Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Formalin-sabit Dokulardan Küçük Kodlamaz RNA'nın ve Kastrasyona Dirençli Prostat Kanseri Hastalarından Serum Türetilmiş Ekzozomların Dizilimi

5.9K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/60549

⸱

19 Kasım 2019

 ,  ,  ,  , 
1Department of Biochemistry and Molecular Biology, Augusta University, 2Department of Urology, Veterans Affairs Medical Center and University of California, San Francisco, 3Department of Pathology, Veterans Affairs Medical Center and University of California, San Francisco

Bu makalede

Özet

Tedavi direnci genellikle ileri prostat kanseri olan hastalarda gelişir, ve bazı durumlarda, kanser nöroendokrin prostat kanseri denilen ölümcül bir alt tip ilerler. Bu geçişi kolaylaştıran küçük kodlamayan RNA aracılı moleküler değişikliklerin değerlendirilmesi, daha iyi hastalık tabakalaşmasına ve nöroendokrin prostat kanserigelişimine yol açan nedensel mekanizmaların tanımlanmasına olanak sağlayacaktır.

Özet

Androjen reseptörünün ablasyon (AR) androjen yoksunluğu ile sinyal başlangıçta kanser regresyon ile sonuçlanan prostat kanseri için tedavinin ilk satırının hedefidir. Ancak, vakaların önemli sayıda, hastalık ileri ilerlemiş ilerler, hadım dirençli prostat kanseri (CRPC), hangi sınırlı tedavi seçenekleri vardır ve genellikle agresif. Uzak metastaz çoğunlukla agresif hastalığın bu aşamasında gözlenir. CRPC başlangıçta sağkalımı artırmak AR yol inhibitörleri ikinci nesil tarafından tedavi edilir, tedavi direnci ortaya çıkması takip. Nöroendokrin prostat kanseri (NEPC), nöroendokrin farklılaşma (NED) olarak bilinen bir transfarklısiasyon süreci ile tedavi direnci nin bir sonucu olarak sıklıkla gelişen prostat kanserinin (PCa) nadir bir çeşididir ve pca hücreleri bir soy değişimine uğrar. adenokarsinomlardan ve nöroendokrin (NE) soy belirteçlerinin artmış ekspresyonu gösterir. NEPC'ye ilerleme ve transdifferentiasyonu yönlendiren genomik değişikliklere ek olarak, epigenetik faktörler ve mikroçevresel ipuçları hastalığın ilerlemesini niçin yönlendiren temel oyuncular olarak kabul edilir. Bu el yazması, gelişmiş PCa ile ilişkili epigenetik sürücüleri (yani, kodlamayan küçük RNA'ları) tanımlamak için ayrıntılı bir protokol sağlar. Formalin-sabit parafin gömülü (FFPE) metastatik dokulardan ve buna karşılık gelen serum kaynaklı ekstrasellüler veziküllerden (EVs) saflaştırılmış mikroRNA'lar kullanan protokol, sıralama için uygun kalite kontrolüne sahip kütüphanelerin nasıl hazırlanacağını açıklar. bu örnek kaynaklardan mikroRNA'lar. RNA'yı hem FFPE hem de EVs'den yalıtmak genellikle zordur, çünkü çoğu bozulmuş tur veya miktar olarak sınırlıdır. Bu protokol, sıralama da en özel okumave yüksek kaliteli verileri elde etmek için RNA girişlerini ve cDNA kitaplıklarını optimize etmek için farklı yöntemler üzerinde ayrıntılı olacaktır.

Giriş

Prostat kanseri AR sinyalizasyon yoluyla hareket androjenler tarafından tahrik edilir. Bu nedenle, AR yolu hedefleme hastalık için dayanak tedavi1. Ancak, direnç genellikle hedeflenen tedaviler in bir sonucu olarak ortaya çıkar ve hastalık ileri metastatik CRPC2ilerler. CRPC başlangıçta sağkalımı artırır enzalutamide ve abiraterone2,3 içeren AR tedavisinin ikinci nesil tarafından tedavi edilir. Ancak, NEPC gibi öldürücü varyantlar genellikle tedavi seçenekleri sınırlı olan tedavi edilen CRPC olgularının %25−30'unda ortaya çıkar ve mortalite artışına yol açar3. NEPC NED olarak bilinen bir geri dönüşümlü transfarklısyon süreci ile ortaya çıkar, PCa hücreleri adenokarsinomlardan bir soy anahtarı geçmesi ve AR azalmış ekspresyonu ve enolase 2 dahil OLMAK ÜZERE NE soy belirteçleri artan ekspresyonu göstermek 2 (ENO2), kromogranin A (CHGA), ve sinaptophysin (SYP)4. Bu direnç varyantları terapötik müdahaleler sonucunda ortaya çıkar göz önüne alındığında, bu ölümcül nesil yol açan yolları deşifre etmek esastır, PCa formu tedavi etmek zor.

