Yöntem makalesi

Deniz Bakterileri ile Ekotoksikolojik Yöntem

13.4K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/55211

⸱

26 Mayıs 2017

 ,  ,  ,  ,  , 
1Institute for Environmental Protection and Research (ISPRA), Rome (Italy), 2Department of Biology, Tor Vergata University, Rome (Italy), 3Department of Biology and Evolution of Marine Organisms, Stazione Zoologica, Anton Dohrn, Naples (Italy)

Bu makalede

Özet

Bu çalışma, kirleticilerin ekotoksisitesini değerlendirmek için nanomalzemeler gibi gelişmekte olan bulaşıcılar da dahil olmak üzere deniz bakterisini Vibrio anguillarum kullanarak yeni bir protokolü açıklamaktadır . Bu yöntem, LC 50'nin veya 6 saatlik maruz kaldıktan sonra bakteri kültürlenebilirliğinde% 50 azalmaya neden olan ölüm konsantrasyonunun belirlenmesine izin verir.

Özet

Bakteriler ekosistemin önemli bir bileşenidir ve mikrobik topluluk değişiklikleri biyojeokimyasal bisiklet ve gıda ağları üzerinde önemli bir etkiye neden olabilir. Mikroorganizmalara dayanan toksisite testleri nispeten hızlı, tekrarlanabilir, ucuz ve etik konularla ilişkili olmadığı için yaygın olarak kullanılır. Burada, deniz bakterisi Vibrio anguillarum'un biyolojik cevabını değerlendirmek için bir ekotoksikolojik yöntem tarif ediyoruz. Bu metot, nanoparçacıklar gibi yeni kirleticiler ve çevresel numuneler de dahil olmak üzere kimyasal bileşiklerin akut toksisitesini değerlendirir. Bitki noktası, toksik maddeye maruz kalma nedeniyle bakteri kültürlenebilirliğinin azaltılması ( yani, koloni çoğaltma ve biçimlendirme kabiliyeti) 'dir. Bu azalma genel olarak ölüm oranı olarak adlandırılabilir. Test, LC 50'yi , aktif olarak replike olan ve kolonileri oluşturan bakterilerin% 50 azalmasına neden olan konsantrasyonun saptanmasına izin verir;6 saat boyunca maruz kaldım. Kültürlenebilir bakteriler, koloni oluşturma üniteleri (CFU) bakımından sayılır ve "ölüm oranı" kontrol edilir ve kontrol ile karşılaştırılır. Bu çalışmada bakır sülfatın (CuSO 4 ) toksisitesi değerlendirildi. Üç bağımsız testten sonra, ortalama LC 50 1.13 mg / L ile açık bir doz-yanıt ilişkisi gözlemlendi. Bu protokol, mikroorganizma ile mevcut yöntemlerle karşılaştırıldığında, daha geniş bir tuzluluk aralığında uygulanabilir ve renkli / bulanık numuneler için herhangi bir sınırlama yoktur. Araştırılan kirleticilerle büyüme ortamının muhtemel etkileşimlerinden kaçınarak, maruz bırakma ortamı olarak tuz çözeltisi kullanır. LC 50 hesaplaması, deniz çevresinin ekotoksikolojik değerlendirmelerine sıkça uygulanan diğer biyolojik tahliller ile karşılaştırmayı kolaylaştırır.

Giriş

Ekotoksikolojik biyolojik tahliller, standart biyolojik modellerle kimyasalların veya çevresel numunelerin toksisitesini değerlendirir, fiziksel, kimyasal ve biyolojik stresörlerin ekosistemler üzerindeki etkilerini bütünleştirir. Ekosistemlerin karmaşıklığı nedeniyle, ekotoksikolojik risk değerlendirmeleri, farklı trofik seviyelerdeki organizmaları içeren bir biyoanaliz testi düşünmelidir. Laboratuvar hayvanları üzerindeki toksisite testleri pahalı, zaman alıcı ve etik açıdan şüpheli olabilir. Hayvan testlerini sınırlandırmak ve alternatif yaklaşımlar geliştirmek ( örneğin, bakteriler ve omurgalı olmayan hayvanlar üzerinde), mevcut AB mevzuatı çerçevesinde bildirilen ve AB Hayvanları Koruma Direktifi, Madde 7'deki Değişiklikler AB Kozmetik Direktifi ve REACH.

