Yöntem makalesi

Mikro ölçekli Hücre Stimülasyon deneyler için Çok Yönlü Otomatik Platformu

DOI:

10.3791/50597

⸱

6 Ağustos 2013

 ,  ,  ,  , 
1Department of Systems Biology, Sandia National Laboratories, 2Department of Biotechnology and Bioengineering, Sandia National Laboratories, 3Canon U.S. Life Sciences, 4Department of Advanced Systems Engineering and Deployment, Sandia National Laboratories

Bu makalede

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Biz mikro ölçekli hücre stimülasyonu deneyler için otomatik bir hücre kültürü ve sorgulama platformu geliştirdik. Platform yetiştirilmesi ve hücrelerin küçük nüfus uyarıcı ve moleküler analizler için lizatları kurtarma, basit, çok yönlü ve hassas kontrol sağlar. Platform de değerli hücreleri ve / veya reaktif kullanmak çalışmalar için uygundur.

Özet

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Kültür hücreleri (in vitro analizi) çalışması karmaşık biyolojik sistemlerin içine önemli fikir sağlamıştır. In vitro analizi için geleneksel yöntemler ve sistemler de mililitre ölçekli birimleri (≥ 0.1 ml) hücreleri (≥ 10 5), çok sayıda çalışma için uygundur. Ancak, bu ilgi ve / veya kültür, uyarılma ya da işlem için gerekli reaktiflerin hücre tüketimini azaltmak için kültür boyutunu aşağı ölçekte gerekli ya da arzu edilir olduğu birçok örneği vardır. Ne yazık ki, geleneksel yaklaşımlar mikro ölçekli kültürlerin hassas ve tekrarlanabilir manipülasyon desteklemez ve mevcut Mikroakiskan tabanlı otomatik sistemler çok karmaşık ve en laboratuvarlar tarafından rutin kullanım için uzmanlaşmıştır. Mikro ölçekli hacminde - Bu sorunu çözmek için, otomatik kültür, stimülasyon ve hücrelerin küçük nüfus (2.000 hücre 100) geri kazanımı için basit ve çok yönlü teknoloji platformu geliştirdiks (1-20 ul). Platform mikro ölçekli kültür, kurulan muhafaza ve uyarılır, içinde fibronektin kaplı mikrokapilerler ("hücre perfüzyon odaları"), bir dizi oluşur "transfer" mikrokapilerler ("merkez ile donatılmış bir dijital Mikroakiskan (DMF) cihazı "), ve perfüzyon odalarından yolları hücreleri ve reaktif olan, güçler perfüzyon odaları ve merkez arasında malzeme nakliyesi bir yüksek hassasiyetli şırınga pompası, hangi ve malzeme nakliyesi üzerinde kontrol sağlayan bir elektronik arayüz, hangi koordine ve önceden belirlenmiş komut ile otomatik. Bir örnek olarak, bakteri ile meydan bağlı bağışıklık hücrelerinde ortaya çıkardı transkripsiyonel yanıtlar çalışmayı kolaylaştırmak için platform kullanılır. Platformun kullanın bize, hücre ve reaktif tüketimini azaltmak deneme-için-deney değişkenliği en aza indirmek için etkin ve yeniden doğrudan eller emek. Bu bahşeder avantajları, hem de onun erişilebilirlik ve çok yönlülük, o göz önüne alındığındaur platformu laboratuar ve geniş bir uygulama çeşitli kullanım alanı bulur ve sadece sınırlı miktarlarda mevcut olan hücrelerin ve uyaranların çözümlenmesini kolaylaştıran çok özellikle faydalı olabilir gerekir.

