Yöntem makalesi

Raportör fareler kullanılarak IL-22 eksprese eden lenfositlerin Görselleştirme

8.6K görüntüleme

⸱

DOI:

10.3791/54710

⸱

25 Ocak 2017

 ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Molecular Immunoregulation, Cancer and Inflammation Program, Center for Cancer Research, National Cancer Institute, National Institutes of Health

Bu makalede

Özet

Burada, farklı fare dokuları içindeki IL-22 üreten hücreleri görselleştirmek için bir transgenik raportör fare modelini açıklıyoruz. Bu yöntem, faredeki diğer sitokinlerin veya salgı proteinlerinin yerini izlemek için kullanılabilir.

Özet

Raportör farenin geniş hedef genlerin ekspresyonu lokalizasyonunu gözlemlemek için kullanılmıştır. Bu protokol, yeni bir transgenik muhabiri fare modeli kurmak için bir strateji üzerinde duruluyor. Biz bu sitokin inflamasyon ile hasarlı dokuların tamir katkıda bağırsak, önemli etkinlikleri de olduğundan interlökin (IL) 22 gen ifadesini görselleştirmek için seçti. Haberci sistemler arasında, in vivo olarak ürünlerin belirlenmesi için diğer yöntemlere göre önemli avantajlar sunmaktadır. IL-22 olması durumunda, diğer çalışmalar, ilk doku hücreleri izole olan ve daha sonra in vitro olarak hücrelerin yeniden uyarılır. IL-22, normal olarak salgılanır, bir ilaç ile hücre içinde sıkışıp edildi ve hücre içi boyama görselleştirmek için kullanılmıştır. Bu yöntem, IL-22 üretebilen hücreleri tanımlayan, ancak in vivo olarak bunu yaparken olup olmadığını o karar vermez. raportör tasarımı, WA, IL-22 geni bir floresan proteini (tdTomato) bir gen sokulması içerirfloresan protein nedenle salgılanır ve edilemez Y in vivo üreten hücrelerin içinde sıkışıp kalmaktadır. Floresan üretici daha sonra doku kesitlerine ya da akış sitometrisi ile ex vivo olarak analiz ile görselleştirilebilir. muhabir gerçek inşaat süreci, IL-22 geni içeren bir bakteriyel yapay kromozom Recombineering dahil. Bu işlenmiş kromozom sonra fare genomu içine verilmiştir. Homeostatik IL-22 raportör ekspresyonu Akışkan sitometri analizi ile dalak, timus, lenf düğümleri, Peyer ve bağırsak dahil olmak üzere, farklı fare dokularda gözlenmiştir. Kolit T hücresi (CD4 + CD45RBhigh) transferiyle uyarılır, ve raportör ekspresyonu gözlendi. Pozitif T hücreleri mezenterik lenf düğümleri ilk mevcuttu, ve sonra onlar distal ince bağırsak ve kolon dokularının lamina propria içinde birikmiş. BAC'ler kullanarak strateji, IL-22 Expres kıyasla iyi sadakat muhabiri ifade verdision ve knock-in prosedürleri daha basittir.

Giriş

haberci genlerin hücre tipi spesifik ifade aktif homeostatik ve tedirgin halleri altında dokularda hedef ifade eden hücreleri belirlemek için yararlıdır. Bu ayrıca diğer özelliklerini incelemek için, canlı kalır, bu hücrelerin, saflaştırılması için izin verir. Raportör farenin özgü sitokinlerin transkripsiyon faktörleri ve düzenleyici elemanlar için eylem mekanizmasını açıklamaya kullanılabilecektir. Önceki stratejiler 1, 2, 3, büyük ölçüde fare kromozomu, zaman alıcı ve masraflı prosedürde hedef yörüngesi içine muhabiri vurma yararlanmıştır. Bu nedenle, raportör farelerin üretimi için daha basit bir yönteme ihtiyaç vardır.