NEPC'nin genomik leri yakın zamanda Beltran ve arkadaşları tarafından yapılan kapsamlı bir çalışmada deşifre edilmiştir ve kopya numarası değişiklikleri, mutasyonlar, tek nükleotit polimorfizmleri (SNP) ve hasta kaynaklı metastatik dokulardan DNA metilasyon 5 analizedilmiştir. PCa'nın bu agresif formunun genomiklerinin anlaşılmasında ki önemli ilerlemeye rağmen, CRPC-adenokarsinomunun NEPC'ye geçişinde rol oynayan küçük kodlamayan RNA'lar (mikroRNA'lar) dahil olmak üzere epigenetik faktörler hakkında çok az şey bilinmektedir. MicroRNA'lar (miRNA'lar) 22 bp uzunluğunda, çift iplikli RNA'lardır ve öncelikle gen ekspresyonunu transkripsiyon eliyle baskılayarak 3'-çevrilmemiş bölgelerle (UTR) diziye özgü etkileşimler yaparak hareket eden mRNA hedefleri6'dır. Birkaç oncomiRs ve tümör baskılayıcılar şimdi tespit edilmiştir, ve hastalık başlangıçlı ve metastaz düzenleyen rollerini de farklı kanserlerde çalışılmıştır6,7. Bu küçük kodlamaz RNA'lar genellikle hastalık mortalite6,8,9kontrolünde çok önemli hedefler olarak hizmet vermektedir. Daha yeni araştırmalar, kanser metastazında miRNA'ların parakrin etkilerini anlamak üzerine odaklanmıştır, örneğin ekzozomlar, kan dolaşımında akan ve tümör hücrelerinin bu ikincil habercileri çekirdeksiz bir ortamda metastatik yerlere göndermesine izin vermek10,11,12. EVs ev sahibi hücrelerden dönüştürücü etkileri aktarmak için tümör hücrelerinden miRNA'lar taşır12. Bu nedenle, tümör hücrelerinin ikincil habercileri olarak EVs belirlenmesi hastalığın şiddetinin noninvaziv tespitiyararlı olabilir.

MiR-1246 agresif PCa'lardan evs son derece upregulated, ve hastalığın şiddetini gösterir13. Bu EV ilişkili miRNA'lar sadece hastalığın noninvaziv biyobelirteçleri olarak hizmet değil, aynı zamanda tümörigenez sürüş işlevsel olarak önemli roller oynamaktadır. Bu nedenle, noninvaziv biyobelirteçlerin daha iyi tanımlanmasına ve işlevsel önemine olanak sağlamak için PCa'nın dirençli formları ile ilişkili miRNA repertinin önemini anlamak önemlidir.

Yeni nesil sıralama gelişiyle mutasyonlar, kromozomal tehsülasyonlar, kromotomal tehkisler ve metilasyon gibi genom değişiklikleri içeren tümör manzara ayrıntılarını incelemek için en kapsamlı platform sundu, bunların hepsi kanser in formu ve doğasına önemli ölçüde katkıda14,15,16. Aynı şekilde, aynı zamanda bir tümör hücresinde meydana gelen ve genellikle hastalık şiddeti önemli oyuncular olan büyük epigenomik değişiklikleri anlamak için önemli bir araçtır17. NEPC üretimi ile ilişkili miRNA repertuarının anlaşılması amacıyla FFPE metastatik CRPC dokuları ve buna karşılık gelen serum kaynaklı EV'lerde küçük RNA dizilimi yapılmıştır. Bu iki örnek kaynaktan birinden elde edilen RNA verimi (1) düşük ve (2) formalin fiksasyonu ve EV izolasyonu nedeniyle sıklıkla oluşan bozulmanedeniyle kötü kalitededir. Ayrıca, cDNA kitaplıkları oluşturmak kritik, ama hantal, bir sıralama çalışmasının adımıdır. Bu nedenle, bu RNA'ları yalıtmak ve bunları küçük RNA sıralamaiçin kitaplıkoluşturmak için kullanmak için yöntemler doğru ve güvenilir veri oluşturmak için optimizasyon gerektirir.

