Yöntem makalesi

Brezilya'da Saha Sürümleri için Genetiği Değiştirilmiş Aedes aegypti'nin Seri Üretimi

26.9K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/3579

⸱

4 Ocak 2014

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Oxitec Ltd, 2Departamento de Parasitologia, Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo, 3Departamento de Epidemiologia, Universidade de São Paulo, 4Moscamed Brasil, 5Deptartment of Zoology, University of Oxford, 6Instituto Nacional de Ciência e Tecnologia em Entomologia Molecular (INCT-EM)

Bu makalede

Özet

RIDL® (Baskın Ölümcül Taşıyan Böceklerin Salınımı) sistemini kullanarak Aedes aegypti'nin popülasyon baskısını elde etmek için çok sayıda erkek sivrisinek salınmalıdır. Bu, maksimum sayıda yüksek kaliteli erkek sivrisinek elde etmek için güvenilir sistemler sağlamak için kitlesel yetiştirme tekniklerinin ve teknolojisinin kullanılmasını gerektirir.

Özet

Sivrisineklere karşı savaşı kazanmaya çalışmak için yeni teknikler ve yöntemler aranıyor. Moleküler tekniklerdeki son gelişmeler, Steril Böcek Tekniği (SIT)1-3etrafında yeni ve yenilikçi sivrisinek kontrol yöntemlerinin geliştirilmesine yol açmıştır. RIDL (Baskın Ölümcül Taşıyan Böceklerin Salınımı)4olarak bilinen bir kontrol yöntemi SIT'a dayanır, ancak radyasyon sterilizasyonu ihtiyacını gidermek için genetik yöntemler kullanır5-8. Ae. aegypti'nin bir RIDL suşu Grand Cayman9,10'dasahada başarıyla test edildi; daha fazla saha kullanımı dünyanın diğer ülkelerinde planlanmış veya devam etmektedir.

Böceklerin kitlesel olarak yetiştirilmeleri birkaç böcek türünde ve haftada milyarlarca seviyeye kurulmuştur. Bununla birlikte, sivrisineklerde, yetiştirme genellikle çok daha küçük ölçekte gerçekleştirilir ve en büyük ölçekli yetiştirme 1970'lerde ve 80'lerde gerçekleştirilir. Bir RIDL programı için, ısırdıkları ve hastalığı bulaştırdığı kadar az dişinin serbest bırakılması arzu edilir. Bir toplu yetiştirme programında, serbest bırakılacak erkekleri üretmek için birkaç aşama vardır: yumurta üretimi, yavruya kadar yumurta yetiştirmek ve daha sonra erkekleri serbest bırakmadan önce kadınlardan sıralamak. Bu erkekler daha sonra pupa veya yetişkinler olarak yayınlanan bir RIDL kontrol programı için kullanılır11,12.

RIDL kullanarak bir sivrisinek popülasyonu bastırmak için çok sayıda yüksek kaliteli erkek yetişkinin yetiştirilmesi gerekir13,14. Aşağıda, Ae. aegypti 8'inbir RIDL suşu olan OX513A'nın toplu yetiştirme yöntemleri açıklanmaktadır ve bir kontrol programı için yumurta üretimi ve toplu yetiştirme RIDL erkeklerinin üretimi için gerekli teknikleri kapsar.

Giriş

Sivrisinekler insanlarda bir dizi hastalığa neden olabilecek birçok patojeni iletir ve bu sivrisinekleri kontrol etmek yüzyıllardır devam eden bir savaş olmuştur. Kimyasal ve biyolojik yöntemlere dayalı böcekleri kontrol etme stratejileri bazı önemli başarılar elde etmiştir, ancak çoğu durumda kontrol uzun vadede sürdürülebilir olmamıştır. Örneğin, Brezilya 50'lerde Ae. aegypti'nin yok edilmesini sağladı, ancak sivrisinek son 40-50 yılda yeniden istila edildi. Bu, insektisit direnci, çevresel hasar, zayıf kontrol programı uygulaması15-20ve yeterli izleme veya yanıt olmadan hızlı yeniden istila dahil olmak üzere birçok nedene bağlanabilir.

Sivrisineklere karşı bu savaşı kazanmaya çalışmak için yeni teknikler ve yöntemler aranıyor.  Moleküler tekniklerdeki son gelişmeler, Steril Böcek Tekniği (SIT)1-3etrafında yeni ve yenilikçi sivrisinek kontrol yöntemlerinin geliştirilmesine yol açmıştır. RIDL (Dominant Lethal taşıyan Böceklerin Salınımı)4 olarak bilinen bir kontrol yöntemi SIT'a dayanır, ancak radyasyon sterilizasyon ihtiyacını gidermek için genetik yöntemler kullanır. RIDL suşları, Ae. aegypti 5-8, Ae. aegypti'nin ridl suşu Dahil olmak üzere çeşitlihaşere türleri için inşa edilmiştir. daha fazla saha kullanımı dünyanın diğer ülkelerinde planlanmış veya devam etmektedir.  RIDL kullanarak sivrisinek popülasyonlarını bastırmak, çok sayıda yüksek kaliteli erkek yetişkinin yetiştirilmesini gerektirecektir3,14.

Bir SIT programı için sadece erkeklerin serbest bırakılması arzu edilir; dişi sivrisinekler ısırır ve hastalığı iletir. Ek olarak, serbest bırakılan steril erkekler, program etkinliğini azaltan serbest bırakılan kadınlar tarafından 'dikkatleri dağılabilir'. Sadece erkeklere özel salınım, ışınlanmış Akdeniz meyve sinekleri ile yapılan büyük saha deneylerinde karışık cinsiyet salınımından3-5kat daha etkili olduğu gösterilmiştir 21 .

Bir RIDL kitle yetiştirme programında, erkekleri serbest bırakmak için üretmenin birkaç aşaması vardır.  Birincisi, salınım üretimi için gerekli yumurtaları üretmektir (Şekil 1). Bir sonraki aşama, larvaları pupalardan ve erkek pupaları dişi pupalardan ayırarak yumurtaları pupalara veya yetişkinlere geri getirmektir. Erkeklerin kadınlardan büyük ölçekli ayrılması, kütle sıralamaya uygun belirli bir yaşam aşamasında cinsiyetler arasında bir fark gerektirir22. Ae. aegypti'de (ve diğer sivrisinek türlerinde), cinsiyet ayırma teknikleri için yararlanılabilen erkek ve dişi pupalar arasında önemli bir boyut farkı vardır. Sıralanmış RIDL erkekleri daha sonra bir kontrol programında pupa veya yetişkinler olarak serbest bırakılır11,12.