Sitokinler hücrelerarası sinyalizasyon ile immün yanıtları düzenleyen küçük, salgılanan proteinler / peptidlerin geniş bir sınıfıdır. İnterlökin 22 (IL-22), birçok ile sitokin bariyer fu dahil aktiviteler bildirilmiştirnction, doku tamiri ve inflamasyon 4. IL-22 ilk olarak bir T-hücre ürün 5 ile tespit edilmiştir, ancak, daha sonra rapor insanlarda 6 ve fareler 7 ve doğuştan gelen lenfositlerin 8 diğer sınıfları doğal öldürücü (NK) hücreleri içinde ekspresyonu gösterdi. Antikorlarla lekelere IL-22, daha önce gerekli olan ex vivo stimülasyonu ve geçirgenliği ve geniş bir IL-22 üreten hücrelerin gözlem, görselleştirme rağmen. Bu nedenle, yeni IL-22 raportör fareler homeostatik ve patojenik süreçlerde IL-22 fonksiyonunu araştırmak için çok yararlı bir araç olacaktır.

Burada, in vivo ve in vitro olarak IL-22 üreten hücreleri gözlemlemek için basitleştirilmiş bir transgenik raportör fare modeli geliştirilmiştir. BAC Recombineering yöntemi 9 kullanarak, IL-22 loc olarak Poli A sinyal parçalarını tdTomato cDNA dizisini takılıUS ve mümkün olduğu kadar IL-22 doğal düzenleme taklit mi zira diğer dönüştürülmemiş bölgeleri, eksonlan ve düzenleyici elemanları, tedirgin değil ekson 1 yerini aldı. bildirici ekleme yeri IL-22 kendisi hızlı bir şekilde salgılanır aksine üreten hücrelerin içindeki muhabir birikmesine yol açar, sinyal dizisini bozar. Bu yeni yöntem, diğer salgılanan proteinler için haberci farelerin üretimi için uygulanabilir.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bütün hayvanlar Bakım ve Kanser Araştırma Frederick Ulusal Laboratuvarı Laboratuvar Hayvanları Komitesi Kullanım 2011 Kılavuzu'nda belirtilen deneysel prosedürlere uygun olarak uygun bakım aldı.

BAC Recombineering ile IL-22-tdTomato Raportör 1. Farelerin Üretimi

NOT: fareler bilinçsiz olmalı ve bir uyarana karşı tepki olarak hareket etmezler. % 70 etanol ile cerrahi alan sterilize ve bir cam boncuk sterilizatör kullanan tüm cerrahi aletler sterilize edin.