Kabuklular, balıklar ve algler, deniz ortamında toksisite ölçümleri için büyük oranda kullanılır 1 . Bakteriler önemli bir bileşenEkosistemin ve mikrobik topluluklardaki değişikliklerin biyojeokimyasal döngü ve diğer kritik ekosistem hizmetleri üzerinde önemli etkileri olabilir. Mikroorganizmalara dayanan toksisite testleri, nispeten hızlı, çoğaltılabilir ve ucuz oldukları ve etik sorunları ortaya koymadığı için popülerlik kazanmaktadırlar 2 . Bu çalışmanın amacı, çevre kirleticilerine maruz bırakıldığında deniz bakterisi Vibrio anguillarum'un ( Listonella anguillarum, Vibrionaceae) cevabını değerlendirmek için bir ekotoksikolojik protokolün tanımlanmasıdır.

V. anguillarum , polar lekeli bir Gram-negatif, kısa, eğri şeklinde çubuk bakteri (0.5 x 1.5 μm) 'dir. Kabuklu su veya tuzlu suda tipik olarak bulunan, yaklaşık 20 ° C'lik bir optimum tuzluluk derecesine ve 25 ° C ile 30 ° C3 arasında en uygun sıcaklığa sahip halotoleranttır. Yaygın olması ve önemli ekolojik rolleri nedeniyle organizma modeli olarak seçilmiştir.Dünya çapında 4 . V. anguillarum'un bazı serotiplerinin, çeşitli denizel ya da acayip balık türlerinde 5 , 6 vibriozise neden olduğu bilinmektedir. Bunun için deneyin bazı aşamaları standart mikrobiyolojik uygulamalar gerektirir, ancak herhangi bir özel güvenlik teçhizatı veya önlem gerekmez. Önerilen toksisite test protokolü, son nokta olarak bakteri kültürlenebilirliğini ( örn. , Replikasyon ve kolonileri oluşturma kabiliyeti) kullanır ve aktif olarak replike olan ve kolonileri oluşturan bakterilerin% 50 azalmasına neden olan konsantrasyonun LC 50'yi belirlemesine izin verir; 6 saatlik maruz kalma. Vibrio'da, diğer mikroplarda olduğu gibi, genel olarak ölüm oranı olarak gösterdiğimiz bu azalma kısmen, yaşanabilir ama kültürsüz olmayan (VBNC) faz 7'deki bireylerden kaynaklanabilir. Bu çalışmada, bu metodu, bakır sülfatın (CuSO 4), Bir referans toksik madde.

Bu yöntem, nanomalzemeler gibi ortaya çıkan kirleticiler de dahil olmak üzere kirleticilerin / kimyasal bileşiklerin ekotoksik değerlendirilmesi için uygun bir mikroorganizma temelli test sağlamak üzere geliştirilmiştir. Bu protokolün, mikroorganizmalar için kullanılan mevcut yöntemlere kıyasla yeniliği esas olarak maruz kalma aracı ve son nokta ile ilgilidir. Aslında, maruziyet, büyüme ortamının biyolojik cevabı etkileyebilecek araştırılan kirleticilerle olası herhangi bir etkileşiminden kaçınarak salin solüsyonu içinde gerçekleştirilir 8 . Son nokta bakteri kültürlenebilirliğinin azalmasıdır; bu, bakteri / ekşi ortamlarda ektotoksikolojik tarama için kullanılan hayatta kalma / ölüm oranına dayalı diğer akut sonlanım noktalarıyla kolayca karşılaştırılabilir. Üstelik, protokol hacimleri azaltarak E. coli 9 üzerinde zaten kullanılan likit-plakalı mikro sayım tekniklerini kullanır ve böylece deneysel eff(Ayrıntılar için protokolün 3.3 ve 3.4 adımlarına bakınız).

