Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Miyeloid hücrelerin Dynamics Gerçek zamanlı Görüntüleme Süm Min / + Bağırsak Tümörleri Disk Eşodaklı Mikroskopi Spinning tarafından

9.1K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/51916

⸱

6 Ekim 2014

 ,  , 
1Department of Oncology, INSERM U661, Functional Genomic Institute, 2Department of Anatomy, University of California

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Transgenik raportör fareler ve enjekte edilebilir floresan etiketler kullanarak, uzun süreli intravital eğirme diski konfokal mikroskobu, ApcMin/+ kolorektal kanser modelinde miyeloid hücre davranışının bağırsak adenomuna doğrudan görselleştirilmesini sağlar.

Özet

Myeloid hücreler tümörler içinde en bol bulunan bağışıklık hücreleri ve tümör gelişimini teşvik ettiği gösterilmiştir. Modern Intravital görüntüleme teknikleri organ içindeki canlı hücresel davranış gözlem imkanı ancak bağırsak gibi nedeniyle, organ ve tümör erişilebilirlik bazı kanser türlerinde zor olabilir. Bağırsak tümörlerinin doğrudan gözlenmesi, daha önce bildirilmemiştir. Burada tarif edilen bir cerrahi prosedür transgenik fareler flüoresan raportör ve enjekte edilebilir izleyiciler ya da antikorları kullanarak, canlı farelerde bağırsak tümörler içinde miyeloid hücre dinamikleri doğrudan gözlem sağlar. Bu amaç için, hızlı bir görüntü elde etme ve uzun süreli kesintisiz görüntüleme sağlayan bir dört renkli, çok-bölgeli, mikro mercekli döner disk konfokal mikroskop kullanılır olmuştur. Çaprazlanır ince bağırsakta çok adenom geliştirmek Apc Min / + fareleri miyeloid hücreleri görselleştirmek için, c-fms-EGFP fareler ve ACTB-eCFP fareler ilekriptaların bağırsak epitel hücreleri görselleştirmek için. , Kan damarları ve nötrofil ve serozal yüzeyi boyunca tümör görüntüleme için konumlandırılması için bir prosedür olarak, farklı tümör bileşenleri etiketlenmesi için prosedürler de tarif edilmiştir. Görüntülemenin birkaç saat derlenen Time-lapse film bağırsak mikroçevresinin in situ miyeloid hücre davranış analizini sağlar.

Giriş

Tüm veriler hemen fibroblastlar, endotel hücreleri, bağışıklık ve enflamatuvar hücrelerde, hücre üstü matris ve çözünür faktörler dahil olmak üzere heterojen hücre popülasyonu, aşağıdakilerden oluşan tümör mikro, hemen hemen tüm katkıda başlatılması ve katı tümörlerin ilerlemesinde önemli bir rol oynadığını ortaya koymaktadır kanser 1 özellikleridir. Nitekim, tümör ilerlemesi esnasında, malignite 2 elverişli bir mikro oluşturmak için gelişmeye dönüştürülmüş kanser hücreleri ve stromal hücreler arasında sürekli dinamik etkileşimler vardır. Tümör mikro infiltre hücreler arasında immün, miyeloid hücreleri, 3, en bol miktarda bulunmaktadır. (TAM) tümörle ilişkili makrofaj oluşan miyeloid türevi bastırıcı hücreleri (MDSCs), dendritik hücreler (DC) ve nötrofil (PMNler), miyeloid hücreler, kemik iliğinden kişi etüde dahil edilir ve kademeli olarak sitokinler, büyüme faktörleri ve proteazlar serbest, tümör infiltre teşvik edebilirtümör büyümesi ve 4 yayıldı. Kanser hücreleri ve miyeloid hücreleri arasındaki karışma karmaşık ama dinamiktir. Böylece onların etkileşimlerinin doğası anlayışı bu hücrelerin yerine bir anti-tümör immün yanıtı katılan kanser ilerlemesini teşvik neden belirlemede çok önemli olduğunu ve onu kontrol etmek için yeni hedefler bulmak için yardımcı olabilir.

