$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Yüzey gerilme uygulama
Normalize nükleer gerginlik ölçümü yemekleri üzerine hücreler, kaplama, ve (veya iki eksenli tek eksenli) suşu uygulama öncesinde, sırasında ve sonrasında görüntüleri alan hücrelerin, hücre kültürü yüzey olarak şeffaf, elastik silikon membran ile gerginlik yemeklerin hazırlanması içerir.
Silikon membran yemekleri ve hücrelerin bağlılık hazırlanması
- Her suş çanak çapı 3 ısmarlama dipsiz plastik tabak oluşur "ve hücre kültürü substrat olarak hizmet veren bir silikon membran, tutmak için plastik bir O-ring. Gerilme yemeklerin hazırlanması için, 4 kelepçe" x 4 "O-ring ve çanak arasında silikon membran parçası. dikkatlice, aşırı membran kesip, deiyonize su ile durulayın ve gerginlik yemekleri otoklavda.
- Ekstraselüler matriks molekülleri (örneğin, fibronektin) ile silikon membranlar membran kaplama öncesi alt merkezi (dışında) bir referans noktası Mark. Bu dönüm noktası gerilme deneyler sırasında aynı hücrelere belirlemenize yardımcı olacaktır. (Opsiyonel: tek eksenli gerilme uygulama için, iki paralel çizgiler seloteyip referans noktası etrafında bir boyut membran deformasyon kısıtlamak için uygulanır.)
- 10 ml PBS veya uygun herhangi bir ekstrasellüler matriks proteinleri seyreltilmiş 3 mikrogram / ml fibronektin ile optimum hücre eki, kat silikon membranlar sağlamak. Kapak, ters bir 10cm polistiren çanak gerginlik çanak ve 4 gece boyunca yemekler inkübe ° C
- Fosfat, aşırı protein kaldırmak için Tamponlu Salin (PBS) Ertesi gün, bir kez membranlar durulayın. Çanak büyüme orta 10ml (Dulbecco'nun Modifiye Eagles Orta (yüksek glukoz),% 10 fetal sığır serumu ve% 1 penisilin / streptomisin ile desteklenmiş) ile doldurun ve bir kenara koyun.
- Normal kültür koşulları altında 48 saat - 24 kaplı silikon membran çanak ve inkübe üzerine yaklaşık% 30 izdiham fare embriyonik fibroblastlar büyüme orta ve% 0.05 tripsin ve numaralı seribaşı tripsinize vardır.
Yüzey gerilme deneyleri
- Deneyler için mikroskop kadar ayarlayın. Deneyler, 60x objektif ve uygun görüntü alma yazılımı (örneğin, IPLab veya Metamorph) kullanarak bir inverted mikroskop, floresan mikroskobu, faz kontrast ya da DIC için uygun bir dijital kamera ile yapılmaktadır. Dik bir mikroskop, bu uygulama için uygun değildir. Gerinim Cihaz mikroskop sahneye uygun bir taban plakası oluşur ve merkezi bir silindirik silikon membran, hareketli plaka gerginlik çanak tutan bir merkez bölümüne gerginlik uygulamak için hizmet vermektedir merdane ve yukarı ve aşağı doğru kaydırın tutan dört rehberlik iğne, bir yük uygulamak için 5 kg ağırlık plakası gibi.
- Çekirdeklerin görselleştirmek için Hoechst 33.342 15 dakika için 1 mcg / ml, 37 suşu çanak hücrelerin inkübe ° C Aspire orta ve 15 ml fenol-kırmızı büyüme orta (% 10 fetal sığır serumu ve% 1 penisilin / streptomisin ile desteklenmiş fenol-kırmızı ücretsiz Dulbecco'nun Modifiye Eagles Orta (yüksek glukoz), 25 mM HEPES) ile değiştirin. Suşu çanak çanak tutucu plakası içine vidalayın. Dikkatlice merkezi merdane boyunca membran kayganlık sağlamak için silikon membran altındaki çevre gres (Braycote 804 Vakum Gres) uygulanır. Membran merkezi bölümünde açık tutmak için emin olun.