Aşağıda, Ae'nin RIDL suşu olan OX513A'nın kitlesel olarak yetiştirilmesi için yöntemler açıklanmaktadır. Aegypti, serbest bırakıl. Açıklanan yöntemler, bir kontrol programı için yumurta ve RIDL erkeklerinin üretimi için gerekli teknikleri kapsamaktadır.

Protokol

Böcek Gereksinimleri

1. Genel Bakış

  1. Kütle yetiştirme, her biri kütle yetiştirme ünitesinin ayrı bir alanında gerçekleştirilen birkaç aşamaya sahiptir. Şekil 1, yetiştirmenin ana aşamasını ve toplu yetiştirme tesisinde nerede meydana geldiklerini göstermektedir.

2. Böcekçi için Biyogüvenlik Hususları

  1. Proje, Brezilya São Paulo Üniversitesi'nden hayvan etiği komitesi tarafından onaylandı ve gerekli tüm izinler ve onaylar alındı.
  2. RIDL sistemi koşullu öldürücülük kullanır; bir diyet takviyesi (tetrasiklin), böceklerin kitlesel olarak yetiştirilmesine izin vererek RIDL sisteminin ifadesini önler; tetrasiklin olmadan sivrisinekler ölür. Tetrasiklin, vahşi doğada Ae. aegypti üreme alanlarında bulunmaz, bu nedenle kaçaklardan üretilen herhangi bir yavru hayatta kalamaz.  Bu, diğer yöntemlerle(yani radyasyon) sterilize edilen vahşi tip (WT) böcekleri kullanma konusunda ekstra bir güvenlik seviyesi ekler.
  3. Böcek ilacında çift kapılı giriş, "Sadece Yetkili Personel" işaretleri ve böcek ekranları kullanın. Koloninin WT böcekleri ile kirlenmesini önlemek ve böcek ilacının içinden kaçışları önlemeye yardımcı olmak için herhangi bir pencere kapatılmalıdır.
  4. Yerel yönetmeliklerin ve yetkililerin belirli ek veya alternatif gereksinimleri olabilir. Erken bir aşamada bilgi / rehberlik için ilgili makamlarla iletişime geçin ve RIDL suşunu bir böcek ilacında kurmadan önce gerekli tüm izinleri ve onayları güvence altına alın.
  5. Kütle yetiştirme insektisiti sadece RIDL yetiştirme için kullanılmalıdır. Başka hiçbir suş veya böcek bulunmamalıdır. Bu, RIDL suşu ve kirlenmesinin fitness ve hayatta kalmayı etkileyebilecek patojenlerle kirlenmesini önlemek, serbest bırakılan erkeklerin verimliliğini ve etkinliğini azaltmaktır.

3. Böcek Tasarımı

  1. Şekil 2, Brasil'deki Biofábrica Moscamed'de kullanılan böcek ilacının bir planını göstermektedir.
  2. Tüm odaların sıcaklığı 26 °C ± 2) idi ve yaklaşık% 70-80 bağıl nem ve floresan ışık şeritleri kullanılarak 12:12 saat ışık: karanlık döngü.
  3. Bu şema belirli alan gereksinimlerine göre değiştirilebilir, örneğin sürümün ölçeği genel boyutu belirleyecektir. Bununla birlikte, yumurta üretimi, yetiştirme ve ayıklama, Kalite Kontrol (QC) ve serbest bırakmalar dört ayrı alana ayrılmalıdır: Yumurta Üretim Kolonisi, Serbest Bırakma Üretimi, QC ve Serbest Bırakma için Yetişkin Depolama.
  4. Yumurta Üretim Kolonisi odası (yaklaşık 20 m2)salınım üretimi için yumurta üretmek için kullanılır.
  5. Kalite Kontrol alanı, tarama oranı, pupa sayıları, pupa boyutu ve kadınların sıralanma ve çıkarılmasının etkinliğinin ölçülmesi de dahil olmak üzere PROSEDÜRLERI ve RIDL hattının uygunluğunu kontrol etmek için deneylerin yapıldığı yerdir. WT kontaminasyonu için testler, ölümcüllüğü ölçen ofset tahlilleri kullanılarak floresan belirteci ve fenotip bunların varlığını kontrol ederek de yapılır.
  6. Serbest Bırakma Oluşturma odası (yaklaşık 36 m2),tepsiler ve larva ve pupaların sıraya dizilimi için yeterli alan gerektirir. Tepsiler amaca uygun alüminyum raflarda tutulur. Yetiştirme ve ayıklama için geniş bir çalışma alanı ve lavabo, tepsilerin ve kafeslerin yıkanması için ise başka bir büyük lavabo gereklidir. Canlı sivrisineklerin kanalizasyondan kaçışını azaltmak için lavabolardan atık su çıkışına bir filtre yakalama tuzağı dahil edilmiştir.
  7. Tepsiler için kullanılan tüm su, gelişimin herhangi bir aşamasında böceklerin kaçmasını önleyen bir ağ içeren bir bölmeye sahip bir drenajdan atılır.
  8. Yetişkinler serbest bırakılmadan önce olgunlaşırken serbest bırakma cihazlarını tutmak için raf içeren serbest bırakma için yetişkinlerin depolanmasının bir alanı gereklidir (Serbest Bırakma için Yetişkin Depolama, Şekil 2).

Toplu Yetiştirme RIDL için Üretim Yöntemleri:

Yumurta Üretim Kolonisi, yetişkinleri üretmek için Salınım Üretimi 'nde (Şekil 1) kullanılan yumurtaları üretir. İki yetiştirme yönteminde birçok benzerlik vardır, aynı zamanda bazı belirgin farklılıklar vardır. Her iki prosedür için de aynı olan yetiştirme işlemleri sadece Yumurta Üretim Kolonisi bölümünde açıklanmıştır.

Yumurta Üretim Kolonisi

4. Larva Üretimi

Yumurta Üretim Kolonisi, Salınım Üretimi için homozigous OX513A RIDL yumurta8 üretir. Yüksek kalite kontrolü, sağlanan yumurtaların canlılığını, zindeliğini ve gerinim bütünlüğünü sağlar.