Intravital mikroskobu ile doğrudan gözlem canlı farelerde 5 dokuların içinde hücre dinamikleri hakkında bilgi sağlar. Dört renkli, çok-bölgeli, mikro mercekli döner disk konfokal sistemi meme tümörlerinin 6 olan stromal hücreler incelemek için dizayn edilmiştir. Bu yaklaşım uzun vadeli sürekli görüntülenmesine olanak sağlar ve bu hareket eserler en aza indirmek için, (a) hızlı görüntüleri edinme, (b) uzun süreli anestezi, (c) farklı hücre tiplerini takip dört renk satın alma, (d) floresan etiketleme gibi çeşitli avantajlar içermektedir Farklı tümör bileşenler ve farklı tümör mikroçevrelerde zeka (e) gözlemAynı fareyi hin fare değişkenliği 7-9 fare önlemek için. Bu teknoloji ile, farklı hücre davranışlar tümör oluşumunun progresif aşamalarını gösterir meme tümör virüsü (MMTV) promoterinin yükseltici sürüşlü polioma orta T onkojen (PyMT) modeli olarak bildirilmiştir. (Foxp3 EGFP transgen tarafından görüntülenmiştir Tregs) kan damarları yakınında tercihli göç düzenleyici T-lenfositler DH'lerin (CD11c'nin-DTR-EGFP), karsinom ilişkili fibroblastlar (FsP1 + / + -EGFP) ve miyeloid hücreleri (c-FMS ise -EGFP) tümör kitlesi içinde daha tümör çevresi daha yüksek hareketlilik gösterirler. Akut sistemik hipoksi durumda, hücreler farklı göç: Tregs 6 hareket etmeye devam miyeloid hücrelerinin aksine göç dur. Buna ek olarak, aynı fare modelinde, tümör aşaması ile bu doksorubisin duyarlılık değişiklikleri gösterilmiştir, ilaç dağıtım ilaç tepkisi ve doksorubisin ile ilgilidirTedavi tümörlere miyeloid hücrelerin CCR2 bağımlı işe yol açar. Böylece, canlı görüntüleme ayrıca yerinde ilaç yanıtları anlayışlar ve kemoterapi direncinin 10,11 biyolojisini kazanmak için kullanılabilir.

Adenomatus poliposis koli (APC), gen mutasyonu genel olarak insan kolorektal adenomlar ve karsinomlar 12 ve 13 kolon kanseri için son derece yüksek bir risk faktörüdür ailevi adenomatoz polipoz (FAP), APC gen sonuç tek bir kopyasının mutasyon meydana gelir. Fare suşu Süm Min / + Süm geni kodon 850 bir kesme mutasyonu taşıyan ve kendiliğinden bütün ince bağırsağın 14-16 üzerindeki birden fazla bağırsak adenomu gelişir. Periton boşluğuna açma bağırsak erişim için gerekli olduğu bağırsak uzun süreli intravital görüntüleme, çünkü işlemin invaziflik zordur. Kısa vadeli canlı görüntüleme studies önceden sağlıklı bağırsak 17,18 yayınlanmıştır ancak, bağırsak tümörleri uzun vadeli doğrudan gözlem rapor edilmemiştir. Bir cerrahi prosedür, daha önce Resim göğüs tümörlerinde 6,10 kullanılan İntra vital mikroskopik döner disk sistemi kullanılarak tasarlanmış ve bağırsak serozal yüzeyi boyunca tümörlerin görselleştirmek için rafine edilmiştir. Bu makalede, bir protokol bir Apc asgari / + fareleri kullanarak küçük bağırsakta da ötesi tümörler içerisindeki miyeloid hücrelerinin hareketlerine de takip etmesini sağlar tarif edilmektedir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

NOT: Tüm hayvan deneyleri Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC), ucsf tarafından onaylanan prosedürlere uygun olarak yapılmıştır. Tüm görüntüleme deneyleri hayatta olmayan prosedürler ve hayvanların görüntü elde sonunda hemen sonra ötenazi edildi.

1. Farelerin Üretimi

Not: Apc genindeki bir mutasyon taşıyan Apc Min / + fareleri, kendiliğinden ince bağırsakta 50-100 adenomlar gelişir.

  1. Çapraz Apc Min miyeloid hücreleri tespit etmek için c-fms ihtiva promotör altında EGFP ifade c-fms ihtiva EGFP hattı ile ACTB-eCFP aktin destekçisi altında eCFP ifade hattı, ve bundan başka, birlikte / + fareler. ACTB-eCFP ve c-fms EGFP için heterozigot olan hayvanlar, floresans tespit etmek için kullanılır.
  2. Görüntü net saptanabilir adenom için 3-4 aylık yaşta fareler kullanın.

