Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Subaraknoid Kanama Akut ve Geç sekeli Çalışmaları Tavşan Kan şant Modeli: Teknik Yönleri

13.2K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/52132

⸱

2 Ekim 2014

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Intensive Care Medicine, University and Bern University Hospital (Inselspital), 2Department of Neurosurgery, Kantonsspital Aarau, 3Laboratories for Neuroscience Research in Neurosurgery, Boston Children's Hospital, 4Harvard Medical School, Boston Children's Hospital, 5Department of Neurosurgery, University and Bern University Hospital (Inselspital), 6Department of Neurosurgery, University Hospital Cologne, 7Institute of Pathology, Länggasse Bern

Bu makalede

Özet

Tavşandaki deneysel intrakraniyal basınç kontrollü kan şantı subaraknoid kanama (SAK) modeli, standart prosedürleri birleştirir - subklavyen arter kanülasyonu ve transkutanöz sisterna magna ponksiyonu, SAK sonrası insan patofizyolojik durumlarının yakından taklit edilmesini sağlar. Adım adım talimatlar sunuyoruz ve başarılı deneysel SAK oluşturma için temel cerrahi noktaları tartışıyoruz.

Özet

Erken beyin hasarı ve gecikmiş serebral vazospazm hem subaraknoid kanama (SAK) sonrası istenmeyen sonuçlara katkıda bulunur. Her iki koşullarını simüle tekrarlanabilir ve kontrol hayvan modelleri halen nadirdir. Bu nedenle, yeni model SAH'dan Oluşan insan patofizyolojik koşullarda bunların taklit edilmesi için ihtiyaç vardır.

Bu rapor, intraserebral basıncın (ICP) kontrol edilmesini sağlayan bir tavşan kanlı-SAK şant modeli teknik nüansları açıklar. Bir ekstrakorporeal şant arteriyel sistemi ve kapalı kafa içinde sınav bağımsız SAK sağlayan subaraknoid, arasına yerleştirilir. Adım adım prosedürel talimatlar ve gerekli ekipman açıklanan, yanı sıra teknik değerlendirmeler minimal mortalite ve morbidite ile model üretmek için. Bu, sağlam, basit ve tutarlı ICP-kontrollü SAK tavşan modelinin başarılı cerrahi yaratılması için gerekli Önemli detaylar açıklanmıştır.

Giriş

Anevrizmal subaraknoid kanama (SAK) sık sık kalıcı nörolojik hasar veya ölüm 1 yol açan, nöropatolojik tehdit eden koşulların en hayat biridir. Geçmişte araştırma SAK 2 ile ilişkili nörolojik hasarların başlıca etkeni olarak gecikmiş serebral vazospazm (DCVS) odaklanmıştır. Ancak, vazospazm tedavisi sonrası SAK mustarip hastaların genellikle zayıf klinik sonuçları SAK 3 sonrası erken beyin hasarı (EBI) etkilerini içerecek şekilde araştırma odak genişlemesine yol açmıştır. SAK sonrası kötü klinik sonuçlara katkıda EBI ve DCVS hem öneminin daha iyi anlaşılması daha etkin tedavi stratejilerinin geliştirilmesi için esastır.

Şimdiye kadar, cisterna magna içine tek ve çift otolog kan enjeksiyonu DCVS 2-6 çalışma için SAK indüksiyonu için standart yöntem olmuştur. Daha önceki çalışmalarda yaygın olarak kullanılan rağmen,Bu model, büyük olasılıkla SAK ile ilişkili nöropatolojık önemli değişiklikleri yeniden değil EBI'ya 7 kaynaklı. Bunun aksine, endovasküler perforasyon kısmen EBI 7 semptomlarını şiddetli akut patofizyolojik değişiklikler üretilmesi bilinmektedir.

