abzug vor und tragen Sie geeignete persönliche Schutzausrüstung (PSA).
- Messen Sie 400 mg Tricainpulver und lösen Sie es in 97,9 ml deionisiertem (DI) Wasser auf. Legen Sie einen Magnetrührer in den Behälter und mischen Sie die Lösung nach und nach.
- Passen Sie den pH-Wert an, indem Sie schrittweise weniger als 17 ml NaOH-Lösung hinzufügen. Fügen Sie weiterhin NaOH-Tropfen hinzu, bis der pH-Wert einen Bereich von 6,8 bis 7,2 erreicht.
- Bestimmen Sie die Endkonzentration der Tricainlösung unter Berücksichtigung des zugesetzten NaOH, das zur Einstellung des pH-Werts und zur Lagerung erforderlich ist.
HINWEIS: Tricainlösung ist lichtempfindlich und sollte bei Nichtgebrauch in einem bernsteinfarbenen Behälter bei 4 °C gelagert werden. - Messen Sie 258,13 mg Amiodaron und lösen Sie es in 1 l DI-Wasser auf. Setzen Sie einen Magnetrührer in den Behälter ein und rühren Sie einige Minuten lang, bis sich die Lösung vollständig aufgelöst und frei von jeglichem Pulver ist. Lagern Sie die Lösung bei Nichtgebrauch bei 4 °C im Kühlschrank.
HINWEIS: Amiodaron muss in einem Abzug zubereitet und im Kühlschrank bei 4 °C gelagert werden. Tragen Sie immer die entsprechende PSA.
2. Fischzucht
- Halten Sie den Fisch in einzelnen Aquarien, die mit einem zirkulierenden Wassersystem verbunden sind, und halten Sie die Temperatur zwischen 28 und 29 °C.
- Stellen Sie eine kontinuierliche Überwachung der Wasserqualität sicher und halten Sie sich an einen Tag-Nacht-Zyklus von 14 Stunden/10 Stunden.
- Teilen Sie die 40 Fische in vier Gruppen mit jeweils 10 Fischen auf und halten Sie diese in separaten Becken.
3. Einrichten des Geräts
HINWEIS: Das in Schritt 3.2 beschriebene Verfahren muss für jede Kammer des Geräts durchgeführt werden (Abbildung 1). Obwohl jede Kammer unterschiedlich eingerichtet werden kann, ist es aus Gründen der Konsistenz des Experiments ratsam, in allen Kammern einheitliche Einstellungen beizubehalten.
- Schließen Sie das Gerät an eine Stromquelle an und starten Sie den Betrieb, indem Sie die rote Taste auf der Vorderseite drücken.
- Navigieren Sie durch den Touchscreen des Geräts, um die zu konfigurierende Kammer auszuwählen.
- Stellen Sie die Einstellung des Tiefpassfilters auf 0,1 Hz und die Einstellung des Hochpassfilters auf 500 Hz ein. Stellen Sie die Verstärkungseinstellung auf 10.000 ein.
- Hebe den Frontdeckel an, um Zugang zu den vier Kammern zu erhalten. Tauchen Sie vor Beginn des Experiments den Schwamm jeder Kammer (Standard-Zelluloseschwamm) in Tricainlösung und drücken Sie dann überschüssige Flüssigkeit aus.
- Drehen Sie das Vier-Elektroden-Array, um sicherzustellen, dass der Schwamm zugänglich ist, bevor Sie den Fisch einführen.
4. Amiodaron-Behandlung
HINWEIS: Verwenden Sie das Wasser aus den Aquarien (Fischwasser), um verdünnte Lösungen von Amiodaron und Tricain herzustellen. Die Schritte 4.3 und 4.4 sind für jede in Schritt 2.3 getrennte Gruppe für jede in Schritt 4.1 hergestellte Lösung zu wiederholen.
- Befolgen Sie die unten beschriebenen Schritte, um die Amiodaron-Stammlösung zu verdünnen.
- Verdünnen Sie 8,75 mL Stammlösung in 41,25 mL Fischwasser, um eine Konzentration von 70 μM zu erreichen.
- Verdünnen Sie 12,5 mL Stammlösung in 37,5 mL Fischwasser, um eine Konzentration von 100 μM zu erreichen.
- 25 mL Stammlösung in 25 mL Fischwasser verdünnen, um eine Konzentration von 200 μM zu erreichen.