- Mikroskop sahneye taban plakası yerleştirin. Taban plakası dikkatle Mount çanak tutucu plakası. Ilk dinlenme pozisyonunda, gerginlik çanak silikon membran gevşek merkezi merdane dayanmaktadır sağlamak.
- İlk olarak, silikon membran alt odağı ve merkezi siyah referans nokta bulmak. Nokta, tüm görüntü satın almalar ve streç sırasında ve sonrasında aynı hücrelerin yerini yardımcı için başlangıç noktası olarak hizmet verecek. Biz hücre konumları depolamak için ve deneme sırasında bu hücreler taşınmaya özel bir yazılı otomatik görüntüleme programı kullanabilirsiniz, ancak bu da manuel olarak elde edilebilir.
- Noktadan başlayarak, hücreleri ve silikon membran üst görselleştirmek için odağı ayarlayın. Merkezi bulunan çekirdekleri ile iyi yayılmış hücreleri bulup bir faz kontrast ve floresan görüntü nükleer Hoechst bir leke elde. , Floresan görüntüleri çekirdeğin merkez düzlemine odaklanması gerektiğini, faz kontrast görüntü, hücre anahat ve silikon membran odaklanmak gerekir.
- 5 ila 15 hücre görüntüleri aldıktan sonra, merkezi nokta geri hareket ettirin. Yavaş yavaş çanağı merkezinde aynı suş uygulama sonucunda gerginlik çanak ağırlığı uygulanır. Uygulanan maksimum substrat gerginlik dikey hizalama pimleri (rehberlik pin) yerleştirilen naylon ayırıcılar ile sınırlıdır.
- Silikon membran alt odaklanın ve tekrar referans nokta bulun. Itibarennokta, aynı hücrelerin yerini değiştirin ve tekrar ilk görüntüler odak uçakları yakından maç için çalışırken, faz kontrast ve tam baskı altında hücreleri ve çekirdekleri bir floresan görüntü elde. Bu süreç aktif şekillenmesi ve gergin substrat hücre adaptasyonu önlemek için 10 dakika geçmemelidir.
- Ilgili tüm görüntüleri elde edildikten sonra, mikroskop aşamasında başlangıç noktasına geri hareket ettirin. Dikkatlice çanak tutucu plakası ağırlık kaldırmak ve silikon membran rahatlamasını sağlamak. Gerekirse, başlangıç pozisyonuna gelene kadar yavaşça gerginlik çanak yukarı itin. Sonra, faz kontrast ve gerilme görüntüler için yukarıda açıklanan sonrası gerginlik hücreleri floresan görüntü kazanır.
Analiz
- Görüntüler ve hücrelerin çekirdekleri, floresan etiketli gerginlik uygulama öncesinde, esnasında ve sonrasında normalize nükleer gerginlik hesaplamak için analiz edilir. Laboratuvarımızda analizi için özel bir yazılı MATLAB komut dosyası kullanıyorsanız, ancak birkaç alternatif seçenekler mevcuttur. Analizi üç adımda yapılır.
- İlk olarak, uygulanan substrat gerginlik hesaplamak için, membran üzerinde bulunan 3 ila 6 kontrol noktalarının konumları ilgili önceden tam ve sonrası deformasyon görüntüler arasında elle eşleştirilir. MATLAB programı daha sonra uygulanan membran gerginlik öncesi gerginlik ve tam suşu görüntüler ve aynı zamanda öncesi gerginlik ve sonrası gerginlik görüntüler arasında kalan zorlanma arasındaki kontrol noktaları eşleşen pozisyonlar karşılaştırarak hesaplar. Aynı zamanda, kontrol noktaları, hasarlı veya ayrılmakta hücre (bkz. Şekil 1) tespit etmek için yardımcı olacak çift, görüntü kaydetmek için kullanılır.