M 2. HazırlıkAmeliyattan Önce aterials

NOT: mikroskop set-up detayları daha önce hiç 6,7 tarif var.

  1. Mikroskop
    1. Isıtma battaniye açın. 488 nm'de uyarma ve katı hal 405 nm, 561 nm ve 640 nm lazer argon lazer açın. Mikroskop açın, dönen disk kontrol birimi, AOTF, lazer kontrol ünitesi ve kamera denetleyicisi.
    2. LED kırmızıya döner mikroskop deklanşöre açın. Bilgisayar ve kamera yazılımı açın.
  2. Görüntüleme Platformu
    1. Sahne insert temiz olduğundan emin olun. Aksi takdirde, su ve sabun ve daha sonra kuru temiz.
    2. İki lamelleri al ve insert onları korumak için laboratuvar bandı kullanın. Sahnede parçayı yerleştirin ve alkol mendil ile temizleyin.
    3. Laboratuvar bant kullanarak, sahnenin sağ tarafına ısıtma battaniye takın.
    4. Burun konisi üzerindeki kauçuk diyaframın bütünlüğünü doğrulamak ve Mutlaka eğer bunu değiştirmekY. Konumu ve gazlı bez ve laboratuar bant kullanarak hayvana izofluran anestezi teslimat için burun konisi düzeltmek.
  3. İsofluranın Anestezi Sistemi
    1. Izofluran tankı doldurun.
    2. Vakum açın ve / dk 1.2 L ayarlayın.
    3. Nebulizere damıtılmış su ekleyin ve izofluran sisteme nebulizatörü bağlayın.
    4. Oksijen analizörü açın ve izofluran sisteme bağlayın. Oksijen deposu açın ve oksijen analizörü% 100 gösterir emin olun. 0,2 l / dk için O 2 akışını ayarlayın.
    5. Azot tankına açın ve / dk 0.8 L akışını ayarlamak. Oksijen analizörü 21% gösterdiğinden emin olun.
  4. Cerrahi Alet ve Platform Hazırlanması
    1. Sabun ve su ile diseksiyon forseps ve makas temiz 2 çift.
    2. Sıcak boncuk sterilizatör açmak ve 250 ° C ye izin verin. 30 sn için cerrahi aletleri sterilize. Onları soğumasını bekleyin.
    3. Cerrahi bankta bir laboratuvar sağanak yerleştirin.
    4. Cerrahi bir platform olarak bir Strafor kapağı kullanın. Laboratuar Batmışın bir parça ile örtün. Fareyi tıraş sonra değiştirmek için laboratuar Batmışın ikinci bir parça hazırlayın.
    5. Kaplı Strafor kapağındaki anestezi hattı ile burun konisi yerleştirin ve bazı bant ile (değil laboratuar ıslatıcıya üzerine) Strafor kapağına takın ve yerinde tutmak için burun konisi her iki tarafında iki iğne kullanın.
    6. Betadine, alkol mendil, steril gazlı bez, süper yapıştırıcı, mikroskop slaytlar, elektrikli tıraş makinesi, ve laboratuvar bant 4 adet birleştirin.

Enjeksiyonlar 3. hazırlanması

  1. Kapağın altında, bir insülin şırıngası hazırlanması (28 g x ½ cm) 2,000 kDa rodamin-dekstran (4 mg / ml 100 ul stok içine AF647 konjuge edilmiş Ly-6G (Gr1) antikoru (1 mg / ml), 7 ul ) retro-orbital enjeksiyon için. Bu hayvanlarda gelişen anemi kuyruk damarları difficu yapar bu yana retro-orbital enjeksiyon Süm Min / + farelerde tavsiye edilirlt deri yoluyla algılamak için.
  2. Bağırsağın peristaltik hareketlerini azaltmak için görüntüleme önce 1 mg / kg deri altından (sc), 150 ul PBS içinde seyreltilmiş atropin enjeksiyonu ile bir ikinci insülin şırınga hazırlayın.