Giriş

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

(In vitro analizinde) kültür muhafaza hücrelerin çalışma karmaşık biyolojik sistemlerin ve insan sağlığı düzenleyen temel ilke ve moleküler mekanizmaları içine değerli fikir sağlamıştır. Kültür, uyarılma ve Petri kutularına ve mikro-titer plakalar kullanmak analizi için hücreler, toplanması için konvansiyonel yöntemler mililitre çapta kültür hacmi hücreleri (≥ 10 5) (≥ 0.1 ml) arasında geniş popülasyonların çalışması için tasarlanmıştır. Ancak, hücrelerin sadece sınırlı bir miktarda mevcut olduğu bir çok durumda (örneğin, birincil hücreler), ya da küçük hücre popülasyonları (örneğin nüfus içerisindeki hücre-hücre değişkenliği azaltmak için) arzu edilir veya gerekli reaktiflerin elde etmek zordur veya pahalı (örneğin saflaştırılmış hücre-salgılanan faktörler). Bu tür sorunlar başarıyla kültür boyutunu küçültme tarafından ele alınabilir, hangi tüm tüketimi azaltmak yararı vardırReaktifler in vitro analiz 1,2 için gerekli. Ne yazık ki, geleneksel ekipman ve yöntemleri mikro ölçekli kültür ve 3-11 çok karmaşık ve en laboratuvarlar tarafından rutin kullanım için özel olan mevcut Mikroakiskan tabanlı otomatik sistemlerin hassas ve tekrarlanabilir manipülasyon desteklemez.

Mikro ölçekli hacimlerde (1 - 20 ul) - Bu yazıda, otomatik kültür, stimülasyon ve hücrelerin küçük nüfus (2.000 hücre 100) geri kazanımı için basit ve çok yönlü teknoloji platformu montajı ve kullanımı açıklanmaktadır. Fibronektin kaplı mikrokapilerler ("hücre perfüzyon odaları" modülü) mikro ölçekli kültürlerin kurulması, bakım ve uyarılması için site olarak hizmet veren bir dizi ve bir dijital Mikroakiskan (DMF: platform mimarisi (Şekil 1) modüler yapıda olup "transfer" mikrokapilerler ("merkez" modülü) 14,15 yolları hücreleri ile donatılmış) 12,13 cihazve ve perfüzyon odaları reaktifleri. DMF kullanıcı ayrı ayrı aynı anda birden fazla damlacıkları ele ve cihaz donanım değiştirmeden manipülasyonlar (yani yeniden örnek işleme tren) değiştirmek veya yeniden sipariş edebilirsiniz. Onun büyük esneklik hücre kültürü 16,17, enzim testleri 18,19, immün 20,21, DNA analizi 22,23, protein işleme, 24,25 de dahil olmak üzere geniş bir uygulama yelpazesi, önemli bir teknoloji olarak son ortaya çıkması belirgindir ve klinik örnek işleme. 26,27 Bizim merkez DMF cihazlara doğal esneklik yararlanır, ve daha fazla uzman periferik manipülasyonlar bir alt kümesi (örneğin hücre kültürü) gerçekleştirmek için bir fırsat sunuyor microcapillary arayüzleri, ilavesi aracılığıyla artırır DMF yerine aygıtın kendisinde daha modülleri. Bu şekilde işleme tren bölümlere de pla tasarımı kolaylaştırırtform mimari (tüm işlem adımları taşıyabilen bir DMF cihaz oluşturmak için gerek yok) ve yeni fonksiyonlar olarak evrimi kolaylaştırır (sadece gerekli gibi yeni çevresel modüller entegre) gerekmektedir. Merkez içinde hücreleri ve reaktiflerin taşıma DMF cihaz 13,28 içinde elektrotlar sıralı aktivasyon tarafından oluşturulan kuvvetler electrowetting tarafından sürülür; gelen, ulaşım ve perfüzyon odaları içinde yüksek hassasiyetli şırınga tarafından oluşturulan basınç değişiklikleri tarafından desteklenmektedir pompa. Bu sıvı hareketlerin tüm basit bir elektronik arabirimi üzerinden kontrol ve önceden belirlenmiş komut kullanımı ile otomatik vardır.