  1. Kuluçka için uyaran, düşük çözünmüş oksijen seviyesine sahip suya batırılmasıdır. Sudaki oksijen seviyesini azaltmak için suyu kaynayana kadar ısıtın ve hemen 400 ml'yi 500 ml cam kavanozlara (74 mm açıklık çevresi) yerleştirin, kapağı güvenli bir şekilde sabitleyin ve soğuması için birkaç saat oda sıcaklığında bırakın.
  2. Bir kavanoz kaynamış suya 1 g yumurta koyun, yeniden alın ve bir saat bekleyin. İçeriği 2 L su ile bir tepsiye aktarın ve böcek koşulları altında gece boyunca bırakın.
  3. Yumurtadan çıkan larvaları bilinen bir su hacmine yerleştirin ve aliquots almak için yeterli zaman için manyetik bir karıştırıcı ve pire kullanarak karıştırın; kuvvetlice veya uzun süre karıştırmak larvalara zarar verir ve minimumda tutulmalıdır. Larvaları taramak için kullanılan standart hacim 1 L'dir, ancak 300'den fazla larva / ml'den fazla yoğunlukların sayılması zordur ve zarar verici olabilir. Bu nedenle yaklaşık 300.000 yumurta / L'den fazla su yumurtadan çıkmayın.
  4. Üç adet 1 ml aliquot alarak ve fazla suyu emmek için emici bir süngerin üzerine 1 cm karelik bir ızgara ile emici bir kağıda yerleştirerek tarama oranını belirleyin.  Yumurtadan çıkmış ve taranmamış yumurtanın sayısını üç kareden, yumurtadan çıkmış bir yumurtanın eksik kapağını arayarak sayın. %80-90 civarında bir tarama oranı beklenmektedir.
  5. Her biri 1 ml'lik dört aliquot alın ve dört siyah ağırlık teknesine yerleştirin (larvalar beyazdır ve bu nedenle siyah bir arka plana karşı daha kolay görülebilir) ve gözle bulunan canlı larva sayısını sayın; sayaç kullanılması önerilir. Ml başına ortalama larva sayısı daha sonra tepsi başına istenen sayıda larva elde etmek için her tepsiye eklenecek su hacmini hesaplamak için kullanılır.
  6. Larvaların suşlar ve türler arasında yetiştirilebileceği yoğunlukta büyük farklılıklar olabilir. RIDL yetişkin erkek boyutunu vahşi tip erkeklerle karşılaştırmak da arzu edilir; ideal olarak, vahşi erkeklerle başarılı bir şekilde rekabet edebilecek daha büyük boyutlu RIDL erkeklerine benzer olmak istersiniz. Bu nedenle, her RIDL suşu için larvaların ideal yoğunluğunun belirlenmesi gerekir ve yetiştirme ve üretim ölçeği için alan kısıtlamalarına karşı bir takastır. 0.1-2.5 larva / ml arasında değişen yoğunluklar, üretim çıktısı ve kalitesinin iyi bir kombinasyonu olduğunu gördük; ayrıca Medici tarafından tartışıldı23.
  7. Larvaları tepsilere ekleyin. Tesisimizde üretim için larva yoğunluğunu sağlamak için yaklaşık 53 cm x 37 cm x 8 cm (L x W x H) ve gerekli miktarda su içeren tepsiler kullanıyoruz.
  8. Gerekli 30 μg/ ml'lik son konsantrasyonu elde etmek için tepsilere 1:100 seyreltmede bir tetrasiklin (suda 3 mg / ml) stok çözeltisi ekleyin.
  9. Larvaları, ince bir toz haline getirilmiş pul balık yemi(www.sera.de)ile besleyin. Tablo 1, larva başına günlük gıda mg'ında tipik beslenme rejimini gösterir. Larvaları yukarıda açıklanan böcek koşulları altında uygun sıralama gününe kadar besleyin.

5. Larvaları Pupa ve Erkek / Dişi Pupalardan Sıralama

  1. Larvaları pupalardan ayırarak kuluçkadan 8 gün sonra pupalardan sıralayın. Sonra erkekler için pupaları seksle sıralayın. Plaka ayırıcısı 24,25 olarak bilinen bir cihaz larvaları erkek pupalardan ve dişi pupalardan sıralayabilir. Şekil 3, larvaları erkekten ve dişi pupalardan ayırmak için bu plaka ayırıcının kullanımını göstermektedir.
  2. Altta bir ağ olan bir ölçüm kaşığı kullanarak, 500 pupa veya daha fazla ile kalibre edin ve kafesler kurmak ve üretilen toplam erkek ve dişi pupa miktarını tahmin etmek için kullanın.
  3. Sıralamanın ilk gününde (8. gün) pupaların çoğu erkektir, bu nedenle sıralanmış larvaları bir tepsiye geri yerleştirin ve pupaların çoğunun dişi olduğu ertesi güne kadar arka tarafa yerleştirin (Şekil 4).
  4. Sıralama işlemini her gün 2.1-2.3 adımlarında açıklandığı gibi, tüm larvalar yavrulanana kadar veya bir çalışma haftasının sonuna kadar tekrarlayın.
  5. Bir kafese 1.000 erkek pupa (ölçü kaşığını kullanarak) yerleştirin ve 9. günde aynı kafese 3.000 dişi pupa ekleyin (örgü üst ve ağlı erişim deliği ile uyarlanmış 30 cm yüksekliğinde ve 30 cm çapında PVC borular kullanıyoruz, ancak BugDorm'dan 30 cm x 30 cm plastik kafesler de mevcuttur).
  6. Yetişkinlerin en az 2 gün çiftleşmelerine izin verin ve onlara sakkaroz çözeltisi sağlayın (%10) kan beslemeden önce ıslak pamuklu reklam libitumunda. Haftada iki kan yemi ile iki hafta (~ iki gonotrofik döngü) yumurta toplayın. Bu, 3.000 dişilik bir kafesten (ortalama 48 yumurta / dişi) ortalama 143.000 yumurta verir. Haftada 4 milyon yumurta üretimi için her hafta yaklaşık 28 kafes kurulması gerekir.

6. Kan Besleme

  1. Alüminyum plaka besleme sistemi kafeslere haftada iki kez kan sağlar. Parafilmli bir alüminyum plakanın (10 cm x 10 cm x 3 mm) yanında bir kan cebi oluşturulur (Şekil 5). Beslenmeyi teşvik etmek için, plaka besleyicinin üzerine ısıtılmış bir fasulye torbası yerleştirilerek kan ısıtılır. Fasulye torbası, bir mikrodalga fırında yaklaşık 10 saniye ısıtılan bir bez torbada yaklaşık 250 g buğday tanelerinden oluşuyordu. Beslenme için kullandığımız kan yerel bir sitoirden; Bu hayvanlar (özellikle keçiler ve koyunlar) insan tüketimi için olduğu için patojenlerin varlığını önlemek için test edilirler.
  2. Kan beslemeden üç gün sonra, dişilerin yumurtalarını bırakmaları için bir yumurtlama alanı sağlanır. Yumurtlama bölgesi, içini kaplayan su ve filtre kağıdı ile yaklaşık 1/4'e doldurulmuş yuvarlak bir plastik kaptır. İki gün sonra yumurtlama yeri kaldırılır. Maksimum yumurta üretimi için, filtre kağıdının kabın içindeki mevcut yüzeyin tamamını kapladığından ve ıslak kaldığından emin olun.
  3. Yumurta kağıdını çıkarın ve böcek koşullarında kurumak için emici kağıda yerleştirin; yumurtalar yüksek nemde (%70'in üzerinde) bir şartlanma süresi gerektirir en az 48 saat sonra döşenir. Yumurtalar, nem yüksek tutulduğu sürece, kuluçka oranında minimum düşüşle3aya kadar böcek ilacı içinde bırakılabilir.
  4. Yumurta üretim kolonisinin, serbest bırakma programı için haftalık olarak gerekli olan yumurta sayısını sağlamak için yeterli boyutta olması gerekir. Yukarıda açıklanan tesis, haftada 28 kafes ile yaklaşık 4 milyon yumurta üretebilir. Salınım Üretimi ve Yumurta Üretim Kolonisi için en az 4 haftalık yumurtayı garanti edecek kadar yumurtanın saklanması önerilir.