Görüntüleme için Bağırsak 4. hazırlanması

  1. Indüksiyon odasına anestezi hattı açık ve cerrahi masa ve mikroskop çizgiler kapalı olduğunu doğrulayın.
  2. Anestezi odasına hayvan aktarın. Anestezi odasına kapatın ve (% 21 O 2)% 4 izofluran açın.
  3. Fare derinden ve yavaş yavaş (5-6 dakika sonra) nefes aldığında, onun kanadında cerrahi sahneye aktarmak ve Gr1 antikor çözüm ve / veya dekstran solüsyonu, retro-orbital enjekte.
  4. Cerrahi platforma bağlı anestezi hattını açın. Anestezi odasına hattını kapatın ve anestezi koni onun burun sırtında fare koymak.
  5. Izofluran azaltın% 4 den% 2.5 'e konsantrasyonu.
  6. Fare de onun Kapkaççı tutup kornea refleks testi ile anestezi doğrulayın.
  7. Anestezi altında iken kuruluğunu önlemek için gözleri oftalmik yağlama merhem ekleyin.
  8. Laboratuvar bant ekleyerek cerrahi aşamasına fare bacaklarda sabitleyin.
  9. Elektrikli tıraş makinesi ile ventral yüzeyi saç çıkarın. Ayrıca satın önce oksimetreden konumlandırmak için sol arka bacağındaki saç kaldırmak. Cerrahi aşamasından laboratuvar Sağanak çıkarın ve saç kontaminasyonu önlemek için temiz bir biri ile değiştirin.
  10. Alkol mendil ve betadin ventral yüzeyi dezenfekte edin.
  11. Fare bir böğrüne sc (3.2) atropin çözüm enjekte.
  12. Deri yoluyla 1 cm ventral orta hat kesi ve kullanarak makas ile periton ve forseps bir çift olun. Dikkatle bağırsak 3-4 cm çekin ve görüntü bir veya birkaç tümörleri tespit.
  13. Cam MICR almakOscope slayt pozisyonu ve üst kısmında bir tümör ile üzerine bağırsağın bir döngü.
  14. Slayt takmak için bağırsak boyunca birkaç yerde bazı süper yapıştırıcı ekleyin. Tutkal kuruması için bir dakika bekleyin. Konfokal ile lokalizasyon kolaylaştırmak için tümöre işaret sürgü üzerinde bir çizgi çizmek için bir işaretçiye kullanın.

5. Konumlandırma Sahne üzerinde Fare ve Hazırlık Image Acquisition için

  1. Bacaklarda laboratuvar bandı çıkarın.
  2. Mikroskop sahneye anestezi hattını açın ve cerrahi platforma birini kapatın.
  3. Aşağı ventral yüzü ve burun konisi burnunun ile mikroskop aşamasında dikkatlice fare aktarın. Bazı laboratuvar bant ile anestezi hattını sabitleyin.
  4. Yeniden konumlandırmak kapak astarlı pencerelerden birinin merkezinde bağırsak olması için fare ve / veya slayt. Yavaşça laboratuvar bant ile slayt aşağı bantlayın.
  5. Farenin sol bacağa için oksimetre probu takınonun kalp ve solunum hızı ve oksijen satürasyonu düzeylerini izleyin.
  6. Hipotermi önlemek için ısıtma battaniye ile fareyi örtün.
  7. Görüntüleme için 1-1.5% 2,5 den% izofluran konsantrasyonu azaltır.