- Bereiten Sie die Anästhesielösung vor, indem Sie 4 ml Tricain-Stammlösung in 100 ml Fischwasser verdünnen, was zu einer Tricainkonzentration von 0,16 mg/ml führt
- Tauchen Sie jeden Fisch einzeln für 5 Minuten in die vorbereitete Amiodaron-Lösung. Verwenden Sie Timer, um die Eintauchdauer genau zu überwachen.
- Den Fisch für 2-3 Minuten zur Anästhesie in Tricainlösung geben. Stellen Sie sicher, dass die Behandlung nicht zum Tod des Fisches führt. Wenn ein Fisch abnormales Verhalten zeigt, wie z. B. Farbverlust oder eine signifikante Verringerung der Kiemenbewegung, nehmen Sie ihn sofort aus der Lösung und legen Sie ihn wieder in sauberes Fischwasser.
5. EKG-Datenerfassung
HINWEIS: Befolgen Sie sofort diese Anweisungen, nachdem Sie Schritt 4.4 abgeschlossen haben. Wiederholen Sie den Vorgang für jede Kammer, bevor Sie das Gerät versiegeln. Die Kammern sind für Fische mit einer Breite von 4 bis 10 mm und einer Länge von 25 bis 50 mm ausgelegt.
- Heben Sie den Fisch aus der Tricainlösung und legen Sie ihn auf den Schwamm, wobei Sie sehen, dass die Bauchseite nach oben zeigt.
- Positionieren Sie das Elektrodenarray in einer Rautenform über dem Brustbereich des Fisches, um EKG-Signale von vier verschiedenen Punkten gleichzeitig zu erfassen (Abbildung 2A,B). Stellen Sie sicher, dass Sie jede Elektrode sorgfältig so einstellen, dass jeder Stift die Haut des Fisches berührt.
- Drehen Sie jede Elektrode und senken Sie den Stift ab, bis er die Unterseite des Fisches berührt. Wenn der Stift zu hoch ist, drehen Sie die entsprechende Rändelschraube im Uhrzeigersinn, um sie abzusenken, bis sie den Fisch berührt.
- Führen Sie die oben beschriebene Einstellung für die Elektroden in allen Kammern durch.
- Schließen Sie den Deckel der Kammern, sobald alle Elektrodenarrays korrekt über dem Fisch in den Betriebskammern positioniert sind.
- Markieren Sie jede Kammer für die Aufnahme, indem Sie sie auf dem Touchscreen auswählen, und starten Sie dann die Aufnahme, indem Sie auf die Aufnahmetaste auf dem Bildschirm klicken.
- Klicken Sie nach 2 Minuten auf die Schaltfläche Stopp und dann in den Eingabeaufforderungsfenstern, die nach dem Stoppen auf dem Bildschirm angezeigt werden, auf die Schaltfläche Speichern. Speichern Sie die Informationen entweder auf einer Festplatte oder in der Cloud, je nach spezifischen Forschungsanforderungen.
6. Fehlerbehebung beim Positionierungssystem für Vier-Elektroden-Arrays
HINWEIS: Gelegentlich kann es vorkommen, dass eine oder mehrere Elektroden ein klares EKG-Signal nicht erfassen, was eine Neupositionierung erforderlich macht. Führen Sie die folgenden Schritte aus, um bei Bedarf eine Fehlerbehebung für das Elektrodenarray durchzuführen.
- Drücken Sie die Stop-Taste auf der Geräteoberfläche, um den Aufnahmevorgang zu stoppen und den Kanal oder die Kanäle mit inkonsistenten Signalen zu identifizieren.
- Heben Sie den vorderen Deckel an, um Zugang zu den Elektrodenkammern zu erhalten. Identifizieren Sie, welche Kammer(n) und spezifischen Elektroden Probleme verursachen.
- Drehen Sie die obere Rändelschraube im Uhrzeigersinn, um die Nähe der Elektrode zum Fisch einzustellen. Dadurch wird die Elektrode näher an den Fisch abgesenkt.
- Wiederholen Sie Schritt 6.3 bei Bedarf. Wenn das Problem nicht durch bloßes Heranrücken behoben wird, drehen Sie die Elektrode an eine andere Stelle am Fisch, bis ein zufriedenstellendes Signal erreicht wird.