Sürüm Oluşturma

7. Larva Üretimi

Salınım üretimi için tarama, yetiştirme ve sıralama işlemleri, Yumurta Üretim kolonisi için daha önce açıklanan yöntemle aynıdır. Bununla birlikte, üretim ölçeği çok daha büyüktür ve bu daha fazla tepsi ve daha fazla çaba gerektirir.

8. Larvaları, Erkek Pupaları ve Dişi Pupaları Sıralama

  1. Larvaların, erkek pupaların ve dişi pupaların sıraya dizilişleri Yumurta Üretimi için açıklanan yöntemle aynıdır.
  2. Erkek pupaları sıraladıktan sonra, serbest bırakılmadan önce kadın kontaminasyon olup olmadığını kontrol etmek önemlidir; % 1'den fazla kadın olmamalıdır. 500 pupadan üç aliquot alın (üç rastgele pupa ölçüm kaşığı) ve mevcut dişi pupa sayısını sayın. Dişiler genellikle erkeklerden daha büyük oldukları ve genital lob şeklindeki farklılıklardan tanımlanabilirler (Şekil 6)27. % 1'den fazla kadın varsa, tekrar başvurulmalı ve kontrol edilmelidir.
  3. Serbest bırakmak için sadece 8 ve 9. kalan larvaları ve pupaları otoklav. Brezilya'da, bu atık tıbbi atıklarla aynı şekilde ele alınmalıdır, ancak düzenlemeler diğer ülkelerde farklılık gösterebilir. Kalite kontrol, yetiştirme ve kontaminasyon risklerindeki farklılıklar, daha büyük sayılardan ve daha düşük kalite kontrolü nedeniyle Yumurta Üretim Kolonisi için Salınım Neslinden dişi pupa ve larvalar kullanmayın.

Serbest Bırakma için Yetişkin Depolama: Erkekleri serbest bırakılmadan önce ortaya çıkmak ve olgunlaşmak için serbest bırakma cihazlarına yerleştirin. Serbest bırakma cihazlarının ayrıntıları bu yöntemde ele alınmaz. Ancak kullandığımız serbest bırakma cihazlarının kapasitesi 1.000 erkek civarındadır. Sürüm yöntemi ayrıntıları (sürüm cihazı ve sürüm sistemi) bu yöntemde ele alınmaz.

Sonuçlar

Üretim için beklenen yavru sonuçları Şekil 4'te gösterilmiştir. Erkekler ilk önce yavrular, 8. günde zirve yapar ve dişiler kuluçkadan çıktıktan sonra 9. Erkekleri kadınlardan ayırmak için en iyi zamanı bilmek için bu yavru eğrisini ölçmek önemlidir.

6 aydan fazla erkek ve dişi pupaların tasnifinden elde edilen sonuçlar, kadın kontaminasyonunun ortalama% 0,02 olduğunu göstermektedir (Şekil 5; SEM = %0,004). Bu bulaşma oranı, bir aylık salınımlar (yaklaşık iki milyon erkek) üzerinde salınan sadece 400 kadını temsil eder. Haftalık mevcut yumurta üretimi 4 milyondur. Bunların 3,5 milyon'ı yumurta kolonisi ve üretimi için yumurtadan çıkar ve geri kalanı yedek için saklanır. Yumurtaların yaklaşık% 11'i yumurta üretim kolonisi için kullanılır ve geri kalanı serbest bırakılmak için kullanılır. Yumurta kuluçka oranı ortalama %87,3 (SEM = %0,5) ve L1 larvalarından erkek pupa verimi ortalama% 29,5 'tir (SEM = 1.2). Yaklaşık 571.000 erkek pupa üreten SalınımLı Nesil kolonisi için her hafta iki milyon larva yetiştirilmektedir (SEM = 14.000). Ortaya çıkma ve salınım sırasında pupa ve yetişkin mortalitesi ortalama% 5'tir ve haftada yaklaşık 543.000 (SEM = 13.000) yetişkin erkek sivrisinek salınmıştır. 4 milyon yumurta /haftalık mevcut üretimin, atık ve depolamadan kaynaklanan kaybı azaltmak için daha fazla optimizasyonla ~ 3 milyon / haftaya düşürülebileceği tahmin edilmektedir. Açıklanan üretim için toplamda 6 personele ihtiyaç vardır; dördü salınım üretimi üzerinde çalışıyor ve kalan ikisi yumurta kolonisinde.

Kalite Kontrol

Kalite kontrolü, yetişkinlerin kalitesini, yetiştirme verimliliğini, işçiliği ve maliyetleri korumak için gereklidir.

Transgene fenotip kontrolü

RIDL gen ekspresyonunun doğrulanması için iki kontrol gerçekleştirilir, birincisi floresan işaretleyicinin ifadesini kontrol etmek ve ikincisi tetrasiklin yokluğunda RIDL öldürücülük özelliğinin ifadesini kontrol etmek. Tüm larvalar floresan işaretleyiciyi ifade etmelidir. Floresan işaretleyicinin beklendiği gibi ifade olup olmadığını kontrol etmek için, 2.000 ilk başlangıç larvası, DsRed2 filtreli (Texas Red) leica MZFLIII stereomikroskop altında kontrol edilir. Tetrasiklin olmadan RIDL geni ifade edilir ve yetişkinlere% 3-4 sağkalım bekliyoruz8. Bunu kontrol etmek için, tetrasiklin içermeyen her serbest bırakma toplu işlemi için fazladan bir tepsi ayarlanır. Normal yetiştirme için tek fark, yiyeceklerin 6 günden itibaren 2/3 oranında azaltılmasıdır, çünkü ölü larvalara bağlı fazla yiyeceklerin birikmesi aşırı bakteri üremesine neden olabilir.