ΜManager Yazılımı Kullanarak Görüntüleri 6. kazanılması

  1. Yapılandırma Ayarlar görüntü kalitesini iyileştirmek için 2.500 rpm CSUX hızını artırın.
  2. 10X 0.5 NA veya 20X 0.75 NA Fluar objektif hedefi seçmek için Amaç açılır menüsünü kullanın.
  3. Renk açılır menüden lazer 405 nm seçin.
  4. Live tıklayın ve mikroskop ile odağı ayarlayın.
  5. Otomatik olarak görüntüdeki aşırı piksel değerlerine dayanan Ekrandaki görüntünün maksimum ve minimum piksel yoğunlukları ayarlamak için Otomatik tıklayın. Ekran görüntüsünün piksel yoğunluğunun bir histogram Ana Pencere alt kısmında grafikte sunulmuştur.
  6. Tarafından Piper Denetim Masası penceresinde kamera pozu ayarlayınsaatlerin sayısını (Bir saat 33.333 msn'dir) değişiyor.
  7. Sinyal düşük pozlama ile çok parlak ise, mikroskop kontrol birimini kullanarak lazer yoğunluğunu azaltmak.
  8. 488 nm, 561 nm ve 640 nm lazer çizgileri için sinyal yoğunluğu kontrol edin. Lazerin kendi kontrol ünitesi (488 nm ve 561 nm) veya mikroskop kontrol ünitesi ile lazer yoğunluğunu ayarlayın.
  9. Çoklu D Toplama penceresinde, Zaman noktaları kutusunu işaretleyin ve zaman noktalarının sayısını ve istenilen zaman aralığını yazın.
  10. , Z-yığınlarının kutusunu işaretleyin "göreli Z" seçin ve mevcut konumda Z-start ve Z-uç göreli tanımlar.
    NOT: 10X veya 20X hedefi için ayrı sırasıyla 3 Z uçakları, 8 mm veya 4 mikron ile başlar.
  11. Çeşitli yerlerde görüntüleme için birden çok pozisyonlar (XY) onay kutusunu, ardından Düzen pozisyon listesini tıklatın 4 ila 6 farklı pozisyonlar işaretleyin.
  12. Kanallar kutusunu işaretleyin ve Yeni kanalları ekleyebilir ve lazer yazıcılarını açılır menü ve typ satırları seçin(33.333 msn adedi) her kanal için maruz e.
  13. "Çoklu D kazanım" penceresinde Kaydet görüntüleri kontrol edin.
  14. Bir klasörü seçin ve elde edilen tüm görüntüleri otomatik olarak verilen isim öneki ile bu klasöre kaydedilir.
    NOT: Her sürekli tedarik her zaman noktasında her renkte her Z dilim için ayrı tiff dosyaları olarak ayrı bir alt klasörde kaydedilir.
  15. Çoklu D Toplama penceresinde Ayarları kaydet tıklayarak tüm ayarları kaydedin.
  16. Edinimi başlatmak için Çok boyutlu Toplama penceresinde Al'ı tıklatın.
  17. Oksimetre probu kullanılmaz ya da durması halinde (darbe sabit veya tespit etmek zor değil olduğunda), Kapkaççı tutup kornea refleksi kontrol ederek anestezi verimi görüntüleme işlemi sırasında her 15 dakikada bir kontrol edin. Fare bu uyaranlara duyarlı ise, anestezi ayarlayın.
  18. Aldıktan sonra, izofluran yoğunlaşan artırarak fare euthanize% 5 oranı. Hiçbir solunum hareketleri saptanabilir olduğu, sahneden fare kaldırmak ve servikal çıkık gerçekleştirin.

Imaris Yazılımı Kullanarak Görüntüleri 7. Analiz

  1. Dönüşüm Dosyaları (Ek Şekil 1A) .ims için
    1. , Kamera yazılımı açın Dosya daha sonra Batch Converter tıklayın.
    2. Tıklayın dosya ekleme ve ilk pozisyonun ilk dosyayı seçin. Her pozisyon için tekrarlayın.
    3. Yüklenen her dosya için, Ayarlar üzerine tıklayın ve Z-yığınları için Zaman Kanallarının için, "c" ve "z" için ayarlar "t" bu sırayla görünür doğrulayın.
    4. İstediğiniz klasöre kaydedin. İnsanlar ve dönüştürülmüş olarak yeni bir dosya oluşturun.
    5. Tüm için Set tıklayın ve başlayın.
  2. Düzeltmeler (Ek Şekil 1B)
    1. Belirli Dönüştürülen klasörüne gidin ve ilk dosyasını açın.
    2. Ekran Ayarı penceresinde, arka plan ayarlamakGerekirse her kanal için Min numarasını değiştirerek sinyal kesme.
    3. Gerekirse, Çok sayıda (en alt Çok sayıda yüksek sinyalin yoğunluğu) değiştirerek, sinyal yoğunluğu ayarlayın.
      NOT: sinyal yoğunluğu / kontrast ayarlamaları güzel bir görselleştirme olması için bir hücre davranışı ya da bir bölmesinin vurgulamak etkinleştirin. Bu sonuç kendisi değişmez.
    4. Düzen ve Görüntü Özellikleri tıklayın.
    5. X, y, ve z değerlerini değiştirin (10X objektif, x ve y = 0,712, z = 8 mikron için, bir 20X objektif için: x ve y = 0.36, z = 4 mikron).
    6. Zaman noktalarını ayarlamak için tüm eşit mesafede tıklayın. Başlangıç ​​tarihini ekleyin ve satın alma başlangıç ​​zamanı. Bitiş tarihini ekleyin ve iktisap (Ek Şekil 1C) zaman sonuna.
    7. Film izlemek için Oynat düğmesine tıklayın.
    8. Düzenle'yi tıklatın ve bulanık görüntüleri silmek için zaman noktaları silin.
    9. İki ayrı satın almalar Toge katılmak içinther bir film içine, ilk filmin son kez noktasına gidin ve Düzenle üzerine tıklayın> ikinci bir dosya eklemek için zaman puan ekleyin.
  3. Bir film olarak kaydetme (Ek Şekil 1D)
    1. , Record tıklayın .mov uzantısı ve 0 bir sıkıştırma faktörü seçin.
    2. Kaydet butonuna tıklayın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

