-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Lab Manual
Chemistry
Arabellek
Arabellek
Lab Manual
Chemistry
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
Lab Manual Chemistry
Buffers

Arabellek

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

27,386 Views
14:31 min
March 26, 2020
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Procedure

Kaynak: Smaa Koraym, Johns Hopkins Üniversitesi, MD, ABD

  1. 50 mM NaH2PO4 Tamponu Hazırlanıyor, pH 7

    Bu deneyin ilk bölümünde, pH 7.0'da tamponlanmış bir sodyum fosfat çözeltisi hazırlayacaksınız. Monosodyum fosfat, eşlenik baz olan disodyum fosfat ile zayıf bir asittir. Ayarlanmamış monosodyum fosfat çözeltileri genellikle yaklaşık 4-6 arasında bir pH'a sahiptir.

    Tamponlar, monosodyum fosfat için 6.8 ila 7.2 olan pKa'larına yakın yerlerde en etkilidir. Bu nedenle, tampon dengesinin genel bileşimini değiştirmeden dengeyi eşlenik baza doğru itmek için NaOH kullanacaksınız.

    • Deneye başlamadan önce, 50 mM'lik bir çözeltinin 200 mL'sini yapmak için ihtiyaç duyacağınız monosodyum fosfat kütlesini hesaplayın.

      Tablo 1: 50 mM NaH2PO4 Tamponunun Hazırlanması, pH 7.0

      NaH'nin molar kütlesi2PO4 = 119.98 g/mol
      Çözelti hacmi (mL) 200
      Molarite (mM) 50
      NaHmolleri 2PO4 (mol)
      İhtiyaç duyulan kütle (mg)
      1 M NaOH (mL) başlangıç hacmi
      1 M NaOH (mL) son hacmi
      Kullanılan NaOH hacmi (mL)
      İhtiyaç duyulan DI su hacmi (mL)
      Tablo 1'i indirmek için buraya tıklayın
    • Başlamak için laboratuvar önlüğü, su sıçramasına dayanıklı koruyucu gözlükler ve eldivenler dahil olmak üzere gerekli kişisel koruyucu ekipmanı giyin. not: Laboratuvarın bu bölümünde aşındırıcı ve toksik olan NaOH kullanılır. NaOH dökerken ve taşırken dikkatli olun.
    • 250 mL'lik bir plastik yıkama şişesini deiyonize suyla doldurun.
    • Biri nötr sulu atık ve diğeri temel sulu atık için olmak üzere iki adet 100 mL'lik beheri etiketleyin.
    • Sağlanan tamponları kullanarak pH metrenizi kalibre edin. İşiniz bittiğinde probu saklama solüsyonunda saklayın.
    • Tartım kağıdının darasını alın ve hesaplamalarınıza göre gereken monosodyum fosfat miktarını ölçmek için temiz bir spatula kullanın. Laboratuvar defterinize tam monosodyum fosfat miktarını kaydedin. not: Monosodyum fosfat havadaki nemi emer, bu nedenle doğru bir ölçüm elde etmek için hızlı çalışın ve işiniz bittiğinde kabı sıkıca kapatın.
    • Monosodyum fosfatı 400 mL'lik bir behere yerleştirin ve spatulayı bir laboratuvar mendiliyle temizleyin. Çeker ocaklarınıza dönmeden önce tartı kağıdını ve laboratuvar mendilini atın.
    • 175 mL deiyonize suyu ölçmek için dereceli bir silindir kullanın. Suyu monosodyum fosfat kabına dökün ve manyetik bir karıştırma çubuğu ekleyin.
    • Tuz tamamen eriyene ve çözelti homojen görünene kadar çözeltiyi karıştırın. Bu genellikle 2 - 3 dakika sürer.
    • 15 mL deiyonize suyu ölçün ve kabın içine dökün. Çözeltiyi tekrar homojen görünene kadar karıştırmaya devam edin (yaklaşık 1 – 2 dakika). Karıştırma motorunu kapatın.
    • pH probunu deiyonize suyla durulayın ve ardından sensör karıştırma çubuğunun üzerindeyken solüsyona sıkıştırın.
    • 10 mL'lik dereceli bir silindir ve saat camını dağıtım başlığına getirin ve 10 mL 1 M NaOH ölçün. Dereceli silindirdeki tam hacmi not edin.
    • NaOH'nizi saat camıyla örtün ve dikkatlice çeker ocakınıza getirin.
    • Monosodyum fosfat çözeltisini karıştırmaya devam edin. PH okumasını izlerken, karıştırma çözeltisine damla damla yavaşça NaOH eklemek için tek kullanımlık bir pipet kullanın. Tampon pH'ı 7.0'a ulaştığında, pipette kalan NaOH'yi dereceli silindire geri koyun.
    • Arabelleğe eklediğiniz NaOH hacmini hesaplayın. Toplam 200 mL'lik bir çözelti hacmine ulaşmak için tamponunuza ne kadar deiyonize su eklemeniz gerektiğini belirlemek için bu hacmi 10 mL'den çıkarın.
    • Deiyonize suyu başka bir 10 mL dereceli silindirle ölçün ve tamponu yapmayı bitirmek için karıştırma çözeltisine ekleyin.
    • pH sensörünü deiyonize suyla durulayın, saklama solüsyonu dolu kapakla kapatın ve probunun fişini çekin veya kapatın.
    • 250 mL'lik bir polietilen şişeyi '50 mM monosodyum fosfat tamponu, pH 7.0' olarak etiketleyin. Manyetik karıştırma çubuğunu çözeltiden alın.
    • Tampon çözeltisini etiketli şişeye dökmek için bir huni kullanın ve sıkıca kapatın.
  2. Serbest ve Bağlı Nötr Kırmızının Absorpsiyon Spektroskopisi