Bu rapor SAK yeni bir tavşan modeli tarif tekniği ile, standart sisterna magna modeli arter sistemi bağlayarak uyarlanmıştır. Böylece ŞAH-kaynaklı patoloji 8-10 daha doğru karakterizasyonu izin EBI ve DCVS hem soruşturma sağlamak için tasarlanmıştır açıklanır dışı bir köprü aracılığıyla subklavyan arter ve sisterna magna. Kan akışı artar ve tavşan fizyolojisi ile bağlantılıdır ve arteryel kan ve kafatası içi basıncı arasındaki basınç gradyanı ile tahrik edilir. Intraserebral basıncı (ICP) diastolik kan basıncı eşittir ve şant sisteminde kan pıhtılaşır zaman kanama durur. Ana & # kullanılması8217; fizyoloji güvenilir EBI ve DCVS fenotipleri 3,8-10 iki üreten SAK daha tutarlı bir modelini oluşturmak üzere, araştırmacı bağımlı SAK indüksiyon azaltır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

2.5 ağırlığındaki üç aylık dişi Yeni Zelanda tavşanları - 3.5 kg Bu prosedür kullanılmıştır. Çalışma deney hayvanlarının bakımı ve kullanımı için sağlık kuralları National Institutes uygun ve Bern, İsviçre (onay # 105/13) Kantonu Hayvan Bakım Komitesi onayı ile yapıldı. Tüm cerrahi işlemler Bern, İsviçre Bern Üniversitesi Hastanesi'nde Klinik Araştırma Bölümü Deneysel Cerrahi Enstitüsü steril koşullar altında gerçekleştirilmiştir. Bir veteriner cerrahi esnasında anestezi ve geri boyunca hayvanları izlendi.

1. Hayvan Hazırlama, Konumlandırma ve Köprücük Arter Kanülasyon

  1. Kas içine ketamin enjeksiyonu ile tavşanda genel anestezi neden (30 mg / kg Ketalar, 50 mg / ml) ve ksilazin (Kg 6 mg / gün; Xylapan 20 mg / ml) zararlı için tavşan tepkisini kontrol ederek ve anestezi kontrol derinliği stimulatiyon (örneğin, ayak tutam). Pozitif karşılık durumunda 1.7 'ye bakınız.
  2. Her iki gözün alt kapaklarını aşağı çekin ve kuruluk ve tahrişi daha da önlemek için göz kapaklarının için merhem küçük bir miktar uygulanır.
  3. , 20 Gbutterfly Venflon (20G damar kateteri) ile yanal kulak damar kateterize yapışkan bant ile yapışması ve% 0.9 sodyum klorür ihtiva eden bir ağırlık torbasına (500 ml / 24 saat) ve ketamin bağlantı (40 mg / kg / saat) sürekli damar içine (iv) anesteziye / ksilazin (4 mg / kg / saat). Ek analjezikler her 15 dk iv (Fentanil, 1 mcg / kg) yönetmek. Not: CPP azalma ile ilişkili uçucu gaz anestezikler, CBF artan ve oksijen için serebral metabolik hızı azalan kaçının 11 İntravenöz anestezikler serebral okuyan zaman en üst önem taşımaktadır CBF ve serebral vazokonstriksiyon, 12 koruyarak neuroanesthesia için daha ideal özellikleri sağlamak. vazospazm. Buna ek olarak, her ne kadar ölüm SPONT'da artarerişmesi hayvanlar nefes, daha iyi akut SAK insani durumu taklit edebilir.