  1. Bir alkalin ekstraksiyon yöntemi 10, 11 kullanılarak BAC DNA (RP23-401E11, klon uzunluğu 228.391 bps) arındırın. hedef genin doğru boyutu onaylamak için RP23-401E11 5 ug Spel sindirimi ile BAC klonu karakterize eder. NOT: BAC DNA 14 parça halinde sindirildi.
  2. PLD53SC-A-GFP-B mekik vektörüne Not I / Sal I mevkisine tdTomato raportör gen eklemek11 ve aynı siteye GFP geninin değiştirin. Daha sonra, bir şablon olarak BAC RP23-401E11 kullanılarak, ilk çevrilen ekson homoloji kutularının (A ve B) amplifiye IL-22 (ekson 1) PCR (95 ° C'de 2 dakika ile; 30 dakika süre ile 95 ° C'de 30 döngü sn, 30 saniye için 55 ° C ve 30 saniye için 72 ° C, ve 10 dakika süreyle 72 ° C'de son uzatma). 50 ul PCR reaksiyon sisteminde, ilave 50 ng (1 uL) BAC DNA, primerler, 0.5 ul (10 uM), PCR Supermix yüksek aslına uygunluk 40 ul ve H2O 8 ul
    5'T GGCGCGCC GGAGCTGTGAAGAAAG ve Ters: İleri Bir kutu NOT: aşağıdaki gibi A ve B kutuları için primerler olan 5'CAGAGATCGCACAAGTGTCAAC; İleri B kutusu: 5'G TTAATTAA CTGCCCGTCAACA ve Ters: 5'T GGCCGGCC TGAGCACCTGCTT CATC 10. sınırlama enzimleri (Asc I ve Pac I) siteleri altı çizilmiştir.
  3. Artan I-sindirilmiş A 500 ng ve Pac I-sindirilmiş B fragmanının 500 ng Arterhastalar, 1 saat boyunca 16 ° C'de PLD53SC-ATB (tdTomato) vektörü, 50 ng halinde.
  4. 37 ° C 'de, kloramfenikol (20 ug / ml) ve ampisilin (30 ug / ml) ile agar plakaları Luria-Bertani (LB) BAC-kompetan hücreler 11 ve kültür bunların saflaştırılmış PLD53SC-ATB vektör dönüşümü. İki ya da üç koloniler seçin Ch / Amp master plakalardan eş-entegre.
  5. 20 ug / ml kloramfenikol ile takviye edilmiş LB 1 ml her bir koloni inoküle ve 37 ° C'de 1 saat ve 225 rpm'de için inkübe. LB-agar plakası üzerine her karışımın 100 ul yayılması (Peptone 140 10 g, maya özütü, ağar, 12 g ve 1 L su içinde 5 g; pH 7.5) kloramfenikol ve sükrozun 4-4.5% ile takviye edilmiştir. 37 ° C'de gece boyunca kültür inkübe edin.
  6. hem büyük ve küçük koloniler seçin ve kloramfenikol ile iki LB-agar plakaları bunları replate. Daha sonra da 30 saniye süre ile, UV ışık olmadan da plakalar ortaya çıkarmak ve daha fazla analiz için UV duyarlı koloniler.
  7. tdTomato / IL-22 heterozigot primer kullanılarak PCR ile modifiye BAC DNA tespit (İleri: 5 'ACT TGT gCg ATC TCT gat GGT; Ters: 5' TGT AAT CGG ggA TGT CGG C). Termosikler koşulları aşağıdaki gibi olan: 2 dakika boyunca 95 ° C; 30 saniye, 30 saniye için 56 ° C, ve 30 saniye süreyle 72 ° C'de, 95 ° C'de 30 döngü; ve 10 dakika süreyle 72 ° C'de son uzatma.
  8. Büyük hazırlık BAC DNA 12 direkt BAC dizileme ile BAC modifiye alanının dizisi onaylayın.
  9. yalancı gebelik olan C57BL / 6C farelere mikro-enjekte zigotların implantasyonu sırasında periton boşluğuna% 0.25 tribromoethanol bir dozu ile bir alıcı fare anestezisi.
  10. IL-22-tdTomato BAC reaksiyon sisteminin 100 ul kısıtlama endonucleasePi-SceI 5 ul ile sindirme ile (10 ug) oluşturmak ve pronükleer aşama 13 de, C57BL / 6 kadın döllenmiş yumurta içine doğrusallaştırılmış BAC DNA Microinject linearize. ScreStandart prosedürler kullanılarak, kuyruk biyopsilerinden izole edilmiş DNA'nın Southern blot analizi ile transgenik fareler en.

Dalaklar, Timus, lenf nodu ve Peyer Patch 2. Tek hücreli Hazırlık

Not: IL-22-tdTomato raportör farenin Ulusal Kanser Enstitüsü (NCI, Frederick, MD) tutuldu. Ötenazi yöntemi Ötenazi En son AVMA talimatlara uygundur. Tüm fareler CO2 inhalasyon 14 kullanılarak ötenazi uygulandı.