RT-PCR, mikrodiziler ve yerinde hibridizasyon (ISH) dahil olmak üzere farklı örneklerde miRNA ekspresyonu profillemek için çeşitli yöntemler vardır. RT-PCR ve ISH tarafından miRNA ekspresyonu değerlendirmek için FFPE doku kaynaklı RNA kullanarak bir protokol son zamanlarda18yayınlandı . Daha yeni teknolojiler, bir örnekte miRNA ifadesini profilleme için daha kapsamlı ve kapsamlı platformlar sunar. NanoString nCounter hassas bir miRNA algılama platformu19sunar, ancak algılama genellikle dizi (~ 2.000) mevcuttur miRNA sayısı ile sınırlıdır. Böyle bir senaryoda, yeni nesil sıralama gibi daha hassas ve ayrıntılı bir platform miRNA tanımlama ve farklı örneklerde eşzamanlı profilleme çok daha geniş bir derinlik sunuyor20. Yöntem PCa hastalarından idrar veya plazma da miRNA izlerini belirlemek için kullanılmıştır21,22,23. Mevcut makalede, ffpe dokuları ve serum kaynaklı EV RNA'lar kullanarak agresif CRPC ile ilişkili miRNA profillerini incelemek için yeni nesil bir sıralama platformu kullanmak üzere bir protokol sunulmuştur.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Bu çalışma, ABD Ortak Kuralı'nın etik kurallarına uygun olarak yürütülmüş ve Kurumsal İnsan Araştırmaları Komitesi tarafından onaylanmıştır.

1. Mikrodiseksiyon

NOT: Adenokarsinom (CRPC-Adeno) veya NE farklılaşması (CRPC-NE) olan FFPE metastatik CRPC dokuları Prostat Kanseri Biyorepozitory Network'ten (PCBN) alındı. Cam slaytlar üzerinde on mikron PCa bölümleri daha önce18tartışıldığı gibi manuel mikrodiseksiyon için hazırlanmıştır. Kısaca özetlemek gerekirse:

  1. Slaytları ksilene (her biri 2x, 10 dk) ıslatarak doku bölümlerini deparafinize edin. Daha sonra dereceli etanolde 5 dakika boyunca slaytları kuluçkaya yatırarak bölümleri yeniden sulandırın (%100, %95, %90, %80 ve %70), ardından damıtılmış su yıkama ve hematoksilin (30 s Soak) ile boyama.
  2. Hematoksilin boyama sını takiben doku kesitlerini su ile yıkayın. Daha sonra dereceli etanol yerleştirerek doku bölümlerini dehydrate (70%, 80%90, 95%, 100%) (5 dk her) ksilene (5 dk) takip.
  3. Tümör bölgelerini (yani adenokarsinomlar veya NED) tanımlamak için ilgili hematoksilin ve eozin (H&E) slaytlarını analiz edin ve bu tümör bölgelerini ve normal komşu bölgeleri tahta sertifikalı bir patolog yardımıyla işaretleyin. Bu H&E slaytlarını yol haritası olarak kullanarak, tümör ile normal bölgeleri ayırt etmek için yukarıdaki adımda elde edilen hematoksilin lekeli dokuları işaretleyin.
  4. Neşter bıçağı kullanarak işaretli doku kaydırağı dikkatle mikroskop altında inceleyin.
  5. Elektrostatik yüklü jel yükleme pipet uçları kullanarak ayrı tüplerde normal ve kanserli alanlardan parçalanmış doku toplamak. Şarj lı uç, parçalanmış dokuyu çeker ve diseksiyon dan sonra maksimum doku iyileşmesine olanak tanır. Doku yüklü uca yapışır sonra, boş bir 2 mL toplama tüpü içine ucu kesti.

2. Serum türetilmiş EV'lerin izole

NOT: Adenokarsinom (CRPC-adeno) veya NE farklılaşması (CRPC-NE) olan metastatik CRPC'li hastalardan alınan dondurulmuş hasta serum örnekleri, onaylı bir IRB protokolü kullanılarak PCBN'den temin edildi ve kullanılmadan önce -80 °C'de saklandı. Serum örnekleri, mikrodissected dokular için kullanılan larla aynı hasta kümesinden, ilgili dokular ile serum kaynaklı EVs arasında karşılaştırma sağlamak amacıyla toplanmıştır. Evv'leri toplamak için ticari olarak kullanılabilen bir serum EV izolasyon reaktifi kullanıldı.