Protokol

1. Reaktiflerin / Materyallerin Hazırlanması

  1. Test konsantrasyonları ile etiketlenmiş test kapları olarak 15 mL steril tüplerin yanı sıra bakteri süspansiyonlarının seri seyreltilmesi için steril 1.5 mL tüpler hazırlayın (yaklaşık 300).
  2. Temas ortamı olarak% 2 NaCl çözeltisi hazırlayın ve sterilize edin. Alternatif olarak, 5-40 arasında değişen tuzluluk derecesine sahip sterilize edilmiş sentetik veya doğal deniz suyu kullanın.
  3. Etiket talimatlarına göre triptik soya agar (TSA) büyüme ortamını% 2 NaCl ile hazırlayın ve ortamda zaten bulunan NaCl miktarını göz önünde bulundurun.
  4. Daha önce test konsantrasyonu ve maruz kalma süresi, çoğaltma sayısı ve seyreltme faktörü ile etiketlenmiş 90 mm Petri kaplarına TSA (soğuk ama yine de sıvı) dökün; 19 mL uygun bir hacimdir.
  5. Triptik soy broth (TSB) büyüme ortamını etiket talimatlarına göre hazırlayın. Maruz bırakma ortamıyla aynı tuzluluk elde etmek için uygun miktarda NaCl ekleyin.
  6. hazırlamakÇift damıtılmış su ile CuSO4 stok solüsyonu ve 0.22 mikronluk şırınga filtresi kullanarak (gerekli) alikotu sterilize edin. Çevresel numuneler için, numunenin uygun seyreltik aralıklarını hazırlayın ve 0.22 um'lik şırınga filtresi kullanarak sterilize edin.
  7. Test konsantrasyonları ile etiketlenmiş 15 mL tüpler içine test solüsyonları hazırlayın. Negatif kontrol, 5 mL maruz kalma maddesi (% 2 NaCl) ile doldurun. 5 mL son hacimde test konsantrasyonlarını elde etmek için diğer tüpleri uygun miktarda maruz bırakma ortamı ve CuSO 4 stok solüsyonu ile doldurun.

2. Bakteri İnokülum Hazırlığı

  1. Testten 12-18 saat önce, Vibrio anguillarum'un sıvı bir taze kültürü hazırlayın . Steril bir halka kullanarak, katı bir ortamda (TSA) gece boyunca bir kültürden izole edilmiş tek bir koloni seçin. 10 mL TSB ile doldurulmuş bir tüp aşılanır ve 12-18 saat boyunca 25 ° C'de bakteri kültürü kuluçkalanır.
  2. 12-18 saat sonra inokulumun spektrofotometrik olarak bakteri konsantrasyonunu hesaplayın. İnküboyu vorteksleyin ve TSB'yi boş olarak kullanarak 600 nm dalga boyundaki optik yoğunluğu ölçün.
  3. Bilinen bir bakteri konsantrasyonu elde etmek için, bu formüle göre hesaplanan TSB miktarını ilave ederek 2 mL vortekslenmiş aşıdan seyreltin:
    TSB mL = [(OD / 0.14) x2] - 2.
  4. Seyreltilmiş inokulumun optik yoğunluğunun 0.140 (± 0.005) olduğunu doğrulayın; bu, McFarland nefelometrik standartta 0.5 noktasına karşılık gelir.
  5. Seyreltilmiş aşıları 3,000 g'da 10 dakika santrifüjleyin. Süpernatantı eleyin ve 1 mL% 2 NaCl solüsyonunda (maruz kalma ortamı) mikrobiyal pelleti tekrar süspanse edin.

3. Maruz kalmayı test etme

  1. Kontrol dahil olmak üzere her tüpe 150 uL yeniden süspanse edilmiş bakteri inokulumu ekleyin. V. anguillarum süspansiyonlarını 25 ° C'de 6 saat karanlıkta ve sürekli olarak inkübe edinÇökmesini önlemek için titriyor.
  2. Maruz kalma zamanının başında (T 0 ) ve sonunda (T 6 ), maruz kalan tüm bakteri süspansiyonlarında bakteri sayımı koloni oluşturma ünitesi (CFU) sayma yöntemleri kullanılarak gerçekleştirilir.
  3. Her bir maruz kalmış bakteri süspansiyonunun seri seyreltmelerini üç kat halinde hazırlayın ve on kat seyreltme faktörü uygulayın (10 -5'e kadar). 900 μL maruz kalma ortamı (% 2 NaCl) ile dolu ilgili boruya her bir bakteri süspansiyonundan 100 uL ekleyin. Bakterileri yeniden askıya almak için her adımda vorteks uygulayarak seri seyreltme işlemine devam edin.
  4. İlgili bölümdeki TSA Petri kaplarındaki 10-4 ve 10-5 seyreltmelerden oluşan plakadan 10 uL. Plakayı döndürerek damlaları küçük bir daireye hızlıca kaydırın. Plakaları 25 ° C'de 48 saat inkübe edin.