- İkinci adımda ise, elle çekirdekleri nükleer boyut veya ilgili önceden tam ve sonrası deformasyon floresan görüntüler arasında intranükleer belirteçleri ile eşleşen her bir çekirdeği nükleer gerginlik hesaplar ayrı bir MATLAB programı kullanılarak seçilir. Farklı deneyler arasında uygulanan membran zorlanma küçük varyasyonları için hesap için, sonuç olarak her çekirdeği için hesaplanan uygulanan membran zorlanma kaynaklı nükleer gerginlik oranı olarak tanımlanan Normalize Nükleer Strain, ifade eder. MATLAB komut isteği üzerine Lammerding laboratuar mevcuttur.
- Son olarak, her bir çekirdek, ayırmak ya da zorlanma uygulaması (Şekil 1) sırasında zarar gören hücrelerin ölçümleri hariç onaylanmıştır.
2. Microneedle manipülasyon tahlil
Yemekleri, yapışkan hücreleri ve microneedles hazırlanması
- 37 Hank Tamponlu Tuz Saline fibronektin düşük konsantrasyonda (0.5ug/ml) (HBSS) ya da 2 saat süreyle herhangi bir uygun ekstraselüler matriks proteinleri ile 35 mm cam alt hücre kültürü yemekleri inkübe ° C. Yemekleri HBSS iki kez yıkayın ve bir sonraki adıma geçmeden önce çanak 2 ml besi ekleyin.
- Fare embriyonik fibroblastlar fibronektin kaplı cam alt yemekleri üzerine 7.5 x 10 4 hücre / ml 2 ml besi numaralı seribaşı% 0.05 tripsin ve numaralı seribaşı ile tripsinize. Gecede geri inkübatörde Yeri hücrelerinin. Gecede geri inkübatörde Yeri hücrelerinin. Bir hücre sayısı diğer hücre türleri için tek yapışık olmayan konfluent hücreleri elde etmek için optimize etmeniz gerektiğini.
- Microneedles borosilikat camdan yapılmış, ticari bir pipet çektirmesi (örneğin, Sutter Instrument Company) ile yaklaşık 1 ila 3 mm çapları ucuna çekin.
Microneedle manipülasyon deney
- Ertesi gün, MitoTracker hücreler inkübasyon mitokondriyal leke (600 mcM; Invitrogen) ve Hoechst 33.342 nükleer leke (1 mcg / ml), 30 dakika 37 ° C inkübatör büyüme ortamına eklenir.
- Oda sıcaklığında 5 dakika HBSS hücreler bir kez yıkayın ve sonra görüntüleme için hücreler fenol-kırmızı besi ekleyin.
- Faz kontrast hücre iskeletinin takılı microneedle olmadan tek bir hücrenin tek bir görüntü elde mitokondriyal Hoechst 33.342 leke ve bir floresan görüntü bir floresan görüntü 60x objektif (0.70 NA, Plan-Achromat), ters bir leke , bir dijital şarj çiftli aygıt kamera ile mikroskop.
- Mikromanipülatör (örneğin, InjectMan NI 2, Eppendorf), bir hücre nükleer çevre uzakta sabit bir mesafe (genellikle 5 mikron) sitoplazma içine dikkatlice microneedle eklemek ve bir faz kontrast görüntü, Hoechst 33.342 floresan görüntü almak leke ve leke mitokondriyal bir floresan görüntü. Bu uygulama için, tutarlı mikromanipülasyon prosedürleri elde etmek için, örneğin, bir bilgisayar aracılığıyla Windows Hyperterminal, mikromanipülatör kontrol etmek için yardımcı olur.
- Eş zamanlı olarak floresan, faz kontrast görüntüler her 10 toplarken microneedle, belirli bir mesafe 1 mm / sn hücre çevreye doğru hareket ettirin (genellikle 10 veya 20 mikron)saniye. Microneedle hücre çevre doğru belirli bir mesafe için hareket ediyor. Microneedle hücre çevre doğru belirli bir mesafe hareket olarak seçilen parametreler ile, bu manipülasyon işlemi sırasında 2-3 kare karşılık gelir.