    Tamponlar, belirli pH değerlerindeki bileşikleri değerlendirmek için kullanılabilir. Bu bölümde, nötr kırmızı göstergenin absorbans spektrumunu çeşitli tamponlarda kaydedeceksiniz. Nötr kırmızının protonlanmış formu kırmızıdır ve protondan arındırılmış form sarı-turuncudur, yani sırasıyla yeşil ve mavi-mor ışığı emerler. Bu nedenle, asidik ve bazik formlar farklı absorpsiyon dalga boylarına sahiptir. Protein bağlanması, nötr kırmızının özelliklerini değiştirerek hem absorbansını hem de pKa'sını değiştirir.

    Serbest nötr kırmızının absorbans spektrumunu birkaç pH değerinde ölçtükten sonra, çözeltilere riboflavin bağlayıcı protein veya RP ekleyecek ve absorbansları tekrar ölçeceksiniz. Absorbans yoğunluğu konsantrasyon ile ilgilidir, bu nedenle laboratuvardan sonra serbest ve bağlı nötr kırmızının pKa'sını belirlemek için spektrumları kullanacaksınız.

    • Laboratuvar not defterinize aşağıdaki tabloyu çizin. Küvetleri 1'den 10'a kadar numaralandırın ve kullanacağınız dokuz tampon pH değerini listeleyin. 10. küvet, deiyonize bir su boşluğu olacaktır. not: Küvetleri her zaman dokulu kenarlarından tutun ve küveti spektrofotometreye koymadan hemen önce şeffaf kenarlarını silin. Saydam kenarları spektrofotometredeki ışık huzmesi ile hizalamayı unutmayın.