Yetiştirme kontrolü

Sürüm oluşturmadan dört tepsi, ayrı ayrı sıralanacak ve sayılmak üzere rastgele seçilir. Erkek ve dişi pupa sayısı her gün her tepsiden kaydedilir (Şekil 4). Beklenen erkek ve kadın sayısından herhangi bir sapma, üretimi ve / veya zindeliği etkileyebilecek ve sorunların kaynağını belirlemeye yardımcı olmak için yumurta kolonisi ile karşılaştırılabilecek potansiyel bir sorunu gösterir.

Pupa Ölçümleri

Pupa boyutunun yetişkin boyutu28ile ilişkili olduğu gösterilmiştir. Yetişkin boyutu için bir kalite kontrolü olarak sefalotoraks genişliği, Serbest Bırakma Neslinden itibaren her sıralama günü için en az 30 erkek pupa ile ölçülür; Yumurta Üretimi için Koloni dişi pupalar da ölçülür. Ortalama sefalotoraks genişliği serbest bırakılan erkekler için 1,05 mm (SEM 0,005), erkekler ve dişiler için sırasıyla Yumurta Üretimi, Kolonisi; Ae. albopictus kütle yetiştirme24için benzer sonuçlar elde edilmiştir.

figure-results-1
Şekil 1. Bir RIDL / SIT programında kullanılmak üzere kitlesel yetiştirme sivrisineklerinin aşamaları. Yumurta Üretim Kolonisi, salınım üretimine sağlanan yumurtaların kalitesini sağlamak için yüksek düzeyde kalite kontrolüne sahiptir.  Yumurtalar, erkeklerin dişilerden sıralandığı serbest bırakma kolonisinde pupalara yetiştirilir.  Erkek yetişkinler daha sonra RIDL kontrol programı için kullanılır.

figure-results-2
Şekil 2. Bir serbest bırakma programı için RIDL erkeklerinin üretimi için yetiştirme tesisinin şeması. Yüksek kaliteli yumurtalar yumurta üretim kolonisi odasında sürekli olarak üretilir ve daha sonra Serbest Bırakma Üretim odasında pupalara yetiştirilir. Larvalar ve pupalar daha sonra ayrılır ve pupalar erkekler için cinsiyet olarak sıralanır. Erkekler daha sonra serbest bırakma cihazlarına yerleştirilir ve yetişkin depolama ve serbest bırakma odasında serbest bırakılmak üzere yetişkinlere olgunlaşmalarına izin verilir. 

figure-results-3
Şekil 3. Larvaları, erkek pupaları ve dişi pupaları bir plaka ayırıcı kullanarak ayırmak26.  Plaka ayırıcı, bu üç farklı yaşam aşamasını sıralamak için larvalar, erkek pupalar ve dişi pupalar arasındaki boyut farkını kullanır; larvalar, dişi pupalardan daha küçük olan erkek pupalardan daha küçük olma eğilimindedir.  Cihaz iki cam plakadan oluşur; biri eğimli metal çerçeveye sabitlenir ve diğeri ilk plakanın üzerine oturur ve dört ayar vidası(A)kullanılarak ilkine göre hareket ettirilebilir.  Dört ayar vidası, dış plakanın arka plakaya bir açıyla ayarlanabilmesini sağlar, böylece plakalar arasında aşağı doğru sivrilen kama şeklinde bir boşluk oluşur.  Larvalar ve pupalar cam plakalar (B) arasına dökülür ve bir su hortumu (C)kullanılarak hafifçe yıkanır.  Plakanın açısını ayarlayarak larvalar, erkek pupalar ve dişi pupalar ayrılabilir (D).  Sürekli yıkama ve plaka açısının artırılması ile larvalar önce (bir elek içine), ardından erkek pupa ve son olarak dişi pupalara yıkanabilir. 

figure-results-4
Şekil 4. Kitle tarafından yetiştirilen RIDL Ae. aegyptiiçin yavru eğrileri .  Bu grafik, haftada ~135.000 pupa ile 23 haftalık gözlem sırasında kitlesel yetiştirilen RIDL erkek ve dişi pupalar için ortalama yüzde yavruyu göstermektedir.  Hata çubukları = standart ortalama hatası, n = 23. İlk koleksiyonda (8 gün) ortalama% 59 erkek ve% 30 dişi pupayı 5 gün boyunca tepsilerden kurtarılan toplam pupalardan kurtardık. 

figure-results-5
Şekil 5. Sıralanmış erkek pupaların ortalama kadın kontaminasyonu. Bu grafik, altı aylık bir süre boyunca yumurtadan çıktıktan sonra 8. 

figure-results-6
Şekil 6. Alüminyum plaka kan besleyici sistemi. Plaka (B) Parafilm (A) ile kaplanır ve bir cebe pipetlenmiş ve daha sonra mühürlenmiştir (D). Plaka bir kafese yerleştirilir ve üzerine ısıtılmış bir fasulye torbası (C) yerleştirilerek ısıtılır (E). 

figure-results-7
Şekil 7. Erkek ve dişi Ae. aegypti pupa ayırt edici. Ae. aegypti pupa, genital lob şeklindeki farklılıklarla güvenilir bir şekilde seks yapılabilir (küreklerin hemen altındaki pupal karın segmentlerinin sonunda). Ek olarak, erkekler de kadınlardan daha küçük olma eğilimindedir.   

figure-results-8
Tablo 1.  Ae. aegypti RIDL larvaları için genel beslenme rejimi (günde larva başına yiyecek mg). Gerekli gerçek yiyecek miktarını hesaplamak için tepsi başına toplam larva sayısı ile çarpın.

Tartışma

RIDL, sivrisinekleri kontrol etmek için etkili ve çevre açısından güvenli bir yöntemdir3,29-31. Teknik entegre bir haşere yönetim programı için geçerlidir ve larvicides, üreme alanı azaltma ve zina dahil olmak üzere en güncel kontrol yöntemleri bu teknoloji ile uyumludur. Bu yöntem, Ae'nin kontrolünde kullanılmak üzere haftada 570.000 RIDL erkek pupanın nasıl üretılacağını açıklar. Aegypti ve bilgimize göre bu, bu ölçekte transgenik sivrisinek üretiminin ilk açıklamasıdır. Bazı karşılaştırılabilir üretim sistemleri 1960'larda ve 70'lerde vahşi tip Ae. aegypti için geliştirilmiştir,ancak o zamandan beri bu ölçekte karşılaştırılabilir bir üretim olmamıştır. Brezilya'da Şubat 2011'den Şubat 2012'ye kadar yaklaşık 11 milyon erkek serbest bırakıldı. Belirli bir alanın kontrol edilmesi için gerekli olan erkek sayısı, vahşi popülasyonun büyüklüğü, serbest bırakılan erkeklerin dağılımı, serbest bırakıldıktan sonra erkeklerin hayatta kalma ve çiftleşme rekabet gücü ve çevre koşulları dahil olmak üzere bir dizi faktöre bağlıdır.  Önceki çalışmalar, RIDL'nin bir sivrisinek popülasyonu en az% 80 9 azaltabileceğinigöstermiştir.