Temsili bir örnek olarak, bakteri ile meydan okuma (Şekil 2) üzerine bağışıklık hücrelerinde ortaya çıkardı transkripsiyonel yanıtların çalışma için platformun kullanımını göstermektedir. Platformda bu deneyler bize hücrelerin az sayıda (deneysel başına ~ 1000 ile çalışmak için etkintal durumu), deneme-to-deney değişkenliği, tasarrufu reaktifler ve emek eller yeniden doğrudan en aza indirmek. Bu avantaj sağladığını, hem de onun erişilebilirlik ve çok yönlülüğü göz önüne alındığında, bu platform laboratuar ve geniş bir uygulama çeşitli kullanım alanı bulur ve sadece sınırlı miktarlarda mevcut olan hücrelerin ve uyaranların çözümlenmesini kolaylaştıran çok özellikle faydalı olabilir gerekir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu genel bir protokol çalışmaları geniş bir yelpazede için platformun uygulamayı desteklemek için tasarlanmıştır, bu raporda açıklanan temsilcisi çalışma özgü yönleri parantez içinde dışarı ayrılır Şekil 2 protokolü kullanılarak gerçekleştirilen temsili bir çalışma göstermektedir.. Protokolde, tüm "talimat" komutları önceden belirlenmiş komut kullanımı ile otomatik unutmayın. Adım 2 Adım 1 (Adım 1.7 ve 1.8 sırasında örneğin) paralel olarak yapılabilir bu da unutmayın ve bu adım 2.1 genellikle atlanır (desenli / kaplı DMF cihaz levhalar yıkanır ve tekrar kullanılabilir, çünkü; Adım 5.2) .

1. Hücre Perfüzyon Odalar montaj ve doldurmak

  1. Coat sterilize (otoklav) mikrokapilerler (erimiş-silis 15 cm uzunluğunda,, 679 mikron od, 534 mikron id) iç yüzeyleri steril fibronektin solüsyonu (50 mg / ml 30 ul) çizmek için şırınga pompası talimat ile fibronektin ile, her birinemikrokılcal, (2 saat boyunca 37 ° C) kuluçkaya çözeltiyi çekmek için bir şırınga pompası talimat ve mikrokapilerler kuru (6 saat boyunca oda sıcaklığında (RT)) izin vermek.
  2. CapTite parçaları (6 perfüzyon odaları, 8-port şırınga pompası) kullanarak, polikarbonat tüp (500 mikron od, 100 mikron id) ve çok portlu şırınga pompası için boru her fibronektin kaplı microcapillary (perfüzyon odası) bağlayın.
  3. Bant kullanarak, istenilen sıcaklığa ayarlanmış bir ısı bloğu (37 ° C) her perfüzyon odasının vücut sabitleyin.
  4. Bir rezervuar içinde perfüzyon odaları arasında açık uçları (de microcentifuge tüp veya mikrotitre plaka) taze büyüme ortamı içinde süspansiyon haline içeren hücreler (P388D.1 sıçangil makrofaj) (RPMI-1640,% 10 FBS, 500 ünite / ml penisilin, 500 ug daldırın / istenilen konsantrasyonda (10 6 hücre / ml), streptomisin ml 'de).
  5. Yeterli ai ardından her perfüzyon odasına hücreleri (10 ul, 10 4 hücre) çizmek için şırınga pompası talimatr ısı bloğuna güvenli bölümüne sıvı fişi (~ 4.5 cm) taşımak için.
  6. Hücrelerin perfüzyon odaları arasında fibronektin kaplı iç yüzeyleri (-, 2 saat 37 ° C'de 1) uyması için izin verir. Bu arada, hücreler rezervuar taze büyüme ortamı içeren yeni bir rezervuara perfüzyon odaları arasında açık uçları aktarın.
  7. Uyum döneminden sonra, atık taze orta (10 ul) geri ve yapıştırılır üzerinde yeni sıvı fişleri (taze orta) konumlandırmak için yeterli hava ile takip sıvı fişleri (klimalı ortam ve serbest hücreler) göndermek için şırınga pompası talimat hücreler.
  8. Hücre popülasyonlarının (- ~ 1.000 hücre / odasının mikro ölçekli kültür oluşturulan nüfus 24 saat 16) yeterince dengelenir ve genişletilmiş kadar düzenli aralıklarla (her 2 saat) orta değişim (yani tekrar Adım 1.7) yürütmek için devam edin.