  4. End-tidal karbon dioksit sağlayan bir solunum maskesi ile - (2 L / dk 1) (EtCO 2) izleme oksijen sağlayın.
  5. Tavşan ventral tarafta bir üçgen düzende 3 kanal elektrokardiyografi (EKG) .Sıra üç cilt altı elektrotlar yükleyin; Özellikle, hem bacaklarda üzerinden dağıtılan alt karın ve iki elektrot (subklavyen arter kanülasyon için steril traş alanına mesafe ile) sağ midthoracic bölge üzerinde bir elektrot yerleştirin.
  6. Solunum hızı, EKG sinyalinden izlenen kalp hızı (HR) ve zararlı uyarıma reaksiyonu takiben anestezi derinliği ameliyat sırasında her 15 dakikada izleyin.
  7. Zararlı uyarılmanın (ayak tutam) olumlu yanıt durumunda, ketamin bolus (6 mg / kg) iv ve ksilazin bolus (0.05 mg / kg) iv ve / veya Fentanilin ile ek analjezi bolus (1 mc ile anestezi derinliği uyumg / kg), iv
  8. Aşağı başını 20 ° eğilebilen ve subklavyen arter maruz kalacağı hangi tarafa hafifçe kontralateral çevirerek, bir vücut ısınma plaka üzerinde yatar pozisyonda tavşan Fix.
  9. Merhem uygulamak ve klavikula orta üçte sağ göğüs kasının üzerinde saç tıraş tarafından ameliyata alanı hazırlamak ve, verir ön parietal- ve oksipital kafatası, boyun ve sağ femoral arter üzerinde.
  10. Antiseptik geniş bir spektrumda, örneğin., Povidon-iyot ile 3 dakika boyunca cildi dezenfekte edin.
  11. Steril levhalar ile tavşan örtün. Damar manipülasyon ve yerel enfeksiyonlar arteriyel vazospazm engellemek üzere topik olarak, steril koşullar altında tüm diğer prosedürleri gerçekleştirmek sık HCI ve antibiyotik solüsyon (neomisin sülfat, 5 mg / ml),% 4, papaverin uygulanır.
  12. Lokal anestezik (lidokain% 1 maksimum 6 mg / kg) ile pektoral kas sızmak. Bir Parasternal cilt kesi yapmak ve hazırlamakpektoral kas. Mikroskop kullanılarak, subklavian arter incelemek ve maruz sonuna etrafında bir yakın ve uzak dikilen (4-0 polyfilament dikişlerle) ile sabitleyin. Kateter güvenli ve distalde damar Arter yerinde proksimal kontrol yakın bir ligatürün tutun.
  13. Bir kavisli microscissor ile arter kesisi ile subklavyen arter duvarında bir arteriyotomi gerçekleştirin ve küçük damariçi 3-yollu ile retrograd subklavian arter cannulate. Arteriyel bükülmesini ya arterin proksimali bükme önlemek ve kayma veya masif kanama önlemek için uzak dikilen doğru çift düğüm dikilen tarafından kateter sabitleyin.