Üretim ölçeği ve maliyet ile erkeklerin kalitesi için kütle yetiştirmeyi optimize etmek arasında bir dengeye ihtiyaç vardır. Örneğin, larva yoğunluğunu artırmak, gerekli alanı, işçiliği ve yavrulama süresini azaltarak üretim kapasitesini artırabilir32. Bununla birlikte, çok yüksek larva yoğunlukları, çiftleşme kapasitesi32,33azaltılmış daha küçük ve daha kısa ömürlü erkeklere neden olabilir. Bir SIT programı ile ilgili olarak erkeklerin kalitesi, sonuçta serbest bırakılan erkeklerin tarladaki kadınlarla çiftleşme yeteneği ile değerlendirilecektir. Vahşi muadillerine göre çiftleşme rekabet gücünü değerlendirmek için kapsamlı saha değerlendirmesi gereklidir9,10. Bu genellikle tam olarak hangi faktörlerin 'yüksek kaliteli' bir erkek sivrisinek yaptığını değerlendirmeyi pratik hale getirir. Bununla birlikte, büyük ölçekli kitlesel yetiştirmede tutarlı üretim ve kaliteyi (rutin olarak değerlendirilebilecek ölçüde) korumak çok önemlidir. Bu, potansiyel olarak önemli bir etkiye sahip olan küçük dalgalanmalarla tüm sürecin yüksek düzeyde uyanıklık ve standardizasyonunu gerektirir. L1 larvalarının aliquoting kritik bir adımdır ve bu noktayı göstermektedir. Doğru sayıda larvayı tepsilere aliquoting kaliteli üretim için gereklidir. Besleme rejimi, belirli sayıda larva için hassas bir şekilde uyarlanmıştır. Çok az / çok fazla larva, larvaların hayatta kalmasını, pupaların boyutunu ve yavrulama zamanını etkileyen aşırı / az beslenmeye neden olacaktır. Kitlesel yetiştirme sanatının bir sırrı varsa, üretim döngüsündeki birçok küçük adımın bu makalede açıklandığı gibi tutarlı, hassas ve yüksek düzeyde kalite kontrol ile yürütülmesini sağlamaktır.

Açıklamalar

Oxitec'e bağlı yazarlar Oxitec Ltd. Oxitec Ltd.'de istihdam ve/veya özkaynak ilgisine sahiptir ve Oxford Üniversitesi bu makalenin konusuyla ilgili fikri mülkiyete sahiptir.

Teşekkürler

Biofábrica Moscamed Brasil, Fundação de Amparo a Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) ve Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnologia'ya (CNPq) finansal destek için teşekkür ederiz.  Ayrıca aşağıdaki kişilere yardımları için teşekkür ederiz; Miriam dos Santos, Gildeane Silva, Gessilane dos Santos, Fabio Gonçalves, John Paul Oliveira, Luiza Garziera, José Carlos Valença.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar

Vipan Premium

Sera GmbH

190

Sera Vipan 3 Yüksek Kaliteli Artemia Yumurtaları Sera Vipan 3, akvaryum balıkları için en ideal canlı yemlerden biri olan Artemia salina'nın yüksek kaliteli yumurtalarıdır. Sera Vipan 3'ün Avantajları: · %100 saf Artemia salina yumurtalarıdır. · Çok yüksek çıkış oranına sahiptir. · Besin maddeleri açısından zengindir. · Tüm balık türleri için uygundur. · Tüm yaşam evreleri için idealdir. Besleme Talimatları: Artemia yumurtalarının kuluçka süreci için uygun bir tuzlu su çözeltisi hazırlanmalı ve uygun havalandırma sağlanmalıdır. Yumurtalar, kuluçka kabında belirli bir sıcaklıkta bekletilerek larva formuna getirilmiş ve ardından balıklara verilmelidir.

Tetrasiklin

Sigma Aldrich

T7660

http://www.sigmaaldrich.com/catalog/ProductDetail.do?D7=0&N5=ARAMA_BİRLEŞTİR_PNO|MARKA_ANAHTARI&N4=T7660|SIGMA&N25=0&QS=AÇIK&F=SPEC

Plaka ayırıcı

J.W. Hock

5412

**SANTRIFÜJ AYIRICI** **ÖZELLİKLER** Bu santrifüj ayırıcı, yüksek performanslı bir ayırma işlemi sağlamak üzere tasarlanmıştır. Cihaz, numunelerin etkili bir şekilde ayrılmasını sağlayan gelişmiş bir motor sistemi ve güvenlik mekanizmalarıyla donatılmıştır. **GÜVENLİK TALİMATLARI** Cihazı kullanmadan önce lütfen aşağıdaki güvenlik kurallarını dikkatle okuyun: 1. **Dengeli Yükleme:** Rotoru her zaman dengeli bir şekilde yükleyin. Karşılıklı tüplerin ağırlıklarının birbirine eşit olduğundan emin olun. Dengesiz yükleme, ciddi titreşimlere ve cihazın hasar görmesine neden olabilir. 2. **Kapak Güvenliği:** Cihaz çalışırken kapağı asla zorla açmaya çalışmayın. Kapak kilidinin tamamen açılmasını bekleyin. 3. **Tüp Seçimi:** Yalnızca yüksek hızlara dayanıklı, santrifüj için uygun tüpler kullanın. 4. **Bakım:** Herhangi bir arıza durumunda cihazı derhal kapatın ve yetkili servise başvurun. **KULLANIM TALİMATLARI** 1. **Hazırlık:** Cihazın düz ve stabil bir yüzeyde yerleştirildiğinden emin olun. 2. **Numunelerin Yerleştirilmesi:** Numuneleri tüplere aktarın ve tüpleri rotor içine simetrik olarak yerleştirin. Eğer tek bir numune santrifüj edilecekse, karşısına aynı hacimde su dolu bir denge tüpü yerleştirin. 3. **Kapağın Kapatılması:** Kapağı güvenli bir şekilde kapatın ve kilitlendiğinden emin olun. 4. **Parametrelerin Ayarlanması:** Kontrol panelini kullanarak istenen hız (RPM) ve süre değerlerini ayarlayın. 5. **Çalıştırma:** Başlatma düğmesine basarak işlemi başlatın. 6. **Tamamlama:** Süre dolduğunda ve rotor tamamen durduğunda kapağı açın ve numuneleri dikkatlice çıkarın. **TEMİZLİK VE BAKIM** - Cihazı temizlemek için yumuşak, nemli bir bez ve hafif bir deterjan kullanın. - Aşındırıcı kimyasallar veya solventler kullanmaktan kaçının. - Rotorun ve tüp yuvalarının temiz ve kalıntılardan arındırılmış olduğunu düzenli olarak kontrol edin. **TEKNİK ÖZELLİKLER** - **Maksimum Hız:** [Belirtilen Değer] RPM - **Güç Kaynağı:** [Belirtilen Değer] V / Hz - **Kapasite:** [Belirtilen Değer] Tüp - **Süre Ayarı:** [Belirtilen Değer] dk/sn