2. DMF Cihaz imal ve Hub Mimarlık monte

  1. olarak kırk altı indiyum kalay oksit (ITO) fotolitografi ve aşındırma ile elektrotlar (damlacık harekete sürücüleri), ve 5 Parylene-C mikron ve 50 ile kat ile DMF cihazın alt plaka, daha önce 14,29 açıklanan desen Teflon-AF nm. Yukarıda olduğu gibi, kaplama ile Teflon AF ile desensiz İTO cam alt tabakası DMF cihazın üst plakanın oluşturulması.
  2. Bu aralık, çalıştırma elektrot boyutu 2,5 mm (2) ile bir araya damlacık hacmi (2.5 ul tanımlar, metal sıkıştırma kareler kullanılarak, plakalar arasındaki bir 400 mikron aralığı korumak girintiler sahip bir polimer döküm 14,30 içine DMF levhaları sabitlemek elektrot başına). DMF montaj basit yollarla 24 gerçekleştirilebilir unutmayın.
  3. Ekle Teflon kaplı transferi mikrokapilerler (360 mikron od, 100 mikron id; 3.5 - 4.0 cm uzunluğunda) DMF plakalar arasındaki boşluğa, kendi soydaş harekete elektrot kenarına uzatmak için her konumlandırma.
  4. Ters trher transfer microcapillary yapıştırmayın bir CapTite uygun d.
  5. İTO elektrotlara voltaj sağlamak için elektrik bağlantıları meşgul. Elektrot aktivasyon dizileri önceden belirlenmiş komut çalıştıran bir bilgisayar kontrollü elektronik arayüzü kullanılarak otomatik vardır.
  6. İsteğe bağlı: damlacıkların izleme kolaylaştırmak için bir şarj bağlı cihaz (CCD) kamera (DCR-HC96 (Sony, Japonya)) ile donatılmış bir mikroskop öteleme aşamasında (SZ-6145TR (Olympus, Japonya)) üzerine monte DMF merkezi Taşı . 31

3. DMF Hub için Perfüzyon Odalar bağlayın ve Hücre Nüfus teşvik

  1. Orta hazneden perfüzyon odaları açık uçları (Adım 1.6 bakınız) çıkarın ve DMF merkezi devri mikrokapilerler (Adım 2.4) ucuna yapıştırılmış CapTite parçaları içine yerleştirin.
  2. Atık perfüzyon odalarında sıvı fişleri (klimalı ortam) göndermek için şırınga pompası söyleyin.
  3. Öğrbir on-board rezervuar (E. coli% 0.1 Pluronic F 127 a / h taze ortamda 100 mg / ml 'de BioParticles) uyaran çekmek ve her transfer microcapillary uygun boyutu (10 ul) bir damlacık sunmak için DMF merkezi ruct . On-board rezervuarları silindirik şekilli bölmeleri (1.5 x 1.5 cm her biri) oluşan ve boru ile DMF Hub bağlanır.
  4. Uyaran transfer mikrokapilerler takılan çekmek ve perfüzyon odalarında hücre popülasyonlarının üzerinde fişler konumlandırmak için yeterli hava ile takip etmek şırınga pompası söyleyin.
  5. Uyarıcı hücreler ile (-, 4 saat 37 ° C'de 1 için) inkübe edin. İsteğe bağlı: düzenli aralıklarla taze uyaran (yani Adımları 3.2-3.4) için değişimi.

4. Uyarım sona ve Analiz için Hücre Lizatları Kurtar

  1. İsteğe bağlı: bir post-stimülasyon süresi gerekiyorsa, (yani Adımları 3.2 taze orta uyarıcı içeren sıvı fişler alışverişi - 3.4,) Teşvik için taze orta yerine ve inkübasyon ve gerektiğinde alışverişi devam ediyor.
  2. Değişimi yıkama tamponu (Prelüd Direkt modülü Lizis Tampon B) (yani Adımları 3,2-3,4, uyarıcı için yıkama tamponu yerine) için perfüzyon odaları içindeki sıvı fişleri, ve benzeri gibi (5 dakika) tabi inkübe edin.
  3. Döviz lizis çözüm için sıvı fişleri (tampon yıkama) (Prelude Doğrudan Lizis Modülü Tampon 0,1% Pluronik F 127 a / h ile) (yani tekrar Adımlar 3,2-3,4, teşvik için lizis çözüm yerine), ve inkübe gerektiği gibi (5 dakika) .
  4. DMF merkezi için sıvı fişleri (hücre lizatları) göndermek için şırınga pompası söyleyin.
  5. DMF merkezi sökün, DMF cihazı (bu damlacık karıştırma neden olabilir gibi, yan plaka yatırmak için dikkat kullanarak) üst plaka kaldırmak ve off-platformu analizi için bir Pipetman veya şırınga kullanarak lizatları (gen ekspresyon profili toplamak QPCR aracılığıyla).