      Tablo 2: Serbest ve Bağlı Nötr Kırmızının Absorbansı

      Küvet # Tampon pH Abs. λmax'ta (Serbest NRH+) Abs. λmax'ta (Bağlı NRH)
      1 5.0
      2 5.5
      3 6.0
      4 6.5
      5 7.0
      6 7.5
      7 8.0
      8 8.5
      9 11
      10 blank
      Tablo 2'yi indirmek için buraya tıklayın
    • On adet 1,5 mL'lik küvet ve kapak edinin ve 1'den 10'a kadar olan kapakları laboratuvar not defterinizdeki tabloyla eşleşecek şekilde etiketleyin.
    • 25 mL'lik bir kabı 'DIH2O' olarak etiketleyin ve deiyonize suyla doldurun.
    • Nötr sulu atıklarınızı kanalizasyona boşaltın ve kabı 'sulu tampon atığı' olarak yeniden etiketleyin.
    • Kullanılmış mikropipet uçları için 400 mL'lik bir beher etiketleyin.
    • 1 mL'lik bir mikropipete bir uç takın ve 1000 μL deiyonize suyu küvet 10'a dağıtmak için kullanın. Bu sizin çözücü boşluğunuz.
    • pH 7.0 monosodyum fosfat tamponunuzun 925 μL'sini küvet 5'e yerleştirin.
    • Kalan boş küvetleri arabellek masasına getirin. Laboratuvar not defterinizdeki tablonun rehberliğinde, etiketli mikropipetleri kullanarak her bir tampondan 925 μL'yi uygun küvete dağıtın. Farklı tamponlar için aynı pipet ucunu kullanmamaya dikkat edin.
    • İşiniz bittiğinde, arabellekleri çalışma tezgahınıza geri getirin. Orada, 75 μL'yi dağıtmak için 200 μL'lik bir mikropipet ayarlayın ve mikropipete bir uç takın.
    • Dokuz tampon küvetinin her birine 75 μL nötr kırmızı dağıtın. Çözeltileri iyice karıştırmak için her küveti birkaç kez ters çevirin. not: Pipet ucunu bir tampona temas ederse değiştirin.
    • Her arabellekle nötr kırmızıyı karıştırdıktan sonra, bir resim çekin veya çözeltilerin renklerini yazın.
    • Elde tutulan bir spektrofotometreyi açın ve ışık kaynağının ısınmasına izin verin. Hazır olduğunda, serbest nötr kırmızı için dalga boyuna karşı absorbansı ölçmek için yeni bir deney oluşturun.
    • Deiyonize su küvetini yerleştirin ve deiyonize suyun bir spektrumunu elde edin. Çözücü arka plan veya boş olarak ayarlayın.
    • Ardından, boşluğu çıkarın ve nötr kırmızı küveti, en yüksek protonlanmış nötr kırmızı konsantrasyonuna sahip olacak en düşük pH tamponuna yerleştirin.
    • Güçlü bir tepe göstermesi gereken bir spektrum edinin. Bu zirvenin en yüksek noktasına veya maksimuma karşılık gelen dalga boyunu belirleyin. Bu dalga boyunu laboratuvar not defterinize protonlanmış serbest nötr kırmızı için lambda max olarak kaydedin.
    • Verileri kaydedin ve küveti çıkarın. Absorbansı dizüstü bilgisayarınıza kaydedin, ardından aynı prosedürü kullanarak 2 - 9 arasındaki küvetler için spektrumları toplayın.
    • İzosbestik noktanın dalga boyunu laboratuvar not defterinize kaydedin. Tüm spektrumların tek bir dalga boyunda kesiştiği yer burasıdır. Bu noktada bir spektrum geçmezse, küveti boşaltın ve temizleyin, taze bir numune hazırlayın ve tekrar deneyin.
    • Dokuz küvetin tümü için spektrum toplamayı bitirdikten sonra verileri kaydedin ve dışa aktarın.
    • Bağlı nötr kırmızı için dalga boyuna karşı absorbansı ölçmek için yeni bir deney oluşturun.
    • 200 μL'lik mikropipete yeni bir uç takın ve boşluk da dahil olmak üzere her küvete 75 μL riboflavin bağlayıcı protein solüsyonu ekleyin. Ucu çıkarın, küvet kapaklarını sabitleyin ve çözeltileri karıştırmak için küveti birkaç kez ters çevirin.
    • Küvet 10'u spektrofotometreye yerleştirin ve çözücü boşluğu olarak ayarlayın.
    • En düşük pH örneğinin spektrumunu elde edin ve en yoğun tepe noktasının maksimumuna karşılık gelen dalga boyunu belirleyin. Protonlanmış bağlı nötr kırmızının lambda maksimumu olarak laboratuvar defterinize kaydedin.
    • 2 - 9 arasındaki küvetler için spektrumları, ücretsiz nötr kırmızı numuneler için yaptığınız gibi alın. Tablonuzdaki protonlanmış nötr kırmızı için lambda max'taki yoğunlukları, izosbestik noktadaki dalga boyuyla birlikte kaydedin.
    • İşiniz bittiğinde, verilerinizi kaydedin, daha sonra analiz etmek üzere dışa aktarın ve spektrofotometreyi kapatın.
    • Tüm ekipmanı kaldırın ve kullanılmış pipet uçlarınızı onaylı bir atık kabına veya çöp kutusuna atın.
    • Küvetleri sulu tampon atık kabına boşaltın ve küvetleri deiyonize su ile behere durulayın.
    • Fazla NaOH'yi temel atığa boşaltın ve dereceli silindiri suyla durulayın.
    • Temel sulu atıkları, diğer sulu atıklarla birlikte bol musluk suyuyla kanalizasyona akıtın.
    • Cam eşyalarınızı, küvet kapaklarınızı ve karıştırma çubuğunuzu laboratuvar standart prosedürlerinize göre yıkayın. Çalışma yüzeylerinizi nemli bir kağıt havluyla temizleyin ve kullanılmış kağıt havluları ve laboratuvar mendillerini laboratuvar çöpüne atın.
  3. Results