2. Tansiyon ve Arter Kan Gazı İzleme

  1. I 3-yollu vanasını), damar arteriyel kan gazı için kanül (ABG) analizleri, pH, PaCO2, PaO2, bikarbonat, baz fazlalığı ve SO 2 bağlayın, ii) invaziv arteriyel kanBasınç ölçüm cihazı ve iii) şant cihazı.
  2. ABG durumu için kan örnekleri (PaCO2, PaO2) toplayın ve sürekli bir Analog- standart kardiyovasküler ve solunum parametreleri (kan basıncı, kalp hızı, EKG, solunum hızı ve tidal sonu CO 2) analog çıkış arayüzü üzerinden veri transfer ve monitör dijital dönüştürücü / veri kaydedici ve mağaza.
    NOT: basınçları önce ve her seanstan sonra kalp seviyelerde zeroed olacak ve serisi başlamadan önce, analog / dijital dönüştürücü ve veri giriş sistemine basınç kalibrasyonu kez yapılacaktır.

3. Temel Dijital Substraksiyon Anjiyografi

  1. Anjiyogramla kalibre için her iki mandibul açıları üzerinde harici bir boyutlandırma cihazı (küçük küre) yerleştirin.
    NOT: Bu başlangıca post hoc ölçümlerinin kesin karşılaştırılmasına olanak sağlar ve damar çapını izleyin.
  2. Retrograd içi a göre sayısal çıkarım anjiyografisi (DSA) gerçekleştiriniyonik olmayan iopamidol arasında rterial bolus enjeksiyonu arter yoluyla kanül (0.6 ml / kg, 2 saniye süre ile 5 ml / sn) ve ikinci tıkanmasını önlemek için tuz ile bolus enjeksiyondan hemen sonra kanülün fışkırması.
  3. 5 ° sol ön oblik pozisyonda hızlı sıralı anjiyografi kayıt kullanılarak Vertebrobaziler sistemin görüntüleri (14 sn 7 görüntüler) edinin.
  4. Lokal anestetik (% 1 lidokain, maksimum 6 mg / kg) ile sağ femoral arter çevresine enjekte. Küçük bir inguinal cilt kesi olun. Görselleştirme için mikroskop kullanılarak, femoral arter incelemek ve maruz sonuna etrafında bir yakın ve uzak dikilen (4-0 polyfilament dikişlerle) ile sabitleyin.
  5. Arteriyotomi sonra, 5-F kılıfla femoral artere kanül. Tuzlu su ile kılıfın yan bağlantı noktası yıkayın.
  6. Floroskopi altında kılıf içinden brakiyosefalik artere 5 F kateter ilerlemek. Bir yol haritası oluşturma, daha sonra th bir kılavuz tel ilerlemeke vertebrobaziler sistem. Adım 3.2 'de tarif edildiği gibi DSA için (0.6 ml / kg, 2 saniyede 5 ml / sn) iyonik olmayan iopamidol bir bolus enjekte edilir.

Yüzüstü Pozisyon 4. Rotasyon

  1. Bazal DSA ardından, sırtüstü yüzüstü pozisyona tavşan yeniden konumlandırmak. Manipüle veya intra-arteriyel kateter pozisyonunu taşınmaya dikkatli olun.
  2. Baş aşağı odaklı, 30 ° açıyla bir kafa-tutucu kafa yerleştirin.

5. Cisterna Magna Delinme

  1. 1 dakika her biri için Povidon-iyot ile 3 kez baş ve boyun cildi dezenfekte ve steril levhalar ile cerrahi alanı kapsayacak.
  2. Önceden cilt kesisi veya kas deplasman olmadan transkutanoz sisterna magna içine 22 G x 40 mm pediatrik spinal erişim iğne takın.
  3. Hayvan tamamıyla kemik dış oksipital çıkıntı boyunca yukarı iğne kaydırarak önce ayak parmağı sıkıştırma tepkisinin olmaması sağlanarak anestezi olduğundan emin olunbir boşluk tespit edilinceye kadar; başka iğne itmeyin.
  4. Bir kaç dakika boyunca 20 ° açıyla aşağı eğik tavşan kafası ile beyin omurilik sıvısının spontan damlayan gözlemleyerek iğnenin doğru konumlandırılmasını onaylayın.

İntrakraniyal Basınç ve Serebral Kan Akışı İzleme 6. Kurulum

  1. Orta hat cilt ve galea kesi sonra, küçük bir cerrahi ekartörünü yerleştirin.
  2. Bir nörolojik görüntüleme, aygıtın yerleştirilmesi için koku ampul ve ikili frontal üzerinde üç tur osteotomiler (2 mm çaplı), dış kafatası noktalarına göre kafatasının ön kısmında yüksek hızlı mikrotur ile (Şekil 1) 9, yani yap Gerekli. Aşağıdaki gibi çapak delik yerleştirme için koordinatlarını belirlemek için bir milimetre çaplı cetvel kullanın: midpupillary hattında Kafa içi basınç (ICP) izleme, midsagittal çizgisinden iki mm bir; intraparenkimal lazer Doppler sondaları4-5 mm ön ve bregmaya yanal (Şekil 1).
  3. Dura görselleştirmek ve titiz hemostaz gerçekleştirin: kendi tamponad eylem nedeniyle kemik hemostaz için kemik mumu kullanmak ve dura bipolar pıhtılaşmasını kullanarak yerel hemostaz gerçekleştirin.
  4. 2 mm derinliğe kadar doğru koku ampul içine intraparenkimal intrakranial basınç (ICP) monitör ucu yerleştirin ve sonra kalibre.
  5. Harici bir kelepçe sistemi kullanarak iki lazer Doppler flowmetre ince iğne probları yerleştirin ve sağ ve sol frontal hemisfer hem de beyin omurilik sıvısı karışmalarını önlemek için orta hatta, ventriküler sistemde, yani lateral olarak gelen çapak deliklerin içine yerleştirin. 2.5 mm derinliğe kadar iğne probları yerleştirin.
  6. Nörolojik görüntüleme sondaları yerleştirilmesinden sonra kafatası sıvı geçirmez tutmak için kemik mumu kalın bir fiş Tüm Burr deliği mühür.
  7. Ortalama arteriyel kan basıncı bazal parametreleri ölçmek (MAP), ICP ve mültiparametreli monitör ve dört kanallı lazer Doppler doku kan perfüzyon monitör kullanarak serebral kan akımı (CBF).

