Bu çalışmada kullanılan tüm fareler C57BL/6 kökenli idi. Bütün hayvanlar patojen-Alerjik koşullar altında tutuldu. Tüm deneyler Alman hayvanları koruma kanunu (TierSchG BGBl. normatif göre gerçekleştirilen BEN S 1105; 25.05.1998) ve izni numarası altında 33.4-42502-04-13/1281 ve 162280 hayvan deneyleri etik ve devlet ofis (tüketicinin korunması, alt Saksonya eyalet Office ve gıda güvenliği), alt Saksonya Komitesi tarafından kabul edildi.
1. CFSE OT boyama-ı T hücreleri ve evlat edinen Transfer
Not: OT-ben fareler T hücre reseptör (TCR) sabit α ve β zincirleri birlikte OVA, IMMUNO-baskın peptid tanımak express transgenically oluşturulan hayvanlar vardır SIINFEKL10,11. Sonuç olarak, bu fareler SIINFEKL özgü CD8 oldukça yüksek bir dizi var+ T hücreleri normal ya da OVA aşı fareler (≤ % 1)13ile karşılaştırıldığında (%97)12 .
- İzlenebilir CD8 yalıtım+ T hücreleri OT-ben fareler T lenfosit özgü Thy1bir (Thy1.1) gen ifade:
- 6-9 haftalık OT ötenazi-ben fare CO2 Solunduğunda servikal çıkığı14tarafından takip. Cerrahi makas, cerrahi pense ve forseps yardımıyla vücut cilt ayırma ile deri kesim tarafından dalak ve büyük lenf düğümleri (sadece kasık, aksiler ve servikal çiftleri) teşrih ve yer onları Petri yemekler (60 x 15 mm) içeren her bir 100 µm gözenek kafes Kupası doku bileme ve hücre serbest bırakılması için.
- Buzda muhafaza tam RPMI Orta (RPMI 1640, % 10 v/v FCS, 100 U/mL penisilin, 50 µg/mL streptomisin) 3-5 ml Petri yemekler (her bir kafes Kupası) korumak.
- Organları bir şırınga dalgıç veya benzer bir steril aleti yardımıyla püre (önceki kesme gerekli değildir) ve 15 mL santrifüj tüpleri elde edilen tek hücre süspansiyon toplamak.
- Hücre süspansiyon vasıl 300 x g 4 ° C'de 10 dakika santrifüj kapasitesi Süpernatant atmak. 10 mL soğuk PBS hücrelerde Santrifüjü tarafından yıkama ve dalak üzerinden eritrositler pelet 1 mL/dalak amonyum klorür arabelleği (ACK arabellek, piyasada bulunan) yeniden askıya tarafından parçalayıcı. Buz üzerinde 1,5 dk için hücreleri kuluçkaya ve daha sonra (daha önce yapılan gibi) Santrifüjü tarafından 10 mL soğuk PBS hücrelerle yıkayın.
- Pelet PBS (pH 7.2) içeren % 5 fetal Sığır serum Manyetik izolasyon için 1 mL aynı tüpte yeniden askıya.
- Manyetik izolasyon gerçekleştirmek için CD8 negatif seçime devam etmek+ T hücreleri üretici yönergelerine uygun bir manyetik izolasyon kit kullanarak veya iletişim kuralları15yayınlandı.
- CFSE boyama gerçekleştirmek için önce CD8 saymak+ T hücreleri elde OT-ben fare bir otomatik hücre sayaç (parçacık counter) kullanarak. 1-5 x 107 hücre/mL 5 mikron PBS CFSE 15 ml şahin tüp ışıkta korunuyorsunuz 37 ° C'de 7 dakika ile 1-5 mL hacminde leke.
- Hücrelere fetal Sığır serum aynı cilt (1:1) ekleyerek CFSE boyama gidermek ve onları ışıktan korunan 37 ° C'de ek 7 min için kuluçkaya. PBS 10 mL hücrelerle iki kez yıkayın.
- Bir otomatik hücre sayaç kullanarak hücreleri saymak. 3-5 x 106 hücreler/fare 100 µL intravenöz enjekte için 3-5 x 107 hücre/mL PBS için cep numarasını ayarla (IV) kuyruk damar yolu ile.
- Kuyruk ven enjeksiyonları gerçekleştirmek için uygun restrainers farelerde hareketsiz. Sıcak arka alan ve kuyruk farelerin 20-25 cm uzakta fare kuyruğu ven vazodilatasyon izin vermek 1-3 dakika arasında bir kırmızı ışık lamba kullanarak enjekte edilir.
Not: Bu kolaylığı ven algılama ve hücre süspansiyon yönetimi için yardımcı olur.
- (Eliyle fareler ve lamba arasında yer) sağlamak değil de fareler için sıcak ve kuyruk damarları açıkça izlenebiliyor, enjeksiyon için devam olduğunu. Hücreleri bir 1 mL şırınga ile 25'lik iğne16kullanarak yan veya dorsal kuyruk damar içine enjekte.
2. aşılama (+/-adjuvan OVA Endo-ücretsiz)
- OT ile nakledilen fareler koyun-hücreleri (adım 1.7, Şekil 1) bir anestezi odasında ve bir anestezi makinesi14tarafından isoflurane oksijen yönetmek.