  1. CO 2 odasında bir IL-22-tdTomato fare Euthanize ve temiz bir ped üzerine koydu. % 70 alkol püskürtülerek karın cildi sterilize ve açık kesti. soldan, dalak ve sternum arkasında timus çıkarın.
  2. mesentericlymph düğümleri (mezenterik dokusunda bulunur) ve (ince bağırsak ileum bölgede küçük lymphoidnodules) Peyer yamaları hasat, inci beyazı mezenterik t yakın düğümleri almakvücut dışına bütün ince bağırsağı ve kolon kaldırmak sonra ilk ince nokta tırtıklı ipuçları forseps incelemek ve kullanma ince bağırsağın o duvarı. gut boyunca uzatılmış oval lekeler (Peyer yamaları) Bul ve makasla kesti. PBS /% 1 fetal inek serumu (FBS), buz üzerinde tampon içinde tek bir hücre süspansiyonu içine tek tek, iki buzlu slaytlar arasında bu lenfoid dokulardan (lenf düğümleri ve Peyer yamaları) öğütün.
  3. Adım 2.2 ile aynı yöntemi kullanarak dalak veya timus dokuları kıyma. 500 x g'de 8 dakika 4 ° C dalak süspansiyon santrifüjleyin. Hücre peletlere dalak başına ACK yokedici tampon 1 ml.
  4. İyice karıştırın ve onları 1 dakika boyunca bekletin. Her bir örnek için steril fosfat-tamponlu tuzlu su (PBS), tampon 9 ml ekleyin. Kırmızı kan hücreleri çıkarmak için 500 x g ve 4 ° C'de 8 dakika için santrifüjleme ile dönerler.
    NOT: timus hücreleri ACK parçalama tampon katmayın.
  5. PBS ve p 5 ml elde lökositlerin yeniden süspanse100 mikron hücre süzgecinden hücreleri ass. 8 dakika boyunca 500 x g'de santrifüj ile hücre pelletleri toplayın.
  6. RPMI ortam veya FACS tampon, 5 ml hücrelerin tekrar ve% 0.4 tripan mavi boya / PBS çözeltisi kullanılarak canlı hücreler sayılır.