7. Şant İndüksiyon

  1. Kan dolu basıncı izleme tüp aracılığıyla önceden Kateterize subklavyan arter sisterna magna spinal erişim iğne bağlayın. Kan basıncı ölçümü ve kan örnekleme noktası olarak 3 yollu valf kullanır.
    Not: SAK şiddeti kan miktarına bağlıdır ve yaklaşık 5,11 beyin hasat zamanında subaraknoid pıhtılarının yaygınlığı ile tahmin edilebilir.
  2. Sürekli SAK sonrası en az 20 dakika kadar önce 6 dakika 1 Hz örnekleme hızında MAP, HR, EKG, solunum hızı ve sonunu-gelgit CO 2 monitör.
  3. Hayvan tam subklavyan arter ve sisterna magna basınç Gradie tarafından SAK ikna etmek arasındaki şant bağlantıyı açmadan önce ayak tutam yanıt eksikliği sağlayarak anestezi doğrulayınnt.
    Not: (örn., ICP arzu edilen bir düzeyde) bir kontrol SAK herhangi bir zaman noktasında şant kapatma ile elde edilebilmektedir.
  4. Yaklaşık 15 dakikalık bir süre içinde kararlı durum değerlerini kaydedin.
  5. ICP zirveye ulaşır sonra ICP başlangıç ​​değerlerine yakın bir kararlı duruma dönene kadar, yerinde spinal erişim iğne tutmak. ICP plato fazla 10 sn boyunca muhafaza veya ICP kendiliğinden azalırsa, şant kapatmak durumunda.
  6. (Ardışık kanama ile kateter manipülasyonu, yüksek morbidite ve mortalite ile ilişkili, ve enfeksiyon oranını artırır çünkü, subklavian kateter dahil) tüm sonda, kemik balmumu ile Burr deliği fiş, CBF ince iğne probları ve ICP prob kaldır titiz yara sulama yapmak neomisin sülfat ve cilt sütür.

8. Ameliyat sonrası Yönetimi

  1. İşlem yaklaşık 2 saat sürer. Nedeniyle ketamin ve ksilizin, Anima iyileşme süresi yarı-ömürlerineYaklaşık 1 saat - l oldukça kısadır. Hayvanlar kurtarma sırasında bir ısıtma lambası altında tutulur. Ek sıvılar verilmemektedir. Bu ilk ameliyat sonrası iyileşme aşamasında, buprenorfin, 0.02 mg / kg sc, 24 saat boyunca her 8 saat uygulanır.
  2. Bir sonraki 72 saat içinde etkin analjezi için, hayvanların boyun bölgesinde traş 12.5 ug / saat serbest transdermal fentanil matris yamaları uygulayın.
  3. O sternum yatma korumak için yeterli bilince kavuşana kadar gözetimsiz bir hayvan bırakmayın.
  4. Tamamen iyileşene kadar diğer hayvanların şirket ameliyatı geçirmiş bir hayvan iade etmeyin.