- Son microneedle hücre iskeletinin kaldırıldıktan sonra ek görüntüler elde.
Analiz
- Deplasman haritalar, çekirdek ve sitoplazma izleme floresan etiketli özelliklere dayalı özel bir yazılı MATLAB komut dosyası kullanılarak hesaplanır. (MATLAB komut dosyası istek üzerine Lammerding laboratuar temin edilebilir). Bu program, bir sonraki görüntü kareleri küçük görüntü bölgelerde (yaklaşık 10 mm x 10 mm boyut ve arayla 5 mikron) arasında normalize çapraz korelasyon algoritması kullanır. Her bölge merkezi için, deplasman x-ve y-yönünde özgün konumu ve yeni tanımlanan bir pozisyon arasındaki değişim olarak hesaplanır ve bir öteleme vektörü olarak gösterilir ve aynı zamanda sayısal değerler olarak saklanır. Displacement haritaları, önceden tanımlanmış bölgeler içinde ortalama değiştirmeler hesaplanır. Hoechst 33.342 sinyale karşılık gelen floresan kanal nükleer değiştirmeler hesaplanır sitoskeletal deplasmanları, floresan sitoskeletal belirteçleri (örneğin, MitoTracker mitokondriyal leke) için kanal dayandığını unutmayın. Bizim uygulama için, aşağıdaki bölgeler rutin incelemek; gerginlik uygulama yeri doğru çekirdek içinde bir bölge (ii) nükleer gerginlik; (i) (iii) nükleer gerginlik uygulama sitesi, yani microneedle ekleme sitesi sitoskeletal gerginlik uygulama yeri uzak bir nükleer bölgede zorlanma ve (iv) sitoskeletal gerginlik sitoplazmik çekirdeği çapında bir bölgede. Buna ek olarak, bir de doğrudan faz kontrast veya Hoechst 33.342 floresan görüntü dizileri nükleer uzama ölçebilirsiniz. Bu durumda nükleer gerginlik, nükleer uzama (ΔL = L - L 0) bölünmesi ile hesaplanır uygulanan L, gerilme uygulama ve L 0 sonunda çekirdeğin son uzunluğu başlangıç uzunluğu, L 0 çekirdeğin başlangıç uzunluğu. Nucleo-iskelet sağlam bir kaplin ile hücre çekirdeği gerilim uygulama yeri doğru uzayacaktır. Buna karşılık, Nucleo-iskelet kaplin, yani bozulur hücreleri, kuvvet iskeleti ve çekirdeği arasında daha verimli bir şekilde iletilir, çekirdek gerginlik uygulama sitenin yönde önemli ölçüde daha az uzamasına bekleniyor. Böylece, çekirdek ve hücre iskeletinin arasında (kısmi) uncoupling anlamına sitoskeletal gerginlik uygulaması yanıt nükleer deformasyonlar azaldı.
3. Temsilcisi sonuçları:
Yüzey gerilme uygulama
Biz sırasında, önce görüntüleri elde ve A / C eksikliği heterozigot ve homozigot Lamin fare embriyonik fibroblastlar gerilme uygulama sonrası (Lmna + / - ve Lmna - / -) daha sonra, wild-tip (Lmna + / +) fareler ve her hücre için normalize nükleer gerginlik hesaplanır. Analizinden sonra, çekirdekleri doğrulanır ve hücrelerin hasar görmesine ya da gerginlik başvuru sırasında geri çekme analiz dışında tutulmuştur. Şekil 1B analiz dışında olmalıdır hücreleri gösteriyor ise Şekil 1A, geçerli üç hücre çekirdekleri gösteriyor. Normalize nükleer gerginlik verileri en az üç bağımsız deneyler (her biri ~ 5-10 çekirdekleri ölçümleri içeren) toplanmış ve istatistiksel analizi ile diğer hücre ya da tedavi grupları ile karşılaştırılmıştır. Artan normalize nükleer gerginlik azalır nükleer sertlik, A / C (Şekil 2) Lamin çekirdek zarı proteinleri azalmış ekspresyonu ile hücrelerde görüldüğü gibi gösterir.