Barsaklardan İntraepitelyal lenfositler ve Lamina Propria Hücreleri 3. İzolasyon

  1. Sağ anüs üzerinde, (yakın ekine) ileum ve tüm kolon duodenum dan (bir sonraki mide), adım 2.1 gibi karın cildi açın ince bağırsak kesti. Ekstra adipoz ve mezenterik doku kullanarak forseps çıkarın. buz soğukluğunda PBS hemen bağırsak koyun.
  2. ince bağırsağın distal bölge boyunca Peyer yamaları (küçük, sert nodüller) arayın. forseps andopen makas kullanılarak uzunlamasına bağırsak kullanarak kitleleri çıkarın. İyice buz soğukluğunda 10 ml PBS ile bağırsak yıkayın.
  3. Ön sindirim tamponu (5 mM EDTA, 20 ml doku inkübeve bir çalkalayıcı yavaş dönme (50 rpm) 37 ° C'de 30 dakika boyunca Hank Dengeli Tuz Çözeltisi (HBSS)) içinde 1 mM ditiotreitol. 2 inkubasyon her birinden sonra, yoğun vorteks (12,000 rpm'de 30 sn) tarafından, intraepitelyal lenfositler (IELS) içeren epitel hücre tabakasını kaldırmak ve 100 mikron hücre süzgecinden tüm dokuları geçmektedir.
  4. 37 ° C'de 30 dakika süre ile ikinci bir inkübasyon için dokuya yeni bir EDTA çözeltisi 20 ml ekleyin. 100 mikron hücre süzgecinden IEL kesirler geçirin ve önceki fraksiyonları ile havuz. buz üzerinde kalan bağırsak parçaları tutmak adım 3.9 tedavi edilmesi.
  5. 4 ° C'de 5 dakika boyunca 800 x g'de toplanmış IEL fraksiyonlar santrifüjleyin. HBSS /% 5 FBS, 10 ml ile bir yerde toplanır IEL su fraksiyonları ile 800 x g'de 5 dakika 4 ° C aşağı döndürün.
  6. % 44 koloidal silis ortamı 15 8 mL hücrelerin tekrar ve 5 ml 67% koloidal silis ortamı ile kapla. % 44/67 santrifüjOda sıcaklığında 20 dakika 1500 x g .5% hücre karışımı gradyanı.
  7. arayüzünde gruptan IEL hücreleri toplamak. İlk olarak, 1 mL pipet kullanılarak süpernatan (yaklaşık 5 mi) üst tabakayı kaldırmak. Sonra, kolloidal silika orta degrade interfaz hasat IELS.
  8. RPMI ortamında 10 ml ekleyerek IELS yıkayın. 800 x g'de 5 dakika ve 4 ° C hücreleri aşağı doğru döndürün. Adım 3.15 RPMI 5 ml IELS süspanse edin.
  9. Lamina propriya lenfositlerinin izolasyonu (LPLs) için (1 mm) bir makas kullanılarak küçük parçalar halinde adım 3.4 bağırsak doku parçaları kıyma ve (kollajenaz 0.05 g, DNasel 0.05 g sindirim tamponu 10 ml parçalar sindirmek, ve 37 ° C'de 15-20 dakika boyunca RPMI /% 5 FBS içinde dispase II) 0,3 gr.
  10. 70 mikron hücre süzgecinden karışımı Filtre. akış süpernatant serbest LPL içerir.
  11. Tamamen normal (adımları 3.9-3.10 tekrarlayarak bağırsak parçaları sindirmek, onlar olmalı) 3 kez tekrar edilmiştir. Her zaman, LPLs içeren süpernatantlar havuz.
  12. 1,500 xg ve oda sıcaklığında 5 dakika boyunca santrifüj ile hücreler toplamak ve RPMI /% 5 FBS içinde tekrar süspansiyon pelet. 40 mikron hücre süzgecinden onları geçmek.
  13. Bir 40:80 koloidal silis, orta gradyanı% 40 fraksiyonunun 10 ml hücre pelletleri yeniden süspanse edin ve 15 ml'lik bir tüp içinde 80% fraksiyon 5 ml ile kapla.
  14. 1,500 xg ve oda sıcaklığında 15 20 dakika boyunca santrifüj ile yoğunluk gradyan ayırma gerçekleştirir.
  15. Adım 3.7'de tarif edildiği gibi, LPLs toplayın. 10 ml PBS ile bir kez yıkayın ve PBS /% 1 FBS tampon ya da RPMI ortamı, 1 ml pelet tekrar süspansiyon.
  16. % 0.4 tripan mavi boya / PBS çözeltisi kullanılarak canlı hücreleri (IELS ve LPLs ikisi) sayın.