3. Günde DCVS değerlendirin Dijital Çıkartma Anjiyografi takip 9.

  1. Yukarıda açıklandığı gibi 3,6 Adımları 1.1 gerçekleştirin.
  2. Sodyum tiopental intraarteryel bolus enjeksiyonu (40 mg / kg) ile hayvanlar öldürülür (pentotal, Ospedalia AG Hünenberg, İsviçre). Durumlarda histoloji ve immunohist içindeochemistry gereken, 100 cm H2O bir perfüzyon basıncı altında oda sıcaklığında bir kalp içi perfüzyonla fiksasyonu gerçekleştirmek

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

SAK tavşan kanı şant modeli Bu raporda açıklanan, bazal korteks (Şekil 2A, B), ve serebral damar (Şekil 2C) gibi erken 24 olarak saat yaralanma sonrası (B Şekil 2A) hipokampus EBI'ya üreten ve karakteristik gösterir kan dağılımı (Şekil 2B) 8. Buna ek olarak, model SAK uyandırmasıyla (Şekil 3) 10 gün sonra, üç ile DCVS şiddetli derecede orta tetikler. Akut SAK sırasında solunum durması ya da ciddi bradikardi nedeniy...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Şant modeli akut SAK 3,8,10 sonra insanlarda gözlenene benzer bir patoloji üretir. Bu EBI arttıran korumak ve hatta DCVS 12 tetikleyebilir ve bunlar da bu model, SAH takip EBI ve DCVS etkileşimler de dahil olmak üzere, erken ve geç DCVS fazlar, iki araştırılması için yardımcı olabilir olabileceğini öne sürülmüştür. Özellikle, tekrarlanabilir in vivo DCVS DSA 13 olmak üzere izleme teknikleri, 15 daha readibly küçük laboratuvar hayvanlarında daha tavşanlarda uygulanan b...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Hiç kimse. Yazarların kullanılan ilaç, malzeme veya ekipmanların hiçbirinde mali veya ticari çıkarı yoktur. Bu çalışma için özel bir fon alınmadı. Yazarlar, sunulan çalışmanın tasarımından ve yürütülmesinden tek başına sorumludur ve bu çalışmada kullanılan materyal ve yöntemler veya makalede belirtilen bulgularla ilgili herhangi bir çıkar çatışması bildirmemektedir. Etik standartlara bağlılığı onaylarlar. Çalışma, deney hayvanlarının bakımı ve kullanımına ilişkin Ulusal Sağlık Enstitüleri yönergelerine uygun olarak ve İsviçre'nin Bern Kantonu Hayvan Bakım Komitesi'nin onayı ile gerçekleştirildi (onay #109/07 ve #107/09).

Teşekkürler

Yazarlar Boston, MA ilk taslağını düzeltiyorum için redaksiyon ve el yazması düzenleme ve Paskus Yeremya, Boston Çocuk Hastanesi, için, Laurie von Melchner, Bern Üniversitesi Hastanesi, Nöroşirürji Bölümü, Bern, İsviçre teşekkür ederim. Biz Daniel Mettler, DVM, Max Müller, DVM, Daniel Zalokar ve Olgica Beslac, Deneysel Cerrahi Enstitüsü, Klinik Araştırmalar Bölümü, Bern Üniversitesi, Bern, İsviçre hayvan bakımı, anestezi ve ameliyat yardımı usta yönetimini takdir. Biz fizyolojik parametrelerin gerçek zamanlı veri izleme ve post-processing için, Michael Lensch, Baş Araştırma Hemşire, Yoğun Bakım Tıp Anabilim Dalı, Bern Üniversitesi Hastanesi ve Bern Üniversitesi, Bern, İsviçre teşekkür ederim. Biz onların mükemmel laboratuvar teknik ve operatif yardım için, Edin Nevzati Carl Muroi ve Salome Erhardt teşekkür ederiz.