- Ne zaman fare anestezi altında tamamen uyuyor, odasından çıkar ve temiz enjeksiyon gerçekleştirmek için bir elektrikli saç kesme makinesi kullanarak gluteus superficialis (yanal alt sırt) alan üzerinde fare kürk tıraş uygulama alanını iyi bir görünüm ile.
- Aşının, SC 25'lik iğne kullanarak traş alanında 50 µL enjekte.
3. yalıtım lenfositleri ve Akış Sitometresi Analizi için boyama
- Yalıtım lenfositleri ve splenocytes
- Aşı fareler tarafından servikal yerinden çıkması takip CO2 Solunduğunda ötenazi.
- Boşaltma ve uzak lenf düğümleri ve dalak ayıklamak ve ayrı Petri yemeklerinde 100 µm gözenek örgü bardak doku bileme ve hücre serbest bırakılması için içeren koyun. 1.1.2 1.1.3 aracılığıyla adımları.
- Süpernatant Santrifüjü sonra dikkatle boşaltmak ve hücre granül (yaklaşık 100 µL) kalan PBS aynı birimdeki yeniden askıya alma.
- Akış Sitometresi Analizi için boyama
- Tablo 1' de tasvir konsantrasyonlarda boyama antikorlar içeren bir ana karışımı bir 15 mL santrifüj tüpü hazırlayın, böylece 2 x verimli boyama mix yoğunlaşmıştır. Yeterli hacim örnek başına 100 µL için ana karışımı hazırlayın. Mix hücreleri ve ana mix 1:1 ve 30 dk için 4 ° C'de kuluçkaya.
Not: Son boyama hacim örnek başına 200 µL (hücre Pelet + 100 µL antikor ana Mix 100 µL) olmalıdır.
- Hücreleri tarafından iki kez aralıklarla iki kez PBS, 10 mL ekleme 1.1.3 içinde açıklandığı gibi yıkayın.
- 0.5-1 lekeli hücreleri yeniden askıya PBS mL toplama ve transferi akış sitometresi tüpler süspansiyon. Her zaman buz üzerinde örnekleri tutmak ve ışıktan korunan.
4. akış sitometresi
- Her zaman 70-100 µm filtreleri kullanarak hücre örnekleri ön filtre.
- Tek boyama tazminat denetimleri tablo 1 (boncuk veya hücreleri) ayrıntılı fluorophores için hazır olun.
Not: Tazminat sitometresi veya analiz yazılımı17,18,19 yılında gerçekleştirilen ve tüm örnekler için uygulanan gerekir.
- Şekil 2' de tasvir gating strateji izleyin. Kısaca, kapı nüfus ileri dağılım yüksekliği ileri dağılım alanı (Şekil 2A) ve tekrar yan yan dağılım alanı (SSA, Şekil 2B) birini dışlamak için geniş dağılım vs.
- Kapı BV 650 (auto-floresan) vs FITC (CFSE) doğru CFSE ayırımcılık için komplo tarafından Şekil 2B popülasyondan yüksek otomatik floresan hücreleri hücrelerden lekeli. Boncuk veya BV 650 için tazminat denetimlere Birleşik antikor ile lekeli hücreler içerir. Bu arsa (Şekil 2C) BV 650 vs FITC OT kapı için kullanılır-ben CFSE hücreleri lekeli.
- Şekil 2 c nüfus için Pe-Cy7 (Thy1.1 - CD90.1-) APC (CD8) vs vs alıcı fareler donörden türetilmiş hücre ayırmak için kapı.
Not: Hücreleri OT türetilmiş-ben donör fareler WT (C57BL/6, alıcı) hücrelerin farelerde elde edilen Thy1.2+ (CD90.2) (Şekil 2B) ise Thy1.1+ (CD90.1), değildir. Bazı laboratuvarlar OT var-ben bir Thy1.2 arka plan ve WT (C57BL/6) bir Thy1.1 içinde fareler. Bu durumda Thy1.2 karşı antikor OT için kullanmak zorunda-geçişi hücre.
- CD8 yeniden kapı+ hücreleri Thy1.1+ popülasyondan APC (CD8) BV 450 (CD4) oluşan bir kapıya komplo tarafından (Şekil 2E).
- CD8 çubuk grafik görünümünü kullanarak Şekil 2E içinde geçişli nüfus görüntülemek+ CFSE (FITC, 530/15 Kanal - mavi lazer-), gösterilen hücre kapısı proliferated nüfus yoğunluklarını 10 dahil ederek2 düzeyine kadar nerede bölünmemiş denetim nüfus (yoğunluklarda ~ 105, CFSE boyama ve akış sitometresi voltaj ayarı etkinliğini bağlı olarak) vardır (Şekil 2F).
- Ölü hücreleri paralel yayılması değerlendirme olarak değerlendirmek amacıyla bir ek Kapısı (Şekil 2 değil görüntülenen) çizim FITC vs L/D işaretleyici (450/20 kanal, UV Lazer) olun.
- Tazminat denetimleri için en az 5000 olaylar ve 10.000 olayları (gate E, Şekil 2) bir akış sitometresi adlı örneklerinden elde etmek. Düşük veya orta akış sitometresi çalıştırmak (20.000 olaylar/s akış hızı fazla olamaz).