    Şimdi, nötr kırmızının pKa'larını belirlemek için absorbans verilerimizi analiz edelim.

    Tablo 3: Nötr Kırmızı pKa'ların Belirlenmesi

    Ücretsiz NRH+ Bağlı NRH+
    λmaks (nm)
    ΔA (nm)
    Orta nokta (nm)
    pKa

    Tablo 3'ü indirmek için buraya tıklayın

    • Her iki yoğunluk verisi setini, noktalar düz çizgilerle birleştirilecek şekilde, y ekseninde lambda maksimumunda ve x ekseninde pH'ta absorbans yoğunluğu ile çizin.
    • Her veri serisi için başlangıç ve bitiş absorbans yoğunlukları arasındaki farkı hesaplayın.
    • Her seri için başlangıç ve bitiş absorbansları arasındaki absorbansı veya absorbans orta noktalarını belirleyin.
    • Her satırda orta noktanın nerede oluştuğunu bulun ve bu noktadaki pH değerini belirleyin. Bu pH değerleri, serbest ve bağlı nötr kırmızının pKa'larıdır.
    • Burada, serbest ve bağlı nötr kırmızı arasında yaklaşık bir pKa'lık bir artış görüyoruz, bu da bağlı protonlanmış nötr kırmızının, büyüklük sırasına göre serbest protonlanmış nötr kırmızıdan daha zayıf bir asit olduğunu gösteriyor.

Transcript

Bu deneyin ilk bölümünde, pH 7.0'da tamponlanmış bir sodyum fosfat çözeltisi hazırlayacaksınız. Monosodyum fosfat, eşlenik baz disodyum fosfat ile zayıf bir asittir. Ayarlanmamış monosodyum fosfat çözeltileri genellikle yaklaşık 4 ila 6 arasında bir pH'a sahiptir.

Tamponlar, monosodyum fosfat için 6.8 ila 7.2 olan pKa'larına yakın yerlerde en etkilidir. Bu nedenle, tampon dengesinin genel bileşimini değiştirmeden dengeyi eşlenik baza doğru itmek için sodyum hidroksit kullanacaksınız. Laboratuara başlamadan önce, 200 mililitre 50 milimolar çözelti yapmak için ihtiyaç duyacağınız monosodyum fosfat kütlesini hesaplayın.

Laboratuvarın bu bölümünde aşındırıcı ve toksik olan sodyum hidroksit kullanılır. Sodyum hidroksit dökerken ve taşırken dikkatli olun. Şimdi başlayalım.

İlk olarak, bir laboratuvar önlüğü, su sıçramasına dayanıklı koruyucu gözlükler ve nitril eldivenler giyin. Ardından, 250 mililitrelik bir plastik yıkama şişesini deiyonize suyla doldurun. Sırasıyla nötr ve bazik sulu atıklar için iki adet 100 mililitrelik beheri etiketleyin.

Ardından, sağlanan tamponları kullanarak pH metrenizi kalibre edin. İşiniz bittiğinde probu saklama solüsyonunda saklayın. Şimdi, ihtiyaç duyacağınız monosodyum fosfatı elde etmek için analitik terazi alanına 400 mililitrelik bir beher getirin.

Bir parça tartı kağıdının darasını alın ve hesaplamalarınıza göre gerekli monosodyum fosfat miktarını ölçmek için temiz bir spatula kullanın. Monosodyum fosfat havadaki nemi emer, bu nedenle doğru bir ölçüm elde etmek için hızlı çalışın ve işiniz bittiğinde kabı sıkıca kapatın. Ölçtüğünüz monosodyum fosfat miktarını laboratuvar defterinize kaydedin.