Bu çalışma Yoğun Bölümü tarafından desteklenene Care Medicine, Bern Üniversitesi Hastanesi ve Bern, Bern, İsviçre, Klinik Araştırma Bölümü, Bern, Bern, İsviçre Üniversitesi Üniversitesi ve Kantonsspital Aarau, Aarau, İsviçre Araştırma Fonu. Biz Şekil 1 ve 2 için basım izni için, Elsevier teşekkür ederim.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Ekipman
Ameliyat mikroskobuZeiss, Jena, AlmanyaZeiss, OPMI-MD cerrahi mikroskop
Cerrahi ekipmanB. Braun, AlmanyaForseps tıbbi no. 5; damar makası 8 cm; mikroklips 4 mm
Solunum cihazıHugo Sachs
Saç kesme makinesi3M Cerrahi Kesme Makinesi Başlangıç Kiti 9667A
Vücut sıcak plakasıFHC
Kan gazı analizörüRadyometre, Kopenhag, DanimarkaABL 725
Kardiyak izlemeCamino Çok Parametreli Monitör, Integra, Plainsboro, NJ, ABDAP-05
Yazılım analiziBIOPAC Systems, Inc., Goleta, CA, ABDBiopac MP100 ve acqKnowledge yazılımı, sürüm 3.8.1
Yazılım analiziImagePro Discovery, MediaCybernetics, Silver Spring, MD, USAImage-Pro Plus sürümü 
Anjiyografi cihazıDFP 2000 A-ToshibaMIIXR0001EAA
ICP monitörüCamino Laboratuvarları, San Diego, CA, ABDICP monitörü, Model 110-4B
Kan akışı monitörüOxford Optronix Ltd., Oxford, İngiltere CAL KİTİmikroküre çözümü
Lazer-Doppler akış metrisi ince iğne problarıOxford Optronix Ltd., Oxford, İngiltereMNP110XP, 0,48 mm çap
Basınç tüpüB. Braun, GermayPE 1.0 mm & kez; 2.0 mm
Anestezi monitörüGE Medical Systems, İsviçre Datex S5 Monitör
Malzemesi
20 G vasküler kateterSmiths MedicalJelco i.v. kateter, REF 4057
5.5 F üç lümenli santral venöz kateter Konnektörler, Tagelswangen, İsviçreSilikon kateter STH-C040
22 G x 40 mm iğne Emergo Group Inc., Hollanda
Yüksek hızlı mikromatkapStryker, Solothurn, İsviçre5400-15 
Kemik mumuEthicon, Johnson & Johnson, NJ, ABDETHW31G
Bipolar forsepsAesculap, Inc., PA, ABDUS349SP 
KetaminHerhangi bir jenerik ürün
KsilazinHerhangi bir jenerik ürün
BuprenorfinHerhangi bir jenerik ürün
FentanilHerhangi bir jenerik ürün
Transdermal fentanil matris yamaları Herhangi bir jenerik ürün
Lidokain% 1 & nbsp;Herhangi bir jenerik ürün
% 4 papaverin HCl Herhangi bir jenerik ürün
Neomisin sülfat ve nbsp;Research Organics Inc., OH, ABDHerhangi bir jenerik ürün
Povidon-iyot & nbsp;Herhangi bir jenerik ürün
% 0.9 sodyum klorürHerhangi bir jenerik ürün
Iopamidol ve nbsp;Abott Laboratories, IL, ABDHerhangi bir jenerik ürün
3-0 emilebilir sütürEthicon Inc., ABDVCP824G
5-0 emilemeyen sütürEthicon Inc., ABD8618G
4-0 polifilament sütürlerEthicon Inc., ABDVCP284G