5. Için temiz Platformu DonanımYeniden kullanmak

  1. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca% 10 çamaşır transferi mikrokapilerler ve CapTite parçaları (su, v / v) batırmak, azot gazı kullanılarak iyonu giderilmiş su ve kuru ile durulayın.
  2. Oda sıcaklığında 10 dakika boyunca% 10 çamaşır DMF cihaz plakaları daldırın, izopropanol ile iyice yıkayın deiyonize su ile devam eder ve kuru bir nitrojen gazı kullanılarak 10 dakika boyunca 160 ° C'de pişirme izledi.
  3. Şırınga pompa polikarbonat tüp ve DMF cihazın polimer döküm ve sıkıştırma çerçeve, temizlik olmadan yeniden kullanılabilir. Perfüzyon odasının mikrokapilerler her bir deney sonra atılır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Otomatik platformunun bir gösteri olarak, bu bakteri ile meydan bağışıklık hücrelerinin küçük nüfus mikro ölçekli Üreyen edildiği bir çalışma, yürütmek için kullanılan ve (Şekil 2 pro-inflamatuar yanıtların kapalı platform analizi için parçalanmış .)

Altı hücre perfüzyonu odaların her büyüme ortamı 10 ml içinde tekrar süspanse 10 4 bağışıklık hücreleri (P388D.1 sıçangil makrofaj) ile tohumlandı. Bir bağlılık süresi (37 ° C, 2 saat) ve bir ortam değiştirme sonra, ~...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Bu mikro ölçekli hücre kültürü deneyleri ve uyarılması için basit ve çok yönlü bir otomatik bir platform geliştirdik. Kültür boyutları daha küçük çaplı mikrokapilerler kullanımı ile azaltılabilir; platformu bize küçük kültür hacimleri ve hücre popülasyonlarının (- - 20 ul ve 100 2.000 hücreleri, oda başına 1) ile çalışmasını sağlar. Bu ölçeklerde çalışan rutin çalışmaların maliyetini düşürür ve değerli reaktifler ve / veya hücrelerin kullanımı gerektiren mümkün çalışmalar yapar. Platform-idam deneyler de hücre ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Teşekkürler

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Yazarlar DMF cihazları ve DMF merkezi tasarım ve geliştirme katkıları için Ronald F. Renzi ve Michael S. Bartsch teşekkür ederim. Bu araştırma tam Sandia Ulusal Laboratuarlarında Laboratuvarı Yönetmen Araştırma ve Geliştirme Programı tarafından desteklenmiştir. Sandia sözleşme DE-AC04-94AL85000 altında Enerji Ulusal Nükleer Güvenlik İdaresi ABD için Sandia A.Ş., Lockheed Martin Corporation'ın iştiraki, tarafından yönetilen ve işletilen bir çok programı laboratuvardır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Prelude Doğrudan Lizis ModülüNuGEN1400-24
Tripan Mavisi (%0,4 w/h)GIBCO15250-061
Hücre SıyırıcıCellgro25-056-C1
Ovation PicoSL WTANuGEN3310-048
Agencourt RNAClean XPBeckman Coulter GenomicsA63987
pHrodo BiyopartiküllerInvitrogenP35361
CCL4 TaqMan qRT-PCR testiUygulamalı BiyosistemlerMm00443111_m1
CCL5 TaqMan qRT-PCR testiUygulamalı BiyosistemlerMm01302428_m1
PTGS2 TaqMan qRT-PCR testiUygulamalı BiyosistemlerMm00478374_m1
TNF TaqMan qRT-PCR testiGAPDHMm00443258_m1
TaqMan qRT-PCR testi
S-11928
İndiyum kalay oksit (ITO) kaplı cam yüzeyler Delta TechnologiesCB-40IN-1107
DMF hub Teflon kaplı erimiş silika mikro kılcal damarlarPolymicro TechnologiesTSU100375
Perfüzyon odası mikro kılcal damarlarıPolymicro TechnologiesTSP530700
Boru ve mikrokılcal bağlantı parçalarıSandia Ulusal Laboratuvarları
Polikarbonat boruParadigma OpticsCTPC100-500-5
30 mm (500 & # 956; l kapasite) şırıngalarHamilton Company54848-01
Parylene-C buhar biriktirme aletiÖzel Kaplama SistemleriPDS 2010 Labcoter 2
Yüksek voltajlı fonksiyon jeneratörüTrek615A-1 615-3
MVX10 mikroskopOlympusİsteğe Bağlı (DMF hub'ında damlacıkların izlenmesini kolaylaştırır)
QIClick dijital CCD kameraQImagingQIClick-F-CLR-12İsteğe bağlı (DMF hub'ındaki damlacıkların izlenmesini kolaylaştırır)
Uygulamalı Biyosistemler Pluronic F127 Sigma Kimyasal 2594628 Florinert FC-40 Sigma Kimyasal Mm99999915_g1 Uygulamalı Biyosistemler 51142-49-5 Parilen C dimer Özel Kaplama Sistemleri 28804-46-8 Teflon-AF DuPont AF1600 Poliimid bant ULINE