7. Extrahieren und Analysieren von Daten
HINWEIS: Alle grundlegenden Datenanalysen, die in diesem Artikel vorgestellt werden, verwenden die Wavelet-Technik21, um verschiedene Arten von Rauschen und die Standardabweichung normaler Sinusschläge (SDNN) zu reduzieren, um die Schwebungsvarianz der Herzfrequenz in Ein-Minuten-Segmenten zu berechnen.
- Nachdem die Daten entweder auf der Festplatte oder in der Cloud gespeichert wurden, können Sie sie zur Analyse abrufen oder zur weiteren Verarbeitung direkt an einen Cloud-Server senden.
- Navigieren Sie zu den gespeicherten Daten, indem Sie auf dem Bildschirm auf die Schaltfläche Durchsuchen klicken, und wählen Sie die zu verwendenden Datensätze aus.
- Wählen Sie in den Optionen auf dem Bildschirm die Schaltfläche Extrahieren aus und schließen Sie ein USB-Laufwerk an den hinteren Teil des Geräts an, um die Daten zu extrahieren.
- Befolgen Sie die Anweisungen des Geräts, um die ausgewählten Datensätze für den späteren Abruf und die Analyse auf dem externen Laufwerk zu speichern.
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Ergebnisse
Die Fähigkeit, EKG-Signale von mehreren Fischen gleichzeitig aufzuzeichnen, hebt dieses Gerät deutlich hervor und bietet einen erheblichen Vorteil bei der Verringerung der für Arzneimittel- oder Herzforschung an Zebrafischen oder ähnlichen Arten benötigten Zeit (Abbildung 1). Die Aufzeichnung genauer EKG-Signale kann aufgrund anatomischer Unterschiede zwischen den Fischen schwierig sein, insbesondere hinsichtlich der Elektrodenplatzierung. Traditionell erfordert die Erfassung eines klaren EK...
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Diskussion
Die aktuellen Schritte wurden entsprechend dieser neuen Geräteversion aus einer früheren Studie unseres Teams modifiziert und verbessert20. Hier ist auch ein beschriftetes computergestütztes Design (CAD) des Gerätes enthalten.
Wie in der Anleitung zur Fehlerbehebung des Protokolls hervorgehoben, erfordert das Gerät vom Benutzer, bestimmte kritische Schritte mit Sorgfalt und Präzision auszuführen, da diese Schritte die Qualität des EKG-Signals entscheidend beeinflussen. ...
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Offenlegungen
Hung Cao und Michael Lau sind die Gründer von Sensoriis, Inc. Das Sensoriis-System Zebra II wurde mit Unterstützung der NIH entwickelt, der SBIR-Phase-II-Zuschuss #R44OD024874. Die University of California, Irvine, hat die Beziehung von Hung Cao zu Sensoriis, Inc. in Übereinstimmung mit ihren Richtlinien zu Interessenkonflikten geprüft und genehmigt. Die anderen Autoren erklären, dass kein Interessenkonflikt besteht.
Danksagungen
Wir sind dankbar für die Unterstützung durch den NIH SBIR Phase II #R44OD024874 an H.C. und M.P.H.L. Die Autoren möchten sich auch für die finanzielle Unterstützung bedanken, die das Consejo Nacional de Humanidades, Ciencias y Tecnologias (CONAHCYT) in Mexiko im Rahmen des Stipendiums Beca CONAHCYT Para Estudios de Doctorado en el Extranjero geleistet hat.
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Materialien
| Name | Unternehmen | Katalognummer | Kommentare |
|---|---|---|---|
| Amiodaronhydrochlorid | Sigma-Aldrich | PHR1164-1G | Amiodaronpulver |
| Tischgerät pH/mV-Messgerät | Sper Scientific | 10500308 | |
| Ethyle3-Aminobenzoat, Methansulfonsäuresalz, 98%, ACROS Organics | Fisher Scientific | AC118002500 | Tricainpulver |
| Isotemp Heizplattenrührer | Fisher Scientific | SP88854200 | |
| Zebra II System | Sensoriis | N/A | Kommerzielles Zebrafisch-EKG-Aufzeichnungssystem |
| Zebrafisch-EKG-System | iWorx | ZS-200 | Kommerzielles Zebrafisch-EKG-Aufzeichnungssystem |
Referenzen
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Nachdrucke und Genehmigungen