Kaynaklar

  1. Taylor, T. N., et al. Lifetime cost of stroke in the United States. Stroke; a journal of cerebral circulation. 27, 1459-1466 (1996).
  2. Kikkawa, Y., Kameda, K., Hirano, M., Sasaki, T., Hirano, K. Impaired feedback regulation of the receptor activity and the myofilament Ca2+ sensitivity contributes to increased vascular reactiveness after subarachnoid hemorrhage. Journal of cerebral blood flow and metabolism : official journal of the International Society of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 30, 1637-1650 (2010).
  3. Marbacher, S., Fandino, J., Kitchen, N. D. Standard intracranial in vivo animal models of delayed cerebral vasospasm. British journal of neurosurgery. 24, 415-434 (2010).
  4. Marbacher, S., Neuschmelting, V., Graupner, T., Jakob, S. M., Fandino, J. Prevention of delayed cerebral vasospasm by continuous intrathecal infusion of glyceroltrinitrate and nimodipine in the rabbit model in vivo. Intensive care medicine. 34, 932-938 (2008).
  5. Zhou, M. L., et al. Comparison between one- and two-hemorrhage models of cerebral vasospasm in rabbits. Journal of neuroscience. 159, 318-324 (2007).
  6. Vatter, H., et al. Time course in the development of cerebral vasospasm after experimental subarachnoid hemorrhage: clinical and neuroradiological assessment of the rat double hemorrhage model. Neurosurgery. 58, 1190-1197 (2006).
  7. Lee, J. Y., Sagher, O., Keep, R., Hua, Y., Xi, G. Comparison of experimental rat models of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Neurosurgery. 65, 331-343 (2009).
  8. Marbacher, S., et al. A new rabbit model for the study of early brain injury after subarachnoid hemorrhage. Journal of neuroscience. 208, 138-145 (2012).
  9. Marbacher, S., et al. Outer skull landmark-based coordinates for measurement of cerebral blood flow and intracranial pressure in rabbits. Journal of neuroscience methods. 201, 322-326 (2011).
  10. Marbacher, S., et al. Extra-intracranial blood shunt mimicking aneurysm rupture: intracranial-pressure-controlled rabbit subarachnoid hemorrhage model. Journal of neuroscience. 191, 227-233 (2010).
  11. Sugawara, T., Ayer, R., Jadhav, V., Zhang, J. H. A new grading system evaluating bleeding scale in filament perforation subarachnoid hemorrhage rat model. J Neurosci Methods. 167, 327-334 (2008).
  12. Macdonald, R. L. Delayed neurological deterioration after subarachnoid haemorrhage. Nature reviews. Neurology. 10, 44-58 (2014).
  13. Zhang, Z. W., et al. Platelet-derived growth factor-induced severe and chronic vasoconstriction of cerebral arteries: proposed growth factor explanation of cerebral vasospasm. Neurosurgery. 66, 728-735 (2010).
  14. Laslo, A. M., Eastwood, J. D., Chen, F. X., Lee, T. Y. Dynamic CT perfusion imaging in subarachnoid hemorrhage-related vasospasm. AJNR. American journal of neuroradiology. 27, 624-631 (2006).
  15. Shao, Z., et al. Effects of tetramethylpyrazine on nitric oxide/cGMP signaling after cerebral vasospasm in rabbits. Brain research. 1361, 67-75 (2010).
  16. Bederson, J. B., Germano, I. M., Guarino, L. Cortical blood flow and cerebral perfusion pressure in a new noncraniotomy model of subarachnoid hemorrhage in the rat. Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1086-1091 (1995).
  17. Veelken, J. A., Laing, R. J., Jakubowski, J. The Sheffield model of subarachnoid hemorrhage in rats. Stroke; a journal of cerebral circulation. 26, 1279-1283 (1995).
  18. Zakhartchenko, V., et al. Cell-mediated transgenesis in rabbits: chimeric and nuclear transfer animals. Biology of reproduction. 84, 229-237 (2011).
  19. Capecchi, M. R. Gene targeting in mice: functional analysis of the mammalian genome for the twenty-first century. Nature reviews. Genetics. 6, 507-512 (2005).
  20. Flisikowska, T., et al. Efficient immunoglobulin gene disruption and targeted replacement in rabbit using zinc finger nucleases. PloS one. 6, e21045(2011).
  21. Nakajima, M., et al. Effects of aging on cerebral vasospasm after subarachnoid hemorrhage in rabbits. Stroke. 32, 620-628 (2001).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Subaraknoid Kanama Modelintrakraniyal Bas n KontrolSubklavyen Arter Kan lasyonuDijital Subtraksiyon AnjiyografisiN romonit rizasyon Prob Yerle imiSpinal Eri im nesiSerebral Kan Ak zlemiErken Beyin HasarGecikmi Serebral Vazospazm
Subaraknoid Kanama Akut ve Geç sekeli Çalışmaları Tavşan Kan şant Modeli: Teknik Yönleri
Bize ulaşın
Kütüphaneye tavsiye et

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Telif hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.