Kaynaklar

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Young, E. W. K., Beebe, D. J. Fundamentals of microfluidic cell culture in controlled microenvironments. Chemical Society Reviews. 39, 1036-1048 (2010).
  2. Yeo, L. Y., Chang, H. C., Chan, P. P. Y., Friend, J. R. Microfluidic devices for bioapplications. Small. 7, 12-48 (2011).
  3. Zhang, B., Kim, M. C., Thorsen, T., Wang, Z. A self-contained microfluidic cell culture system. Biomedical Microdevices. 11, 1233-1237 (2009).
  4. Skafte-Pedersen, P., et al. A self-contained, programmable microfluidic cell culture system with real-time microscopy access. Biomedical Microdevices. 14, 385-399 (2012).
  5. Barbulovic-Nad, I., Au, S. H., Wheeler, A. R. A microfluidic platform for complete mammalian cell culture. Lab Chip. 10, 1536-1542 (2010).
  6. Zhou, Y., Pang, Y., Huang, Y. Openly Accessible Microfluidic Liquid Handlers for Automated High-Throughput Nanoliter Cell Culture. Analytical Chemistry. 84, 2576-2584 (2012).
  7. Wang, H. Y., Bao, N., Lu, C. A microfluidic cell array with individually addressable culture chambers. Biosensors and Bioelectronics. 24, 613-617 (2008).
  8. Cimetta, E., Cagnin, S., Volpatti, A., Lanfranchi, G., Elvassore, N. Dynamic culture of droplet-confined cell arrays. Biotechnology Progress. 26, 220-231 (2010).
  9. Hung, P. J., Lee, P. J., Sabounchi, P., Lin, R., Lee, L. P. Continuous perfusion microfluidic cell culture array for high-throughput cell-based assays. Biotechnology and Bioengineering. 89, 1-8 (2005).
  10. King, K. R., et al. A high-throughput microfluidic real-time gene expression living cell array. Lab on a Chip. 7, 77-85 (2007).
  11. Gómez-Sjöberg, R., Leyrat, A. A., Pirone, D. M., Chen, C. S., Quake, S. R. Versatile, fully automated, microfluidic cell culture system. Analytical Chemistry. 79, 8557-8563 (2007).
  12. Wheeler, A. R. Chemistry - Putting electrowetting to work. Science. 322, 539-540 (2008).
  13. Gong, J., Kim, C. J. All-electronic droplet generation on-chip with real-time feedback control for EWOD digital microfluidics. Lab Chip. 8, 898-906 (2008).
  14. Choi, K., et al. Integration of field effect transistor-based biosensors with a digital microfluidic device for a lab-on-a-chip application. Lab Chip. 12, 1533-1536 (2012).
  15. Barbulovic-Nad, I., Yang, H., Park, P. S., Wheeler, A. R. Digital microfluidics for cell-based assays. Lab Chip. 8, 519-526 (2008).
  16. Gentilucci, L., de Marco, R., Cerisoli, L. Chemical modifications designed to improve peptide stability: incorporation of non-natural amino acids, pseudo-peptide. 16, 3185-3203 (2010).
  17. Miller, E. M., Wheeler, A. R. A digital microfluidic approach to homogeneous enzyme assays. Anal. Chem. 80, 1614-1619 (2008).
  18. Jebrail, M. J., Bartsch, M. S., Patel, K. D. Digital microfluidics: a versatile tool for applications in chemistry, biology. 12, 2452-2463 (2012).
  19. Ng, A. H. C., Choi, K., Luoma, R. P., Robinson, J. M., Wheeler, A. R. Digital Microfluidic Magnetic Separation for Particle-Based Immunoassays. Analytical Chemistry. 84, 8805-8812 (2012).
  20. Sista, R. S., et al. Heterogeneous immunoassays using magnetic beads on a digital microfluidic platform. Lab Chip. 8, 2188-2196 (2008).
  21. Malic, L., Veres, T., Tabrizian, M. Biochip functionalization using electrowetting-on-dielectric digital microfluidics for surface plasmon resonance imaging detection of DNA hybridization. Biosens. Bioelectron. 24, 2218-2224 (2009).