Microneedle manipülasyon tahlil
Microneedle manipülasyon tahlil için, lokalize sitoskeletal gerginlik uygulama sırasında nükleer ve iskelet değiştirmeler görüntülenmiş. Hasar görmüş ya da müstakil hale Hücreler analize dahil. Analizi için, kuvvet uygulama sitesi tek, yapışık hücrelere karşı nükleer ve iskelet hareketleri büyüklüğünü ölçer. Örneğin, Şekil 3, mitokondriyal (hücre iskeleti için işaretleyici) deplasmanları sitoskeletal gerginlik öncesi ve sonrası takip ve sonra vektör olarak değiştirmeler arsa. Her vektör özgün konumu ve yeni tanımlanan pozisyonu arasında vardiya olarak hesaplanan deplasman temsil eder. Görüntü yoğunluğu düşük ya da yetersiz doku (örneğin, hücre dışına bölgeler) Bölgeler analiz dışında tutulmuştur. Iskelet ve nükleer değiştirmeler sonra artan gerginlik uygulama sitesinden mesafeler (Şekil 4, renkli bo ilgili alanlarda belirli alanlarda sayısaliçerlek olarak XES). Sağlam Nucleo sitoskeletal kaplin ile fare embriyonik fibroblastlar, güçleri yavaş yavaş gerilme uygulama sitesi (Şekil 4) dağıtmak başlatılan nükleer ve iskelet deformasyonları, tüm hücreleri aracılığıyla iletilir. Buna karşılık, rahatsız Nucleo-iskelet kaplin (veya değiştirilmiş sitoskeletal kuruluş) ile fibroblastlar, Şekil 4'te gösterildiği gibi uygulama alanının yakınında lokalize değiştirmeler ve daha uzağa sadece küçük indüklenen deformasyonlar ekran. Microneedle ekleme sitesi (turuncu kutu) Karşılaştırılabilir sitoskeletal gerginlik uygulaması her iki kontrol fibroblastlar (mCherry tek başına) ve kesintiye Nucleo sitoskeletal kaplin (DN Kash) ile fibroblastlar görülmektedir. Ancak, diğer bölgelerde başlatılan nükleer ve sitoskeletal değiştirmeler (mavi, sarı ve kırmızı kutuları) kontrolü hücreleri (mCherry tek başına) (Şekil 4) daha kesintiye Nucleo-hücre iskeletinin kaplin (DN Kash) ile fibroblastlar anlamlı olarak daha küçüktü. Böylece, gerilme uygulama yeri uzak iskelet ve nükleer değiştirmeler azalma, hücre iskeleti ve çekirdek arasındaki kuvvet aktarımı rahatsız gösterir.
Da önemlisi, biz de, GFP veya mCherry aktin ve GFP-vimentin ile transfekte ve floresan Mitotracker Yeşil veya Kırmızı etiketli fare embriyonik fibroblastlar üzerinde microneedle manipülasyon yaparak, mitokondri uygun sitoskeletal işaretleyici olduğunu onaylamıştır. Sitoskeletal deplasman haritalar mitokondri ve aktin ve vimentin hücre iskeletinin floresan sinyal bağımsız olarak hesaplandı. Ortalama mutlak deplasman, gerilme uygulama yeri uzak artan mesafelerde, dört ayrı sitoskeletal bölge için hesaplanmıştır. Mitokondri ve aktin ve vimentin, elde edilen ölçümler arasındaki lineer regresyon eğim ve R-kare değerleri hesaplandı. Aktin için eğim 0.99 ve R 2 değeri 0,986; vimentin, eğim 1.04 ve R2 değeri mitokondriyal değiştirmeler iskelet deformasyonları için güvenilir bir göstergesi olarak hizmet ettiğini teyit 0,971.