ACTB-eCFP;; Süm Min / + küçük bağırsakta dönen disk konfokal mikroskopi, tümöral olmayan ve tümoral dokuları kullanılarak c-fms-eCFP farenin seröz yüzeyden görülebilir. Görüntüleme sonra, kamera yazılımı analiz ve satın alma (Ek Şekil 1) ayarlamak için kullanılır. Floresan 2000 kDa dekstran-rodamin intravenöz (IV) enjeksiyonu ve bir Ly-6G 647 ile konjüge edilmiş antikor, sonra, kan damarları ve PMN idi (Şekil 1) tespit edilebilir. Lenfoid doku topla...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu yazıda ayrıntılı protokol bağırsak serozal taraftan görüntülenmiş bir canlı hayvanda bir kaç saat için intestinal tümörlerde miyeloid hücre dinamikleri disk confocal görüntüleme eğirme için bir işlem açıklanmaktadır.

Inflamasyonu önlemek için ve en iyi fizyolojik koşulları için, bağırsak görüntüleme, bozulmamış organ üzerinde yapılmalıdır. Işık epitel ulaşmadan önce bu tür düz kas olarak çeşitli doku katmanlarının geçmesi gerekir Ancak, bağırsak serozal tarafından görüntüleme güçtür. Akti...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Biz Süm Min / + farenin genotiplemeye Ying Yu teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma INSERM fon ve Sağlık Ulusal Enstitüleri hibe (CA057621 ve AI053194) tarafından desteklenmiştir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
ApcMin/+ farelerJackson Laboratuvarı2020
ACTB-ECFP farelerJackson Laboratuvarı3773
cfms-EGFP farelerJackson Laboratuvarı18549
2.000 kDa Dekstran, rodamin konjugeInvitrogenD7139
İzofluranButler Hayvan Sağlığı Temini29450
AzotUCSF
OksijenUCSF
1x PBSUCSF hücre kültürü tesisi
Tuzlu TamponUCSF hücre kültürü tesisi
Anti-fare Ly-6G (GR1) antikoru AF647UCSF Monoklonal antikor çekirdeğiStok 1 mg / ml. 7 & mu'da kullanın; g/fare
AtropinLARC UCSF1 mg/kg farede kullanın
Alkollü mendillerBecton Dickinson326895
28 G x 1/2 inç. insülin şırıngasıBecton Dickinson329465
Remium kapak camıFisher Scientific12-548-5M24x50-1
BetadineLARC UCSF
Isı battaniyesiGaymar Endüstriler
Sıcak boncuk sterilizatörüGüzel Bilim Araçları18000-45Kullanmadan 30 dakika önce AÇIN
Pamuk uçlu aplikatörler 6 inçElektron Mikroskobu Bilimleri72310-10
Anestezi sistemiZirve Anestezi Desteği
Ters mikroskopCarl Zeiss IncZeiss Axiovert 200M
Sahne ekiUygulamalı Sientifik Enstrümantasyon
Mouse Ox oksimetre, yazılım ve sensörlerStarr Yaşam BilimleriMouseOx
NebulizatörZirvesi Anestezi Desteği
ImarisBitplane
μ Yönetici: Vale laboratuvarı, UCSFAçık kaynaklı yazılım
ICCD kameraStanford Photonics,XR-Mega-10EX, S-30
Eğirme diski, konfokal, sacan-head,Yokogawa CorporationCSU-10b
,, , ,

