Yöntem makalesi

Canlı Hücre Döngüsü Analizi

13.4K görüntüleme

DOI:

10.3791/50239

19 Mayıs 2013

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Canlı hücre döngüsü analizi için bir protokol Drosophila dokular açıklanmıştır. Bu protokol, eş zamanlı olarak ya da floresan nesilli izleme proteinlerin doku spesifik ifade yoluyla göreli hücre boyutu ile ilgili bilgi, hücre sayısı, DNA içeriği hücre tipi içerir In vivo.

Özet

Flow sitometri çok farklı hücre döngüsü aşamalarında göre yüzde anlaması için, bir hücre nüfus DNA içeriği hakkında bilgi edinmek için kullanılır olmuştur. Bu teknik başarılı in vivo hücre döngüsü düzenleme genetik çalışmalar için model organizma Drosophila melanogaster mitotik dokulara uzatıldı. Hücre türüne özgü floresan protein ekspresyonu ve genetik manipülasyonlar ile birleştiğinde, bir hücre sayısı, hücre boyutu ve in vivo olarak aşamalı hücre döngüsü üzerindeki etkileri hakkında ayrıntılı bilgi edinebilirsiniz. Ancak bu canlı hücre yöntemi UV lazer ile donatılmış akış sitometrelerinde kullanıcıları sınırlayıcı, hücre geçirgen Hoechst 33.342 DNA-intercalating boya kullanımı güvendi. Biz daha yaygın mor 405nm lazer ile uyumlu yeni bir canlı hücre DNA boya, Vybrant DyeCycle Violet, kullanmak için bu protokol değiştirdiniz. Burada sunulan protokol, hücre ile birlikte verimli bir hücre döngüsü analizi sağlarDrosophila dokularda çeşitli tip, göreli hücre boyutu ve hücre sayısı bilgiler. Bu protokol tek laboratuvar ölçekte çalışan ve korunabilir bir küçük masa üstü analiz için canlı Drosophila dokular için yararlı hücre döngüsü analizi tekniği, Attune Akustik Odaklama Sitometreyi, uzanır.

Giriş

Akış sitometri hücre canlılığı, nispi hücre boyutu, DNA içeriği ve canlı hücre popülasyonunda floresan proteini ifade ölçümü için kullanılabilir. S-fazı, bir hücre popülasyonunda DNA içeriği hakkında bilgi boyunca nükleer DNA çoğaltma bağlı olarak farklı hücre döngüsü faz 1-3 görece yüzdeleri belirlemek için de kullanılabilir. Bu yöntem, mayadan memelilere modeli sistemlerinde hücre döngüsü analizi bir taşı haline gelmiştir.

Meyve sineği Drosophila melanogaster hücre döngüsünün düzenlenmesi in vivo analizlerde genetik için mükemmel bir model sistem haline gelmiştir. Sinekler mevcut geniş genetik araçları v....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

1. Yetiştiriciliği Fly

  1. Çapraz 10 ml Maya-Glikoz Orta 3 veya seçtiğiniz diğer proteinden zengin medya ile dar plastik şişeleri istenen genotip uçar. In vivo floresan protein ekspresyonu ile izleme doku spesifik ifade ve soy için uygun geniş bir Drosophila transgenik başka araçlar 4,5 detaylı bir şekilde tarif edilmektedir. 24 saat döl koleksiyon serisi elde etmek için her gün taze şişeleri için anne transfer, ya da daha kesin evreleme için, agar plakaları üzerinde embriyo toplamak ve 10 açıklandığı gibi şişeleri için yeni yumurtadan larva transferi. Deney boyunca tek şartları yürütülmesini sağlamak....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Şekil 2 sağlanan GFP şablonu kullanarak, doku arka yarısında GFP ifade, bir larva kanat örnek temsilcisi sonuçları gösterir. Benzer sonuçlar, aynı doku tipindeki ve verilen TTT şablon (Şekil 3A) kullanılarak TTT için ekspresyon modeli ile elde edilir. Resim şablonları ve gerilimleri (Tablo 2) larva gözde (Şekil 3B), beyin ve kanatların yanı sıra, pupa gözler, beyinleri (Şekil 3B) ve kanatların analizi için uygundur. Kapılar 5 ve 6 popülasyonlar için FSC.......