4. CFU Sayımı

  1. 48 saat sonra, Petri yemeklerinde yetiştirilen kolonileri sayın; Barındıran tabaklar bDoğru sayım için 5 ve 50 koloniler en uygunudur.
  2. Aşağıdaki formülleri uygulayarak her maruz kalmış bakteri süspansiyonunun mL başına canlı bakteri sayısını hesaplayın:
    10 -4 → CFU / mL = n ° CFU x 100 x 10,000
    10 -5 → CFU / mL = n ° CFU x 100 x 100,000
  3. Kontrol ile karşılaştırıldığında mortaliteyi değerlendirmek için paralel çoğaltılmalarda elde edilen sayımların ortalamasını kullanın. Aşağıdaki formülü kullanarak mortaliteyi yüzde olarak hesaplayın:
    M% = 100 - [(N / C) * 100]
    NOT: Burada N = toksik maddeye maruz kaldıktan sonra yetiştirilen CFU / mL sayısı; C = kontrol ortamında yetiştirilen CFU sayısı.
  4. Uygun bir istatistiksel yazılım kullanarak doğrusal regresyon analiziyle LC 50'yi ( örn . Aktif olarak çoğaltan bakterilerin sayısını mL başına% 50 CFU / mL azaltan toksikant konsantrasyonunu) hesaplayın (materyal tablosuna bakın). Tek yönlü varyans analizi (ANOVA) uygulayınTedaviler arasındaki önemli farklılıkları değerlendirmek için post-hoc pairwise t- testleri sayesinde.

Sonuçlar

V. anguillarum'un dört konsantrasyonda CuSO 4'e maruz bırakılmasına ilişkin üç bağımsız çalışmanın sonuçları açık bir doz-tepki ilişkisi ve aktif olarak çoğaltan ve referans toksikantın konsantrasyonunun artan şekilde kolonileri oluşturan bakterilerin belirgin bir azalmasını göstermektedir ( Şekil 1 ; ANOVA, F = 20.28, p <0.001). CFU / mL sayısı, kontrol (CNTR) ile karşılaştırıldığında 1.25 mg / L'de (post-hoc Tukey testi, p <0.05) anlamlı şekilde azaltıldı. Herhangi bir kültürlenebilir bakteri, test edilen en yüksek konsantrasyonda tespit edildi. Pozlama ortamının geniş tuzluluk aralığı boyunca CuSO4 toksisitesinde herhangi bir fark bulunamadı ( yani, 5, 20 veya 35 g / L NaCl, veriler gösterilmemiştir). Doğrusal olmayan regresyonu gösteren istatistiksel analizin temsili bir çıktısı İlave Şekil 1'de rapor edilmiştir . Üç bağımsız deneme için hesaplanan LC 50 değerleri ( Tablo 1) bu yöntemin uygulanabilirliği ve tekrarlanabilirliği üzerinde durmaktadır.

figure-results-1
Şekil 1: CuSO 4'e maruz bırakılan Vibrio anguillarum 4. Farklı konsantrasyonda CuSO 4 ile 6 saat süreyle maruz bırakılan ortalama CFU / mL (CFU = koloni oluşturma birimi) sayısı. Değerler, üç bağımsız denemenin ortalamasını (± SD) temsil etmektedir. Sarı kutularda aktif olarak replike olan ve kontrole (CNTR) göre koloniler oluşturan bakterilerin azaltılması (yüzdeler olarak) rapor edilmiştir. Kontrol ile post-hoc Tukey testine dayanan önemli farklılıklar yıldız işareti ile belirtilmiştir (* = p <0.05; ** = p <0.01). Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.

figure-results-2
Tablo 1: CuSO 4'e maruz bırakılan Vibrio anguillarum için öldürücü konsantrasyon (LC 50 ) değerleri . Üç bağımsız deneme ve araç (± SD) sonuçları bildirildi.


Ek Şekil 1: Doğrusal Olmayan Regresyon Analizi. Doğrusal olmayan regresyon analizinin (Logit-Hill modeli) temsilci çıktıları testin sonuçları üzerinde gerçekleştirildi. Bu rakamı indirmek için lütfen tıklayınız.