Kolit, IL-22-tdTomato 4. ekspresyonu

  1. 1 x 10 bir konsantrasyonda IL-22-tdTomato farelerden tek dalak hücre süspansiyonları hazırlamak 7 hücreleri adımda 2.1-2.4 tarif edildiği gibi steril PBS / ml.
  2. Fare CD4 hücre Negatif İzolasyon yöntemi 10 kullanılarak CD4 + T hücreleri arındırmak. Ve anti-CD45RB-FITC (klon 16A (PBS /% 1 FBS tamponu içinde, klon RM4-5 0.5 ul / 1 x 10 6 hücre), anti-CD4-APC ile PBS içinde 0.5 ml / 1 x 10 6 hücre etiketlemek 30 dakika boyunca 4 ° C'de inkübasyon ile /% 1 FBS tamponu).
  3. 500 xg'de 5 dakika ve 4 ° C hücreleri aşağı doğru döndürün. PBS /% 1 FBS tamponu, 2 ml hücreleri yıkayın ve PBS /% 1 FBS lekeleme tampon maddesi 1 ml bunları tekrar süspansiyon.
  4. Makinenin 16 sitometri bir akış etiketli T hücrelerini çalıştırın. Kapısı T-hücre popülasyonu üzerindeki hücreler ve sıralama CD4 + CD45RB yüksek çift pozitif hücreler (488 nm ve 633 nm lazerler tespit dalga boyu).
  5. 500 x g'de 5 dakika 4 ° C'de santrifüj ile kriteri hücreler hasat edilir. 1 x 10 6, steril PBS tamponunda yeniden süspanse hücre pelletleri hücre / ml. / - - Alıcı fare Rag1 ¬ lerde periton içine hücreleri (0.5 x 10 6) enjekte edilir.
  6. Çeşitli zaman noktalarında CO 2 altında alıcı fareler Kurban. adımlarda 2.1 ve 2.2 açıklandığı gibi, mezenterik lenf nodları ve küçük ve büyük bağırsakları hasat. dokuları düzeltmek için bir gecede, her mezenterik lenf düğümü koyun ve kesme açık bağırsağa (kağıt / bağırsak / kağıt sandviç)% 4 paraformaldehid (davlumbaz altında ele PFA). 16-24 saat süreyle% 18 sakaroz ile PFA değiştirin ve sonra kesit için dokular dondurma.
  7. Doku 17, 18, 19 kesmek için kriyostat makinesi kullanın. yaklaşık 60 dakika boyunca oda sıcaklığına kadar doku bölümleri ısıtın ve oda sıcaklığında 10 dakika boyunca aseton içinde yerleştirin. yaklaşık olarak 5 dakika boyunca oda sıcaklığında kurumaya.
  8. , Aşan FBS ekle pipet çıkarın ve 1 anti-RFP ekleyin: 200 seyreltme 0.1% BSA / 1x PBS. 60 dakika boyunca 37 ° C 'de antikor inkübe edin.
  9. 10 dakika süre ile 1 x PBS bölümleri durulayın ve doku tekabül eden ikincil antikor (keçi anti-tavşan 568) uygulanır, suyla 1: 300,% 1 BSA / 1X PBS, oda sıcaklığında 30 dakika karıştırıldı.
  10. 10 dakika 1x PBS slaytlar durulayın onları kuru silin ve lamelleri ekleyin.
  11. 40X objektif kullanılarak: (uyarma filtresi 540-580 nm RFP) tutarlı aydınlatma altında bir floresan mikroskop ile tüm örnekleri gözünüzde canlandırın.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Bir murin IL-22 raportör transgen IL-22 yerini taşıyan bakteriyel suni bir kromozom değiştirmek için Recombineering kullanılarak oluşturuldu. Şekil 1 sacBII geni, bir pozitif seçim markeri ve kloramfenikol antibiyotik dirençli bir gen ihtiva eden 11 pBACe3.6 vektörünün bir diyagramını göstermektedir. Şekil 2'de gösterildiği gibi, ekson 1 içine tdTomato sokulması sonra, sinyal peptid dizisi, kesintiye uğramıştır. Bu nedenl...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

IL-22 doğal konukçu savunma ve dokuların yeniden yapılandırılmasında önemli bir rol oynar. IL-22 üreten hücreler hücre içi boyama ile ex vivo olarak tespit edilmiştir. Ancak, hala normal durumda ya da iltihabi durumların ya, in situ, IL-22 ifadesini izlemek için zordur. Bu protokol, in vivo olarak raportör-ifade eden hücreleri lokalize sağlıyor bir IL-22 raportör fare modeli geliştirmek için yeni bir metot açıklanır. haberci gen kodlayan tdTomato sinyal dizisini bozan bir bölgede IL-22 lokusun...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Teşekkürler