Şekil 1. Fare embriyonik fibroblastlar (MEFS) Yüzey gerilme uygulama silikon membranı iki farklı alanda yayılmış Fare embriyonik fibroblastlar% 20 tek eksenli gerilme uygulama sırasında ve sonrasında, önce faz kontrast ve floresan mikroskobu ile görüntülenmiş. (A) Örnek gerginlik uygulama, herhangi bir hasar ya da dekolmanı ve gerginlik uygulama sırasında kısmen müstakil / geri çekme hücreleri (B) örneği olmadan hayatta hücrelerin geçerli çekirdekleri ile başarılı bir deney; tasvir hücreleri elde edilen sonuçlar (B) hariç. analiz. Sağ tarafında hücre suşu uygulama sırasında kısmen ayırır ve geri çekilmeler (B), sol tarafında hücre, iskelet hasarı ve nükleer çöküşü (ok) belirtileri gösterir. Bu aşırı zorlanma uygulamasının bir göstergesi olabilir. Daha iyi bir karşılaştırma için, (A) ve (B) gerilmemiş hücre zarının bir sınır kırmızı özetlenen ve gerginlik uygulama sırasında ve sonrasında aynı hücre üzerine bindirilmiş. (A) gerilmemiş çekirdeğin sınır yeşil özetlenen ve gerginlik uygulama sırasında ve sonrasında aynı çekirdeği üzerine bindirilmiş.

Şekil 2. Farklı MEF hücre hatları bir panel normalize nükleer gerilme analizi Lmna MEFS - / - ve Lmna + / - genetik arka plan ektopik ya boş bir vektör ya da yabani tip Lamin A incelendi ifade. Tarafından yansıtılan yabani tip littermates (Lmna + / +), Lamin kaybı MEFS kıyasla tamamen yabani tip Lamin A yeniden yerleştirilmesi tarafından restore edilebilir azalmış nükleer sertliği A / C ifadesi sonuçları, özellikle nükleer sertliği azaltılmış normalize nükleer gerginlik artan değerler. Hata çubukları standart hataları temsil eder.

Şekil 3. Intrasellüler kuvvet aktarımı ölçmek için Microneedle manipülasyon tahlil Faz kontrast (A, B) ve floresan (C, D) nükleer leke (mavi) etiketli bir fibroblast görüntüleri ve mitokondriyal leke (yeşil) MitoTracker. Microneedle çekirdeği (A ve C) belirli bir mesafe hücre iskeletinin içine yerleştirilir ve daha sonra hücre çevre (B, D) doğru taşındı. Iskelet ve nükleer değiştirmeler yazılmış özel bir çapraz korelasyon algoritması kullanılarak izleme floresan etiketli çekirdek ve mitokondri tarafından ölçüldü. (E) floresan görüntü serisi hesaplanan nihai sitoskeletal Displacement map (yeşil) deformasyonlar, ok uzunluğu, daha iyi güvenlik ve geniş için 2x tarafından büyütülmüş.lity. Ölçek barlar, 10 mm.

Şekil 4. Microneedle manipülasyon sırasında hücre içi kuvvet aktarımı Analizi renkli kutulara ilgili alanlarda (A İçerlek) olarak ölçülür, microneedle manipülasyon sırasında iskelet ve nükleer değiştirmeler İndüklenmiş. Turuncu bir kutu gerginlik uygulama sitesidir. Indüklenen hücre iskeletinin (turuncu kutu), nükleer ve iskelet değiştirmeler (mavi, sarı ve kırmızı kutuları) benzer bir gerginlik uygulama rağmen kesintiye Nucleo sitoskeletal kaplin (DN Kash) kontrole göre (fare embriyonik fibroblastlar anlamlı olarak daha küçüktü mCherry tek başına) hücreleri.