Tartışma

Bu çalışma, referans toksikant olan CuSO 4'ün toksik etkilerini değerlendirmek için başarılı bir şekilde uygulanan deniz bakterisi V. anguillarum'la yeni bir biyolojik tahlil açıklamakta olup, açık bir doz-tepki ilişkisi sergilemektedir. Deniz bakterisi V. anguillarum , haloolerant, her yerde bulunan ve deniz ekosistemlerinin temsilcisi olduğu için model organizma olarak seçilmiştir.

Test, geniş bir tuzluluk değerleri aralığında (5-40) gerçekleştirilebilir ve mikroorganizmaların tüm test süresince kolayca kurtulabildiği sürece, salma solüsyonlarını ve maruz kalma ortamı olarak sentetik veya doğal deniz suyunu kullanabilir. Bu, acayip ve deniz ortamları da dahil olmak üzere farklı türde numunelerin analiz edilmesini sağlar.

Maruz kalma aşamasında kirletici maddeler 8 ile olan etkileşiminden ve biyolojik tepki üzerindeki muhtemel etkisinden kaçınmak için büyüme ortamı gerekmez. thE protokolü güvenilir, hızlı, düşük maliyetli ve nispeten kolaydır. Sıvı-plakalı mikro sayımlar 9'un prosedürü, küçük (örnek) hacimlerin kullanılmasının avantajını sağlar, ancak bu, yüksek bir doğruluk derecesi ve sağlamlık anlamına gelmektedir. Her bir tedavi için üç bağımsız deneme ve tekrarın sonuçları, bu yöntemin yüksek tekrar edilebilirliğini göstermektedir. Bakterinin biyolojik bir model olarak kullanılması ve tekniğin uyarlanabilirliği, bu prosedürün ekolojik ve çevresel önemini desteklemektedir. Diğer kritik teknik konular, bakteriyel inokülumun hazırlanmasında ve prosedürün bazı adımlarında gerekli olan kısırlığa hassasiyettir.

Önerilen test, diğer deniz ekotoksikolojik testlerinden (24-96 saat) daha hızlıdır (6 saat) ve daha yüksek organizmaların kullanımından kaynaklanan etik sorunlara yol açmaz. Ayrıca, referans toksikant üzerine ilişkin veriler, akut t ile elde edilenlerle karşılaştırılabilir LC 50 değerlerini göstermektedir Diğer deniz türleri üzerinde 10 , 11 , iyi bir hassasiyet sergilediğini belirtir. Bakteriyel biyolojik tahliller arasında, V. fischeri lüminesans inhibisyon testi en yaygın ve iyi standardize edilmiş 12 . Bu biyolojik tahlil çok hızlıdır (15-30 dakika) ve katı fazlı numunelerin test edilmesi için geçerlidir, ancak lüminesans ölçümlerine müdahale eden renkli ve bulanık örneklerden etkilenebilir. Tuzluluk, yukarıda bahsedilen testin kullanımındaki sınırlayıcı bir faktördür ve% 2 NaCl gerekir 13 . Aksine burada V. anguillarum ile önerilen test, geniş bir tuzluluk değerleri aralığında uygun sonuçlar verir, bulanık veya renkli numuneler için herhangi bir sınırlama getirmez ve parlaklık analiz cihazlarına kıyasla daha az pahalı ekipman gerektirir. Çalışmamızın sonuçları ile V. fisheri'nin literatürdeki sonuçları arasında bir karşılaştırma 14 ,Ss = "xref"> 15 , 16 karşılaştırılabilir EC 50 değerlerini gösterir ve bu biyolojik tahlilin etkinliğini de destekler.

Bu biyolojik tahlil, şu anda mikroorganizma için mevcut olan testlerde kullanılan popülasyon büyüme oranı veya enzimatik aktivite inhibisyonu yerine, genellikle mortalite olarak adlandırılan bakteri kültürlenebilirliğinin azaltılmasını değerlendirir. LC 50 hesaplaması, genellikle deniz seviyesinin ekotoksikolojik değerlendirmesine uygulanan ve genellikle bitki noktası olarak hayatta kalma / ölüm oranına sahip olan diğer biyolojik tahliller ile karşılaştırılmasını sağlar. Bu testin güvenilirliğini ve tekrarlanabilirliğini değerlendirmek / onaylamak ve standardizasyonunu ve düzenleyici protokollerde kullanılmasını desteklemek için intercalibration uygulaması yapılması acilen gereklidir.