Hayvan teknik yardımı için Kelli Czarra ve Megan Karwan'a, akış sitometrisi yardımı için Kathleen Noer ve Roberta Matthai'ye ve patoloji analizi için Donna Butcher ve Miriam R. Anver'a teşekkür ederiz. Bu proje, Ely ve Edythe Broad Vakfı'ndan (Scott Durum'a) bir hibe ile desteklenmiştir ve tamamen veya kısmen Ulusal Kanser Enstitüsü, Ulusal Sağlık Enstitüleri'nden federal fonlarla Sözleşme No. kapsamında finanse edilmiştir. HHSN261200800001E (MRA).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
RP23-401E11 BACThermo Fisher BilimselRPCI23. CGen Kimliğine ihtiyacınız var: 50929
NucleoBond BAC 100Takara Clontech740579
PCR SuperMix High FidelityThermo Fisher Scientific10790020
PI-SceINew England BiolabsR0696S
SpeINew England BiolabsR0133S
LB Et SuyuThermo Fisher Scientific10855-0011 L: 10 g SELECT Peptone 140, 5 g SELECT Maya Özü, 5 g sodyum klorür 
Anti-fare CD3eBioscience11-0031
Anti-fare CD4eBioscience17-0041
Anti-fare CD45Thermo Fisher ScientificMCD4530
Anti-fare CD45RBeBioscience11-0455
Anti-fare RFPAbcamAb62341
HBSS, kalsiyum yok, magnezyum yok, fenol kırmızıThermo yok Fisher Bilimsel14175145KCl, KH2PO4, Na2HPO4< / sub>, NaHCO3< / sub>, NaCl, D-Glikoz
Dnase IRoche10104159001
ACK parçalama tamponuThermo Fisher BilimselA1049201
PercollGE sağlık yaşam bilimleri17-0891-01
Kollajenaz DRoche11088858001
Dispase II (nötr proteaz, derece II)Roche4942078001
IX70 ters floresan mikroskobuOlympusFiyat teklifi isteyin
Nikon Eclipse 80i mikroskopNikonFiyat teklifi isteyin
Dynal shakerElektron Mikroskobu Bilim61050-10
FACSAriaBD BioscienceFiyat teklifi isteyin
LSRII SORP/akış sitometrisiBecton, Dickinson and Company Fiyat teklifi isteyin