Parafilm M

Pechiney plastik dolgu malzemesi

PM-996

www.parafilm.com

Salım nesli için yetiştirme kapları (53 cm x 38 cm x 8 cm)

Pleion

0757

Ürünler

Floresan mikroskop

Leica Microsystems

MZ FLIII

**Leica MZ FL III** **Hücre Kültürü ve Organizasyonel İş Akışı İçin Yeni Nesil Çalışma İstasyonu** **Özet** Yüksek teknolojili hücre kültürü uygulamaları, sterilite ve kontaminasyon kontrolü konusunda tavizsiz bir yaklaşım gerektirir. Leica MZ FL III, hücre kültürü laboratuvarlarının güncel ihtiyaçlarını karşılamak üzere tasarlanmış, ergonomi, güvenlik ve verimliliği optimize eden modern bir çalışma istasyonudur. **Kullanıcı Odaklı Ergonomi** Leica MZ FL III, uzun süreli çalışmalar sırasında kullanıcı konforunu artırmak ve fiziksel zorlanmayı azaltmak için ergonomik prensiplerle geliştirilmiştir. Ayarlanabilir çalışma yüksekliği ve geniş iç hacim, araştırmacıların farklı prosedürleri rahatça uygulayabilmesine olanak tanır. **Gelişmiş Hava Akışı ve Kontaminasyon Kontrolü** Sistem, steril bir çalışma ortamı sağlamak için optimize edilmiş laminar hava akışı teknolojisini kullanır. HEPA filtreleme sistemi, havadaki partikülleri ve mikroorganizmaları etkili bir şekilde temizleyerek numunelerin ve operatörün güvenliğini sağlar. **Esnek Konfigürasyon Seçenekleri** Her laboratuvarın ihtiyaçları farklıdır; bu nedenle Leica MZ FL III, çeşitli modüler seçenekler sunar: * **Entegre Aksesuarlar:** Santrifüjler, inkübatörler ve pipetleme istasyonları için optimize edilmiş yerleşim alanları. * **Aydınlatma:** Çalışma alanının her noktasına eşit dağılan, göz yorgunluğunu önleyen yüksek yoğunluklu LED aydınlatma. * **Yüzey Materyalleri:** Kolay sterilizasyon sağlayan, kimyasallara ve aşınmaya dayanıklı yüksek kaliteli yüzeyler. **Sürdürülebilirlik ve Enerji Verimliliği** Modern laboratuvar standartlarına uygun olarak Leica MZ FL III, enerji tüketimini minimize eden akıllı kontrol sistemleri ile donatılmıştır. Düşük enerji modları ve optimize edilmiş motor teknolojisi, işletme maliyetlerini düşürürken çevresel etkiyi azaltır. **Temel Özellikler** * Üstün sterilite sağlayan gelişmiş filtrasyon. * Operatör konforu için optimize edilmiş ergonomik tasarım. * Modüler yapı ile özelleştirilebilir çalışma alanı. * Kolay temizlenebilir ve dayanıklı materyaller. * Enerji tasarruflu işletim modu. **Leica Microsystems: Bilimin Geleceğini Şekillendirmek** Leica Microsystems, görüntüleme ve laboratuvar çözümlerinde dünya lideri olarak, araştırmacıların en yüksek hassasiyetle çalışabilmesi için yenilikçi teknolojiler geliştirmeye devam etmektedir. Leica MZ FL III, hücre kültürü çalışmalarında standardı yükseltmek için tasarlanmıştır.

Yetişkin kafesleri

BugDorm

DP1000

böcek yetiştirme kafesi 30x30x30 cm tekli paket

Filtre kağıdı

CELAB

Mikropipet Kalibrasyonu Kalibrasyon Nedir? Kalibrasyon, bir ölçüm cihazının gösterdiği değer ile bilinen ve izlenebilir bir standart değer arasındaki ilişkinin belirlenmesi işlemidir. Bir mikropipetin kalibrasyonu, pipetin hacim ayarının doğruluğunu ve kesinliğini doğrulamak ve gerekirse düzeltmek için yapılır. Mikropipet Kalibrasyonunun Önemi Mikropipetler, laboratuvarlarda sıvıların hassas bir şekilde aktarılması için kullanılır. Yanlış kalibre edilmiş bir mikropipet, deney sonuçlarının hatalı olmasına, tekrarlanabilirliğin azalmasına ve araştırmaların güvenilirliğinin sarsılmasına neden olabilir. Bu nedenle, periyodik kalibrasyonlar bilimsel standartların korunması için kritiktir. Kalibrasyon Yöntemleri Gravimetrik Yöntem En yaygın olarak kullanılan yöntemdir. Bu yöntemde, pipet ile belirli bir miktarda distile su aktarılır ve bu su hassas bir terazi kullanılarak tartılır. Suyun sıcaklığa bağlı yoğunluğu kullanılarak, tartılan kütle hacme dönüştürülür. Fotometrik Yöntem Belirli bir boya çözeltisinin transferi sırasında ışık geçirgenliğindeki değişimin ölçülmesine dayanır. Bu yöntem, çok küçük hacimlerin kalibrasyonu için daha uygundur. Kalibrasyon Süreci 1. Hazırlık: Pipet, standartlara uygun sıcaklıktaki distile su ile doldurulur. 2. Ölçüm: Belirlenen hacimdeki sıvı, hassas bir terazi üzerine yerleştirilmiş bir kaba aktarılır. 3. Tekrar: Doğruluğu ve kesinliği belirlemek için işlem genellikle 5 veya 10 kez tekrarlanır. 4. Hesaplama: Elde edilen ağırlık değerlerinin ortalaması alınır ve suyun yoğunluk faktörü ile çarpılarak gerçek hacim hesaplanır. 5. Karşılaştırma: Ölçülen hacim, pipetin nominal hacmi ile karşılaştırılır ve hata payı hesaplanır. Kabul Kriterleri Her laboratuvarın veya standart kuruluşunun (ISO, DIN vb.) belirlediği izin verilen maksimum hata sınırları vardır. Eğer ölçüm sonuçları bu sınırların dışındaysa, pipete ayar (adjusment) yapılır veya cihaz onarıma gönderilir. Bakım ve Saklama Kalibrasyonun süresini uzatmak için mikropipetler dik konumda saklanmalı, düzenli olarak temizlenmeli ve sadece uygun uçlar (tips) ile kullanılmalıdır.