Nanomalzemelerin artan kullanımı ve çevredeki potansiyel salınımı, risk değerlendirmesi ihtiyacını işaret etmektedir 17 . Ancak, klasOrtaya çıkan bu kirleticiler için sical (eko) toksikolojik yaklaşımlar uygun fiyatlı sonuçlar vermez ve bazı adaptasyonlar gerektirebilir 18 . Bu yeni biyolojik tahlilin özellikleri, nanoparçacıkların toksisite değerlendirmesine kolay ve kullanışlı bir uygulama yapmasını sağlar. Aslında, farklı salinities'de tahlil yapma imkanı, toksisiteyi önemli ölçüde etkileyebilen, çevresel bir parametre değişkeni olan farklı iyonik kuvvetler altında nanoparçacık davranışı hakkında bilgi verecektir 19 . Ayrıca organik maddeler toksik etkileri 20 arttırarak absorpsiyonunu kolaylaştırabildiği veya agregaya neden olabileceği, biyoyararlanabilen fraksiyonu ve dolayısıyla toksisitesini düşürebileceği için, büyüme ortamı ve besin maddeleri kullanımına özellikle nanoparçacıkların ekotoksisite değerlendirmelerinde önerilmemektedir21.

Sonuç olarak, Vibrio anguillarum üzerindeki biyolojik tahlil apKlasik ve ortaya çıkan kirleticilerin risk değerlendirmesi için kullanılan romantizm aracı, ayrıca deniz ve tuzlu ortamların durumunun değerlendirilmesi için.

Açıklamalar

Yazarlar, rekabet eden mali çıkarlarının olmadığını beyan ettiler.

Teşekkürler

Bu çalışma, araştırma projesi tarafından finanse edildi: "NanoBioTech ortamı, Progetto 2: Ambiente, Biyo -Teknoloji Teknolojisi: Çevre ve Sağlık Projesi 2: Çevre" Ekotoksikolojik Araçlar ve Yöntemleri Nanopartiküllerin izlenmesi " ) Lazio-Consorzio Hypatia Bölgesi'nden LM'ye verilmiştir. AR, daha önce belirtilen proje çerçevesinde Tor Vergata / Regione Lazio-Consorzio Hypatia Üniversitesi'nden doktora sonrası hibe ile finanse edildi. ISPRA-Tor Vergata Üniversitesi (N. 2015/52857) ile yapılan bir anlaşma, tesislerin karşılıklı kullanımına ve araştırmacıların değişimine izin verdi.

Yazarlar, tüm mikrobik faaliyetler için koruyucu meleğimiz olan Prof. Maria Cristina Thaller'e, mikrobik dünyaya ilgi duyma ve konuyla ilgili araştırmalarımızı iyileştirmeye büyük katkılarından dolayı borçluyuz. Yazarlar Andrea Tornambè ve Eri'yi minnetle kabul ettilerKa Magaletti, Fitoplankton ekolojisi ve ekotoksikoloji ile ilgili ISPRA Laboratuarı ile değerli işbirliği için.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
Vibrio anguillarum (AL 102 suşu, serotip O1)NOIFMA (Norveç) laboratuvar koleksiyonundan elde edilmiştir
.Liofilchem610052Susuz Kültür Ortamı
Triptik Soya Suyu büyüme ortamıLiofilchem610053Susuz Kültür Ortamı
CuSO4· 5H2OSigma-Aldrich209198
NaCl Sigma-AldrichS-3014
Ekipman Adı<strong>CompanyKatalog NumarasıYorumlar/Açıklama
Biosafety Laminer Akış Başlığı ESCO
Kuluçka Merkezi 2100
Yazılımın AdıCompanyKatalog NumarasıYorumlar/Açıklama
Benchmark Dose Software US EPABenchmark Dozu 2.4.0 2012
Yılı