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Burada tarif edilen protokole, hücre döngüsü, göreli hücre boyutu ve nispi hücre sayısı, çeşitli gelişim aşamalarında Drosophila canlı dokularda analizi için olanak sağlar. Bu analiz hücre türüne özgü floresan protein ifade veya izleme soy bağlandığı zaman, detaylı bilgi gizli hücre döngüsü veya büyüme tedirginlikler hücresel yanıtları hakkında elde edilebilir. Beyin hücreleri tutuklandı 90% G1 üzerinde normal olduğunda ilkesinin kanıtı olarak, biz (3D Şekil) bir gelişim aşamasında anormal DNA .......

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Teşekkürler

Biz gelişmekte olan ve bu sürüm 10 dayandığı orijinal protokol öğretmek için Aida de la Cruz teşekkür ederim. Buttitta Laboratuarı'nda çalışma NIH hibe GM086517 tarafından desteklenmektedir.

....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
12x75 mm Polistiren Yuvarlak Alt 5 ml Test Tüpü BD Falcon3520585 ml tüpler
Attune Akustik Odaklama SitometresiYaşam Teknolojileri / Uygulamalı Biyosistemler4445315Mavi / Mor konfigürasyon
Attune Sitometre Yazılımı (sürüm 1.2.5)Yaşam Teknolojileri/ Applied BiosystemsFreeYalnızca PC
Attune Performans İzleme Boncukları (5 x 106 boncuk / ml) Yaşam Teknolojileri / Uygulamalı Biyosistemler4449754Günlük performans testi için
Dumont #5 Inox forseps Güzel Bilim Araçları11251-20
Embriyo tabakları 30 mm x 12mm Elektron Mikroskobu Bilimleri70543-30Cam diseksiyon kapları
Eppendorf ThermomixerEppendorf022670051
Tripsin-EDTA Çözeltisi (10x)SigmaT4174
Vannas-Tü bingen Bahar Makası Güzel Bilim Araçları15003-08Düz 5mm Kesici
Kenar Vybrant DyeCycle Menekşe LekeYaşam Teknolojileri/ InvitrogenV35003
Tablo 1. Gerekli reaktifler ve aletler.

Canlı DNA Leke Çözeltisi (10 ml):

1 ml 10X Ca2+ Mg2+ serbest PBS (pH7.2)
9 ml 10X Tripsin-EDTA (Sigma)
5 μ l Invitrogen Vybrant DyeCycle Violet (bunun memeli hücreleri için önerilen konsantrasyonun 0.25X olduğunu unutmayın. Daha yüksek konsantrasyonların Drosophila hücreleri için toksik olduğunu bulduk.)

10X Ca2+ Mg2+ serbest PBS (pH7.2): 1.37M NaCl, 27 mM KCl, 100mM Na2HPO4 (dibazik), 20mM KH2PO4 (monobazik) pH'a ayarlanmış 7.2

FSCSSCBL1VL1
Eşik (x1000)100101010
Gerilim (mV)295042501800 1150

Tablo 2. Şekil 2.

Kaynaklar

  1. Nunez, R. DNA measurement and cell cycle analysis by flow cytometry. Curr. Issues Mol. Biol. 3, 67-70 (2001).
  2. Rabinovitch, P. S. DNA content histogram and cell-cycle analysis. Methods Cell Biol. 41, 263-296 (1994).
  3. Ashburner, M., Roote, J.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Ak SitometrisiAttune SitometresiDNA eri i l mH cre Boyutu AnaliziFloresan Protein EkspresyonuGenetik Manip lasyonlarDoku Disosiasyonu

İlgili makaleler