Ardından, monosodyum fosfatı behere yerleştirin ve spatulayı bir laboratuvar mendili ile temizleyin. Çeker ocaklarınıza dönmeden önce tartı kağıdını ve laboratuvar mendilini atın. Şimdi, 175 mililitre deiyonize suyu ölçmek için dereceli bir silindir kullanın.

Suyu monosodyum fosfat kabına dökün ve manyetik bir karıştırma çubuğu ekleyin. Tuz tamamen eriyene ve çözelti homojen görünene kadar çözeltiyi bir karıştırma plakası üzerinde karıştırın. Bu genellikle iki ila üç dakika sürer.

Ardından, dereceli bir silindir ile 15 mililitre deiyonize su ölçün. Deiyonize suyu behere dökün ve çözeltiyi tekrar homojen görünene kadar karıştırmaya devam edin, bu genellikle bir ila iki dakika sürer. Ardından karıştırma motorunu kapatın.

pH probunu deiyonize su ile durulayın ve ardından sensör karıştırma çubuğunun üzerindeyken solüsyona sıkıştırın. Şimdi, 10 mililitrelik dereceli bir silindir ve saat camını dağıtım başlığına getirin ve 10 mililitre 1 molar sodyum hidroksit ölçün. Sodyum hidroksitinizi saat camıyla örtün ve dikkatlice çeker ocakınıza getirin.

Dereceli silindirdeki tam hacmi not edin. Ardından, monosodyum fosfat çözeltisini karıştırmaya devam edin. PH okumasını izlerken, karıştırma çözeltisine damla damla yavaşça sodyum hidroksit eklemek için tek kullanımlık bir pipet kullanın.

Tampon pH'ı 7.0'a ulaştığında, pipette bulunan sodyum hidroksiti dereceli silindire geri koyun. Ardından, dereceli silindirdeki ilk ve son hacimlerden eklediğiniz sodyum hidroksit hacmini hesaplayın. Toplam 200 mililitrelik bir çözelti hacmine ulaşmak için tamponunuza ne kadar deiyonize su eklemeniz gerektiğini belirlemek için bu hacmi 10 mililitreden çıkarın.

İhtiyacınız olan deiyonize suyu başka bir 10 mililitre dereceli silindirle ölçün ve tamponu yapmayı bitirmek için karıştırma çözeltisine ekleyin. pH sensörünü deiyonize suyla durulayın, saklama solüsyonu dolu kapakla kapatın ve probun fişini çekin veya kapatın. Bundan sonra, 250 mililitrelik bir polietilen şişeyi 50 milimolar monosodyum fosfat tamponu olarak etiketleyin, pH 7.0'Manyetik karıştırma çubuğunu çözeltiden almak için forseps kullanın.

Ardından, şişenin ağzına bir huni yerleştirin ve tampon çözeltisini şişeye dökün. Huniyi çıkarın ve şişeyi sıkıca kapatın. Artık absorpsiyon spektroskopisi bölümüne geçmeye hazırsınız.

Tamponlar, belirli pH değerlerindeki bileşikleri değerlendirmek için kullanılabilir. Bu bölümde, nötr kırmızı göstergenin absorbans spektrumunu çeşitli tamponlarda kaydedeceksiniz. Nötr kırmızının protonlanmış formu kırmızıdır ve protondan arındırılmış form sarı-turuncudur, yani sırasıyla yeşil ve mavi-mor ışığı emerler.

Bu nedenle, asidik ve bazik formlar farklı absorpsiyon dalga boylarına sahiptir. Protein bağlanması, nötr kırmızının özelliklerini değiştirerek hem absorbansını hem de pKa'sını değiştirir. Serbest nötr kırmızının absorbans spektrumunu birkaç pH değerinde ölçtükten sonra, çözeltilere riboflavin bağlayıcı protein veya RP ekleyecek ve absorbansları tekrar ölçeceksiniz.