Kaynaklar

  1. Dyck, V., et al. Sterilizing Insects with Ionizing Radiation. Sterile Insect Technique. , Springer. Netherlands. 233-268 (2005).
  2. Dyck, V., Hendrichs, J., Robinson, A. S., Klassen, W., Curtis, C. History of the Sterile Insect Technique.. Sterile Insect Technique. , Springer. Netherlands. 3-36 (2005).
  3. Alphey, L., et al. Sterile-insect methods for control of mosquito-borne diseases – an analysis. Vector Borne Zoonotic Dis. 10, 295-311 (2010).
  4. Thomas, D. D., Donnelly, C. A., Wood, R. J., Alphey, L. S. Insect population control using a dominant, repressible, lethal genetic system. Science. 287, 2474-2476 (2000).
  5. Fu, G., et al. Female-specific insect lethality engineered using alternative splicing. Nat. Biotechnol. 25, 353-357 (2007).
  6. Fu, G., et al. Female-specific flightless phenotype for mosquito control. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 4550-4554 (2010).
  7. Gong, P., et al. A dominant lethal genetic system for autocidal control of the Mediterranean fruitfly. Nat. Biotechnol. 23, 453-456 (2005).
  8. Phuc, H. K., et al. Late-acting dominant lethal genetic systems and mosquito control. BMC Biol. 5 (11), (2007).
  9. Harris, A. F., et al. Successful suppression of a field mosquito population by sustained release of engineered male mosquitoes. Nat. Biotechnol. 30, 828-830 (2012).
  10. Harris, A. F., et al. Field performance of engineered male mosquitoes. Nat. Biotechnol. 29, 1034-1037 (2011).
  11. Bailey, D. L., Lowe, R. E., Dame, D. A., Seawright, J. A. Mass rearing the genetically altered MACHO strain of Anopheles albimanus Wiedemann. Am. J. Trop. Med. Hyg. 29, 141-149 (1980).
  12. Benedict, M. Q., et al. Colonisation and mass rearing: learning from others. Malar. J.. 8 Suppl 2 (S4), (2009).
  13. Alphey, L. Re-engineering the sterile insect technique. Insect Biochem. Mol. Biol. 32, 1243-1247 (2002).
  14. Wise de Valdez,, R, M., et al. Genetic elimination of dengue vector mosquitoes. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 4772-4775 (2011).
  15. Macoris Mde,, L,, et al. Resistance of Aedes aegypti from the state of Sao Paulo, Brazil, to organophosphates insecticides. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. 98, 703-708 (2003).
  16. Campos, J., Andrade, C. F. Larval susceptibility of Aedes aegypti and Culex quinquefasciatus populations to chemical insecticides. Rev. Saude Publica. 37, 523-527 (2003).
  17. Gubler, D. J. Resurgent vector-borne diseases as a global health problem. Emerg. Infect. Dis. 4, 442-450 (1998).
  18. Harris, A. F., Rajatileka, S., Ranson, H. Pyrethroid resistance in Aedes aegypti from Grand Cayman. Am. J. Trop. Med. Hyg. 83, 277-284 (2010).
  19. Lima, J. B., et al. Resistance of Aedes aegypti to organophosphates in several municipalities in the State of Rio de Janeiro and Espirito Santo. Am. J. Trop. Med. Hyg. 68, Brazil. 329-333 (2003).
  20. Paris, M., et al. Persistence of Bacillus thuringiensis israelensis (Bti) in the environment induces resistance to multiple Bti toxins in mosquitoes. Pest Manag. Sci. 67, 122-128 (2010).
  21. Rendon, P., McInnis, D., Lance, D., Stewart, J. Medfly (Diptera: Tephritidae) genetic sexing: large-scale field comparison of males-only and bisexual sterile fly releases in Guatemala. J. Econ. Entomol. 97, 1547-1553 (2004).
  22. Papathanos, P. A., et al. Sex separation strategies: past experience and new approaches. Malar. J.. 8 Suppl 2 (S5), (2009).
  23. Medici, A., et al. Studies on Aedes albopictus larval mass-rearing optimization. J. Econ. Entomol. 104, 266-273 (2011).
  24. Focks, D. A. An improved separator for the developmental stages, sexes and species of mosquito (Diptera Culicidae). J. Med. Entomol. 17, 567-568 (1980).
  25. Fay, R. W., McCray, E. M., Kilpatrick, J. W. Mass production of sterilized male Aedes aegypti. Mosquito News. 23, 210-214 (1963).
  26. Christophers, S. R. Aedes aegypti the yellow fever mosquito: Its life history, Bionomics and Structure. , Cambridge University Press. (2009).
  27. Jones, J. C. A simple method for sexing living Anopheles Larvae (diptera, culicidae). Ann. Entomol. Soc. Am. 50, 104-106 (1957).
  28. Koenraadt, C. J. M. Pupal Dimensions as Predictors of Adult Size in Fitness Studies of Aedes aegypti (Diptera Culicidae). J. Med. Entomol. 45, 331-336 (2008).
  29. Alphey, L., Nimmo, D., O'Connell, S., Alphey, N. Insect population suppression using engineered insects. Adv. Exp. Med. Biol. 627, 93-103 (2008).
  30. Alphey, N., Bonsall, M. B., Alphey, L. Modeling resistance to genetic control of insects. J. Theor. Biol. 270, 42-55 (2011).
  31. Atkinson, M. P., et al. Analyzing the control of mosquito-borne diseases by a dominant lethal genetic system. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 104, 9540-9545 (2007).
  32. Bargielowski, I., Nimmo, D., Alphey, L., Koella, J. C. Comparison of life history characteristics of the genetically modified OX513A line and a wild type strain of Aedes aegypti. PLoS One. 6 (e20699), (2011).
  33. Bargielowski, I., Alphey, L., Koella, J. C. Cost of mating and insemination capacity of a genetically modified mosquito Aedes aegypti OX513A compared to its wild type counterpart. PLoS One. 6 (26086), (2011).

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Kitle Yeti tiricili iGeneti i De i tirilmi SivrisineklerK s r B cek Tekni iRIDL Su uYumurta retimiErkek Ayr t rmaTetrasiklin AntidotuPupa Sal mPop lasyon Bask lama
Brezilya'da Saha Sürümleri için Genetiği Değiştirilmiş Aedes aegypti'nin Seri Üretimi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.