Kaynaklar

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144 (5), 646-674 (2011).
  2. Hanahan, D., Coussens, L. M. Accessories to the crime: functions of cells recruited to the tumor microenvironment. Cancer Cell. 21 (3), 309-322 (2012).
  3. Schouppe, E., De Baetselier, P., Van Ginderachter, J. A., Sarukhan, A. Instruction of myeloid cells by the tumor microenvironment: Open questions on the dynamics and plasticity of different tumor-associated myeloid cell populations. Oncoimmunology. 1 (7), 1135-1145 (2012).
  4. Egeblad, M., Nakasone, E. S., Werb, Z. Tumors as organs: complex tissues that interface with the entire organism. Dev Cell. 18 (6), 884-901 (2010).
  5. Lohela, M., Werb, Z. Intravital imaging of stromal cell dynamics in tumors. Curr Opin Genet Dev. 20 (1), 72-78 (2010).
  6. Egeblad, M., et al. Visualizing stromal cell dynamics in different tumor microenvironments by spinning disk confocal microscopy. Dis Model Mech. 1 (2-3), discussion 165 155-167 (2008).
  7. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Dynamic long-term in vivo imaging of tumor-stroma interactions in mouse models of breast cancer using spinning-disk confocal microscopy. Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), pdb top97 (2011).
  8. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Monitoring of vital signs for long-term survival of mice under anesthesia. Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), pdb prot5563 (2011).
  9. Ewald, A. J., Werb, Z., Egeblad, M. Preparation of mice for long-term intravital imaging of the mammary gland. Cold Spring Harb Protoc. 2011 (2), pdb prot5562 (2011).
  10. Nakasone, E. S., Askautrud, H. A., Egeblad, M. Live imaging of drug responses in the tumor microenvironment in mouse models of breast cancer. J Vis Exp. (73), e50088(2013).
  11. Nakasone, E. S., et al. Imaging tumor-stroma interactions during chemotherapy reveals contributions of the microenvironment to resistance. Cancer Cell. 21 (4), 488-503 (2012).
  12. Walther, A., et al. Genetic prognostic and predictive markers in colorectal cancer. Nat Rev Cancer. 9 (7), 489-499 (2009).
  13. Fearon, E. R. Molecular genetics of colorectal cancer. Annu Rev Pathol. 6, 479-507 (2011).
  14. Moser, A. R., Pitot, H. C., Dove, W. F. A dominant mutation that predisposes to multiple intestinal neoplasia in the mouse. Science. 247 (4940), 322-324 (1990).
  15. Su, L. K., et al. Multiple intestinal neoplasia caused by a mutation in the murine homolog of the APC gene. Science. 256 (5057), 668-670 (1992).
  16. Watson, A. J., et al. Epithelial barrier function in vivo is sustained despite gaps in epithelial layers. Gastroenterology. 129 (3), 902-912 (2005).
  17. McDole, J. R., et al. Goblet cells deliver luminal antigen to CD103+ dendritic cells in the small intestine. Nature. 483 (7389), 345-349 (2012).
  18. Xu, C., Shen, Y., Littman, D. R., Dustin, M. L., Velazquez, P. Visualization of mucosal homeostasis via single- and multiphoton intravital fluorescence microscopy. J Leukoc Biol. 92 (3), 413-419 (2012).
  19. Haigis, K. M., et al. Differential effects of oncogenic K-Ras and N-Ras on proliferation, differentiation and tumor progression in the colon. Nat Genet. 40 (5), 600-608 (2008).
  20. Sansom, O. J., et al. Loss of Apc allows phenotypic manifestation of the transforming properties of an endogenous K-ras oncogene in vivo. Proc Natl Acad Sci U S A. 103 (38), 14122-14127 (2006).
  21. Janssen, K. P., et al. APC and oncogenic KRAS are synergistic in enhancing Wnt signaling in intestinal tumor formation and progression. Gastroenterology. 131 (4), 1096-1109 (2006).
  22. Takaku, K., et al. Intestinal tumorigenesis in compound mutant mice of both Dpc4 (Smad4) and Apc genes. Cell. 92 (5), 645-656 (1998).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Apc Min FarelerBa rsak T m r G r nt lemeFloresan Raporlay c Farelerntravital G r nt lemeT m r Mikro evresi AnaliziKan Damar EtiketlemeN trofil TespitiTime lapse Mikroskopi
Miyeloid hücrelerin Dynamics Gerçek zamanlı Görüntüleme Süm Min / + Bağırsak Tümörleri Disk Eşodaklı Mikroskopi Spinning tarafından
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.