Absorbans yoğunluğu konsantrasyon ile ilgilidir, bu nedenle laboratuvardan sonra serbest ve bağlı nötr kırmızının pKa'sını belirlemek için spektrumları kullanacaksınız. Bu bölüme başlamadan önce, laboratuvar not defterinize küvet numarasını, tampon pH'ını, serbest protonlanmış nötr kırmızı için lambda maksimumunda absorbansı ve bağlı protonlanmış nötr kırmızı için lambda max'ta absorbasyonu listeleyen bir tablo çizin. Küvetleri 1'den 10'a kadar numaralandırın ve kullanacağınız dokuz tampon pH değerini listeleyin.

10. küvet, deiyonize bir su boşluğu olacaktır. Küvetleri her zaman dokulu kenarlarından tutun ve küveti spektrofotometreye koymadan hemen önce şeffaf kenarlarını silin. Saydam kenarları spektrofotometredeki ışık huzmesi ile hizalamayı unutmayın.

Şimdi başlayalım. On adet 1,5 mililitrelik küvet ve kapak edinin ve 1'den 10'a kadar olan kapakları laboratuvar not defterinizdeki tabloya uyacak şekilde etiketleyin. 25 mililitrelik bir kabı DIH2O' olarak etiketleyin ve deiyonize su ile doldurun.

Ardından, nötr sulu atıklarınızı kanalizasyona akıtın ve kabı sulu tampon atığı olarak yeniden etiketleyin'Ayrıca, kullanılmış mikropipet uçları için 400 mililitrelik bir beher etiketleyin. Ardından, 1 mililitrelik bir mikropipete bir uç takın ve 1000 mikrolitre deiyonize suyu küvet 10'a dağıtmak için kullanın. Bu sizin çözücü boşluğunuz olacaktır.

Şimdi ucu çıkarın, mikropipeti 925 mikrolitre dağıtacak şekilde ayarlayın ve yeni bir uç takın. 925 mikrolitre pH 7.0 monosodyum fosfat tamponunuzu küvet beşe yerleştirin. Ucu çıkarın ve küveti kapatın.

Ardından, kalan boş küvetleri tampon masasına getirin. Laboratuvar not defterinizdeki tablonun rehberliğinde, etiketli mikropipetleri kullanarak her bir arabellekten 925 mikrolitreyi uygun küvete dağıtın. Farklı tamponlar için aynı pipet ucunu kullanmamaya dikkat edin.

İşiniz bittiğinde, arabellekleri tezgahınıza geri getirin. Orada, 75 mikrolitreyi dağıtmak için 200 mikrolitrelik bir mikropipet ayarlayın ve mikropipete bir uç takın. Şimdi, başka bir öğrenci grubuyla paylaşılabilecek bir şişe veya nötr kırmızı çözelti tüpü edinin.

Dokuz tampon küvetinin her birine 75 mikrolitre nötr kırmızı dağıtın. Pipet ucunu bir tampona temas ederse değiştirin. Pipet ucunu çıkarın ve işiniz bittiğinde küvetlerin kapağını kapatın.

Şimdi, çözeltileri iyice karıştırmak için her küveti birkaç kez ters çevirin. Nötr kırmızıyı her arabellekle karıştırdıktan sonra, bir resim çekin veya çözeltilerin renklerini yazın. Ardından, elde tutulan bir spektrofotometreyi açın ve ışık kaynağının ısınmasını bekleyin.

Hazır olduğunda, serbest nötr kırmızı için dalga boyuna karşı absorbansı ölçmek için yeni bir deney oluşturun. Ardından, deiyonize su küvetini yerleştirin. Deiyonize suyun bir spektrumunu elde edin ve bunu bir çözücü arka plan veya boş olarak ayarlayın.

Ardından, işlenmemiş parçayı spektrofotometreden çıkarın ve nötr kırmızı küveti, en yüksek protonlanmış nötr kırmızı konsantrasyonuna sahip olacak en düşük pH tamponuna yerleştirin. Güçlü bir tepe göstermesi gereken bir spektrum edinin. Bu zirvenin en yüksek noktasına veya maksimuma karşılık gelen dalga boyunu belirleyin.

Bu dalga boyunu laboratuvar not defterinize protonlanmış serbest nötr kırmızı için lambda max olarak kaydedin. Verileri kaydedin ve küveti çıkarın. Absorbansı not defterinize kaydedin, ardından aynı prosedürü kullanarak 2'den 9'a kadar olan küvetler için spektrumları toplayın.