  22. Malic, L., Veres, T., Tabrizian, M. Nanostructured digital microfluidics for enhanced surface plasmon resonance imaging. Biosens. Bioelectron. 26, 2053-2059 (2011).
  23. Jebrail, M. J., Wheeler, A. R. Digital microfluidic method for protein extraction by precipitation. Anal. Chem. 81, 330-335 (2009).
  24. Nelson, W. C., et al. Incubated protein reduction and digestion on an electrowetting-on-dielectric digital microfluidic chip for MALDI-MS. Anal. Chem. 82, 9932-9937 (2010).
  25. Mousa, N. A., et al. Droplet-scale estrogen assays in breast tissue, blood, and serum. Sci. Transl. Med. 1, 1ra2(2009).
  26. Jebrail, M. J., et al. A digital microfluidic method for dried blood spot analysis. Lab Chip. 11, 3218-3224 (2011).
  27. Choi, K., Ng, A. H. C., Fobel, R., Wheeler, A. R. Digital microfluidics. Annual Review of Analytical Chemistry. 5, 413-440 (2012).
  28. Jebrail, M. J., et al. Digital Microfluidics for Automated Proteomic Processing. J. Vis. Exp. (33), e1603(2009).
  29. Thaitrong, N., et al. Quality Control of Next Generation Sequencing Library through an Integrative Digital Microfluidic Platform. , Submitted (2012).
  30. Shin, Y. J., Lee, J. B. Machine vision for digital microfluidics. Review of Scientific Instruments. 81, (2010).
  31. Thornton, M., Eward, K. L., Helmstetter, C. E. Production of minimally disturbed synchronous cultures of hematopoietic cells. BioTechniques. 32, 1098-1105 (2002).
  32. Huang, X., Dai, W., Darzynkiewicz, Z. Enforced adhesion of hematopoietic cells to culture dish induces endomitosis and polyploidy. Cell Cycle. 4, 801-805 (2005).
  33. Raje, M., et al. Charged nylon membrane substrate for convenient and versatile high resolution microscopic analysis of Escherichia coli & mammalian cells in suspension culture. Cytotechnology. 51, 111-117 (2006).
  34. Chatterjee, D., Hetayothin, B., Wheeler, A. R., King, D. J., Garrell, R. L. Droplet-based microfluidics with nonaqueous solvents and solutions. Lab Chip. 6, 199-206 (2006).
  35. Perroud, T. D., et al. Microfluidic-based cell sorting of Francisella tularensis infected macrophages using optical forces. Analytical Chemistry. 80, 6365-6372 (2008).
  36. Wang, Z., Gerstein, M., Snyder, M. RNA-Seq: A revolutionary tool for transcriptomics. Nature Reviews Genetics. 10, 57-63 (2009).
  37. Malone, J. H., Oliver, B. Microarrays, deep sequencing and the true measure of the transcriptome. BMC Biology. 9, (2011).
  38. Wu, M., et al. Microfluidically-unified cell culture, sample preparation, imaging and flow cytometry for measurement of cell signaling pathways with single cell resolution. Lab on a Chip. 12, 2823-2831 (2012).
  39. Srivastava, N., et al. Fully integrated microfluidic platform enabling automated phosphoprofiling of macrophage response. Analytical Chemistry. 81, 3261-3269 (2009).
  40. Herr, A. E., et al. Microfluidic immunoassays as rapid saliva-based clinical diagnostics. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104, 5268-5273 (2007).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

Micro scale Cell CultureDigital MicrofluidicsCell Perfusion ChambersSyringe Pump ControlAutomated Cell StimulationQuantitative RT PCR AnalysisFibronectin CoatingMicrocapillary TransportCell Lysate RecoveryImmune Cell Stimulation

İlgili makaleler