Kaynaklar

  1. Guidance on information requirements and chemical safety assessment. , ECHA (European CHemicals Agency). Available from: http://guidance.echa.europa.au/docs/guidance document/information (2008).
  2. Parvez, S., Venkataraman, C., Mukherji, S. A review on advantages of implementing luminescence inhibition test (Vibrio fischeri) for acute toxicity prediction of chemicals. Environm. Internat. 32 (2), 256-268 (2006).
  3. Rad, M., Shahsavani, D. Isolation and characterization of Vibrio (Listonella) anguillarum from catfish. Turkish J. Veter. Animal. 34 (4), 413-415 (2010).
  4. Thompson, F., Iida, T., Swings, J. Biodiversity of Vibrios. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 68, 403-431 (2004).
  5. Austin, B., Austin, D. A. Vibrionaceae representatives: characteristics of the disease. Bacterial Fish Pathogens: Disease of Farmed and Wild Fish. 29-30, Springer-Praxis. Chichester, UK. 108-115 (1999).
  6. Larsen, J. L., Mellergaard, S. Microbiological and hygienic problems in marine aquaculture: furunculosis and vibriosis in rainbow trout (Salmo gairdneri). L.). Bull. Eur. Assoc. Fish Pathol. 1, 29-31 (1981).
  7. Oliver, J. D. The viable but nonculturable state in bacteria. J. Microbiol. 43 (1), 93-100 (2005).
  8. Hsieh, C. -Y., Tsai, M. -H., Ryan, D. K., Pancorbo, O. C. Toxicity of the 13 priority pollutant metals to Vibrio fisheri in the Microtox chronic toxicity test. Sci. Total Environ. 320, 37-50 (2004).
  9. Migliore, L., Rotini, A., Thaller, M. C. Low doses of Tetracycline trigger the E. coli growth: a case of hormetic response. Dose-Response. 11, 550-557 (2013).
  10. Adams, M. S., Stauber, J. L. Development of a whole-sediment toxicity test using a benthic marine microalga. Environm. Toxicol. Chem. 23 (8), 1957-1968 (2004).
  11. Manfra, L., et al. Ecotoxicity of diEthylene Glycol and risk assessment for marine environment. J. Hazard. Mat. 284, 130-135 (2015).
  12. Microtox® Acute Toxicity Solid-Phase Test. , Azur Environmental. 20 (1995).
  13. Metodi analitici per le acque. Manuali e Linee Guida (Analytical methods for waters. Manual and Guidelines). Metodi Ecotossicologici (Ecotoxicological methods). 29 (3), APAT IRSA-CNR. 8030(2003).
  14. Heinlaan, M., Ivask, A., Blinova, I., Dubourguier, H. -C., Kahru, A. Toxicity of nanosized and bulk ZnO, CuO and TiO2 to bacteria Vibrio fischeri and crustaceans Daphnia magna and Thamnocephalus platyurus. Chemosphere. 71, 1308-1316 (2008).
  15. Mortimer, M., Kasemets, K., Heinlaan, M., Kurvet, I., Kahru, A. High throughput kinetic Vibrio fischeri bioluminescence inhibition assay for study of toxic effects of nanoparticles. Toxicol. In Vitro. 22 (5), 1412-1417 (2008).
  16. Bondarenko, O. M., et al. Multilaboratory evaluation of 15 bioassays for (eco) toxicity screening and hazard ranking of engineered nanomaterials: FP7 project NANOVALID. Nanotoxicology. 10 (9), 1229-1242 (2016).
  17. Matranga, V., Corsi, I. Toxic effects of engineered nanoparticles in the marine environment: model organisms and molecular approaches. Mar. Envir. Res. 76, 32-40 (2012).
  18. Corsi, I., et al. Common strategies and technologies for the ecosafety assessment and design of nanomaterials entering the marine environment. ACS NANO. 8 (10), 9694-9709 (2014).
  19. Handy, R. D., von der Kammer, F., Lead, J. R., Hassellöv, M., Owen, R., Crane, M. The ecotoxicology and chemistry of manufactured nanoparticles. Ecotoxicology. 17, 287-314 (2008).
  20. Kasemets, K., Suppi, S., Kunnis-Beres, K., Kahru, A. Toxicity of CuO nanoparticles to yeast Saccharomyces cerevisiae BY4741 wild-type and its nine isogenic single-gene deletion mutants. Chem. Res. Toxicol. 26, 356-367 (2013).
  21. Ivask, A., et al. Mechanisms of toxic action of Ag, ZnO and CuO nanoparticles to selected ecotoxicological test organisms and mammalian cells in vitro: A comparative review. Nanotoxicology. 8 (1), 57-71 (2013).

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Akut Toksisite TestiKoloni Olu turan BirimlerLC50 BelirlemeBak r S lfatSeri Dil syonSalin Sol syonuBakteriyel K lt rlenebilirlik
Deniz Bakterileri ile Ekotoksikolojik Yöntem
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.