Spektrumların tümü, izosbestik nokta adı verilen tek bir noktada kesişmelidir. Bu noktanın dalga boyunu laboratuvar not defterinize kaydedin. Bu noktada bir spektrum geçmezse, küveti boşaltın ve temizleyin, taze bir numune hazırlayın ve tekrar deneyin.

9 küvetin tümü için spektrum toplamayı bitirdiğinizde, verileri kaydedin ve dışa aktarın. Ardından, bağlı nötr kırmızı için dalga boyuna karşı absorbansı ölçmek için yeni bir deney oluşturun. 200 mikrolitrelik mikropipete yeni bir uç takın ve ortak bir riboflavin bağlayıcı protein kabı elde edin.

Boşluk da dahil olmak üzere her küvete 75 mikrolitre riboflavin bağlayıcı protein çözeltisi ekleyin. Ucu çıkarın, küvet kapaklarını sabitleyin ve çözeltileri karıştırmak için küveti birkaç kez ters çevirin. Şimdi, küveti 10 spektrofotometreye yerleştirin ve çözücü boşluğu olarak ayarlayın.

Ardından, en düşük pH örneğinin bir spektrumunu elde edin ve en yoğun tepe noktasının maksimumuna karşılık gelen dalga boyunu belirleyin. Protonlanmış bağlı nötr kırmızının lambda maksimumu olarak laboratuvar defterinize kaydedin. Bundan sonra, 2'den 9'a kadar olan küvetler için ücretsiz nötr kırmızı numuneler için yaptığınız gibi spektrumlar elde edin.

Tablonuzdaki protonlanmış nötr kırmızı için lambda max'taki yoğunlukları, izosbestik noktadaki dalga boyuyla birlikte kaydedin. İşiniz bittiğinde verilerinizi kaydedin, daha sonra analiz etmek üzere dışa aktarın ve spektrofotometreyi kapatın. Mikropipetleri, uç kutularını, pH metreyi ve spektrofotometreyi kaldırın.

Kullanılmış pipet uçlarınızı onaylı bir atık kabına veya çöp kutusuna atın. Şimdi, küvetleri sulu tampon atık kabına boşaltın ve küvetleri deiyonize su ile behere durulayın. Çeker ocakta, fazla sodyum hidroksiti temel atığa boşaltın ve dereceli silindiri suyla durulayın.

Temel sulu atıkları, diğer sulu atıklarla birlikte bol musluk suyu ile kanalizasyona yıkayın. Cam eşyalarınızı, küvet kapaklarınızı ve karıştırma çubuğunuzu laboratuvar standart prosedürlerinize göre yıkayın. Son olarak, çalışma yüzeylerinizi nemli bir kağıt havluyla temizleyin ve kullanılmış kağıt havluları ve laboratuvar mendillerini laboratuvar çöpüne atın.

Şimdi, nötr kırmızının pKa'larını belirlemek için absorbans verilerimizi analiz edelim. İlk olarak, her iki yoğunluk verisi setini de y ekseninde lambda maks'ta absorbans yoğunluğu ve x ekseninde pH ile noktalar düz çizgilerle birleştirilecek şekilde çizin. Ardından, her veri serisi için başlangıç ve bitiş absorbans yoğunlukları arasındaki farkı hesaplayın.

Bunu, her seri için başlangıç ve bitiş absorbansları arasındaki absorbansı veya absorbans orta noktalarını hesaplamak için kullanın. Şimdi, her çizgide orta noktanın nerede oluştuğunu bulun ve o noktadaki pH değerini belirleyin. Bu pH değerleri, serbest ve bağlı nötr kırmızının pKa'larıdır.

Burada, serbest ve bağlı nötr kırmızı arasında yaklaşık 1'lik bir pKa artışı görüyoruz, bu da bağlı protonlanmış nötr kırmızının, büyüklük sırasına göre serbest protonlanmış nötr kırmızıdan daha zayıf bir asit olduğunu gösteriyor.

Explore More Videos

JoVE Lab Chem Lab: 39 Prosedür

Skip to

Concept

Instructor Prep

Student Protocol

Related Videos

Arabellek

Arabellek

Chemistry

9.3K Görüntüleme

Arabellek

Arabellek

Chemistry

27.4K Görüntüleme

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code