Kaynaklar

  1. Awasthi, A., et al. Cutting edge: IL-23 receptor gfp reporter mice reveal distinct populations of IL-17-producing cells. J Immunol. 182, 5904-5908 (2009).
  2. Price, A. E., Reinhardt, R. L., Liang, H. E., Locksley, R. M. Marking and quantifying IL-17A-producing cells in vivo. PLoS One. 7, e39750(2012).
  3. Kamanaka, M., et al. Expression of interleukin-10 in intestinal lymphocytes detected by an interleukin-10 reporter knockin tiger mouse. Immunity. 25, 941-952 (2006).
  4. Sonnenberg, G. F., Fouser, L. A., Artis, D. Border patrol: regulation of immunity, inflammation and tissue homeostasis at barrier surfaces by IL-22. Nat Immunol. 12, 383-390 (2011).
  5. Dumoutier, L., Louahed, J., Renauld, J. C. Cloning and characterization of IL-10-related T cell-derived inducible factor (IL-TIF), a novel cytokine structurally related to IL-10 and inducible by IL-9. J Immunol. 164, 1814-1819 (2000).
  6. Cella, M., et al. A human natural killer cell subset provides an innate source of IL-22 for mucosal immunity. Nature. 457, 722-725 (2009).
  7. Sanos, S. L., et al. RORgammat and commensal microflora are required for the differentiation of mucosal interleukin 22-producing NKp46+ cells. Nat Immunol. 10, 83-91 (2009).
  8. Spits, H., et al. Innate lymphoid cells--a proposal for uniform nomenclature. Nat Rev Immunol. 13, 145-149 (2013).
  9. Mazzucchelli, R. I., et al. Visualization and identification of IL-7 producing cells in reporter mice. PLoS One. 4, e7637(2009).
  10. Shen, W., Hixon, J. A., McLean, M. H., Li, W. Q., Durum, S. K. IL-22-Expressing Murine Lymphocytes Display Plasticity and Pathogenicity in Reporter Mice. Front Immunol. 6, 662(2015).
  11. Gong, S., Yang, X. W., Li, C., Heintz, N. Highly efficient modification of bacterial artificial chromosomes (BACs) using novel shuttle vectors containing the R6Kgamma origin of replication. Genome Res. 12, 1992-1998 (2002).
  12. Shen, W., Huang, Y., Tang, Y., Liu, D. P., Liang, C. C. A general method to modify BACs to generate large recombinant DNA fragments. Mol Biotechnol. 31, 181-186 (2005).
  13. Cho, A., Haruyama, N., Kulkarni, A. B. Generation of transgenic mice. Curr Protoc Cell Biol. Chapter. Chapter 19, Unit 19 11(2009).
  14. Danneman, P. J., Stein, S., Walshaw, S. O. Humane and practical implications of using carbon dioxide mixed with oxygen for anesthesia or euthanasia of rats. Lab Anim Sci. 47, 376-385 (1997).
  15. Omata, Y., et al. Isolation of coccidian enteroepithelial stages of Toxoplasma gondii from the intestinal mucosa of cats by Percoll density-gradient centrifugation. Parasitol Res. 83, 574-577 (1997).
  16. Kumar, N., Borth, N. Flow-cytometry and cell sorting: an efficient approach to investigate productivity and cell physiology in mammalian cell factories. Methods. 56, 366-374 (2012).
  17. Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. Cryosectioning tissues. CSH Protoc. 2008, pdb.prot4991(2008).
  18. Hilbe, W., et al. Comparison of automated cellular imaging system and manual microscopy for immunohistochemically stained cryostat sections of lung cancer specimens applying p53, ki-67 and p120. Oncol Rep. 10, 15-20 (2003).
  19. Suzuki, Y., Furukawa, M., Abe, J., Kashiwagi, M., Hirose, S. Localization of porcine trappin-2 (SKALP/elafin) in trachea and large intestine by in situ hybridization and immunohistochemistry. Histochem Cell Biol. 114, 15-20 (2000).
  20. Wolk, K., et al. IL-22 increases the innate immunity of tissues. Immunity. 21, 241-254 (2004).
  21. Brand, S., et al. IL-22 is increased in active Crohn's disease and promotes proinflammatory gene expression and intestinal epithelial cell migration. Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 290, G827-G838 (2006).
  22. Nagalakshmi, M. L., Rascle, A., Zurawski, S., Menon, S., Waal Malefyt, de, R, Interleukin-22 activates STAT3 and induces IL-10 by colon epithelial cells. Int Immunopharmacol. 4, 679-691 (2004).
  23. Maloy, K. J., Powrie, F. Intestinal homeostasis and its breakdown in inflammatory bowel disease. Nature. 474, 298-306 (2011).
  24. Andoh, A., et al. Interleukin-22, a member of the IL-10 subfamily, induces inflammatory responses in colonic subepithelial myofibroblasts. Gastroenterology. 129, 969-984 (2005).
  25. Bhan, A. K., Mizoguchi, E., Smith, R. N., Mizoguchi, A. Colitis in transgenic and knockout animals as models of human inflammatory bowel disease. Immunol Rev. 169, 195-207 (1999).
  26. Mombaerts, P., et al. Spontaneous development of inflammatory bowel disease in T cell receptor mutant mice. Cell. 75, 274-282 (1993).
  27. Powrie, F. Immune regulation in the intestine: a balancing act between effector and regulatory T cell responses. Ann N Y Acad Sci. 1029, 132-141 (2004).
  28. Ahlfors, H., et al. IL-22 fate reporter reveals origin and control of IL-22 production in homeostasis and infection. J Immunol. 193, 4602-4613 (2014).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya şekillerini yeniden kullanmak için izin iste

İzin iste

Etiketler

IL 22 Reporter FarelerAk Sitometrisi AnaliziBAC RekombineeringT H cresi zolasyonuFloresan MikroskopiMezenterik Lenf NodlarLamina PropriaKolit ModeliCD4 Pozitif H crelertdTomato Ekspresyonu

İlgili makaleler