  1. Dondurulmuş hasta serum örneklerini 4 °C'de eritin.
  2. 110 μL çözülmüş serum numunesi kullanın ve 30 dakika boyunca 2.000 x g'de döndürün.
  3. Sonraki EV / ekzozom izolasyon için supernatant toplamak ve enkaz pelet atın. Supernatant'a 30 μL serum ekzozom izolasyon reaktifi ekleyin ve 4 °C'de 30 dakika kuluçkaya yatırın.
  4. 10 dakika boyunca 10.000 x g.'de spin verin. EV'in tüketen serumu ayrı bir 1,5 mL tüpte peleti rahatsız etmeden dikkatlice toplayın ve gerekirse ileride analiz için -80 °C'de saklayın.
  5. Çekirdeksiz suda hazırlanan 70 μL fosfat tamponlu salin (PBS) içinde EV peletyeniden askıya. Parçacıkların kalitesini ve sayısını değerlendirmek için parçacık izleme analiz sistemi için bir aliquot tutun. Numunenin geri kalanını bir sonraki analize kadar -80 °C'de saklayın.

3. Mikrodissected Prostat Doku ve Evlerinden RNA İzolasyon

NOT: Toplam RNA mikrodissected dokular ve saflaştırılmış EV'ler birkaç değişiklik ile üreticinin talimatları na göre ticari olarak kullanılabilir bir kit(Malzeme Tablosu)kullanılarak izole edildi. Aşağıdaki bölümlerde bu yordamlar önemli adımlara özel olarak açıklayınız:

  1. RNA'yı mikrodiskoplu dokulardan ayırın.
    1. 150 μL proteinaz K tamponunda mikrodiskoplu FFPE dokusunu yeniden askıya alın. Uçtan kalan dokuyu girdap ve pipet le karıştırın. 1 dk için 11.000 x g spin.
    2. Pelete 10 μL proteinaz K ekleyin. Pelet beyaz dönene kadar 2 dk bekleyin. Pipet birkaç kez yukarı ve aşağı.
    3. 56 °C'de 16 dk. Girdap her 3 dakikada bir kuluçkaya yatırın.
    4. Numuneleri çıkarın ve ısı bloğunun 80 °C'ye ulaşmasına izin verin. Bloktaki numuneleri her 3 dakikada bir 16 dk. Girdap'a inküler.
    5. 3 dakika buz üzerinde kuluçka.
    6. 15 dk. Süpernatant'ı yeni bir 2 mL tüpe aktarın.
    7. 16 μL DNase güçlendirici tampon ekleyin ve ardından 10 μL DNase I. Mix tüpü hafifçe ters çevirerek ve oda sıcaklığında (RT) 15 dakika kuluçkaya yatırın.
    8. Kırmızı kan hücresi (RBC) lisis tampon 320 μL ekleyin. Tüpü ters çevirerek karıştırın ve sonra 1.120 μL% 100 etanol ekleyin. 4 °C'de depolanan spin kolonlar üzerinde hemen aktarın. 30 s için 8.000 x g spin.
    9. Kolonları 2kat yıkayın tamponuyla yıkayın ve artık yıkama tamponunu çıkarmak için 20.000 x g'de sütunları 5 dk çevirin.
    10. Spin sütununun 2−3 dakika kurumasını bekleyin, ardından 19 μL RNase içermeyen su ile erteleyin. Saflaştırılmış RNA'yı bir spektrofotometrede ölçün ve numuneyi 40 ng/μL'ye normalleştirin.
  2. Serum kaynaklı EV'lerden RNA izolasyonu.
    1. Bir kit kullanarak ekzozomal RNA'yı izole edin. Saflaştırılmış EV süspansiyonunun 75 μL'lik lysis tampon A ve 9.3 μL'lik lysis tamponU B'yi 50 μL'ye ekleyin.
      NOT: EVs tam lysis sağlamak için yaklaşık 10 dakika için tüp ters bırakarak örnek karıştırma tutun.
    2. 130 μL %100 etanol ekleyin ve numuneyi ters çevirerek hemen karıştırın. Bir spin sütununa aktarın ve sonra 1 dk için 3.300 x g'de döndürün.
    3. Sütun2x'i yıkama tamponuyla yıkayın. Yıkama tamponu tamamen kaldırmak için 3 dk için 1.300 x g sütun spin.
    4. Sütunun 2 dk kurumasını bekleyin. Kolona 18 μL elüsyon tamponu ekleyin ve 2 dk. Spin'de 400 x g'da 1 dk'da oturun ve ardından 3 dk için 5.800 x g'da ikinci bir dönüş yapalım.
    5. RNA'nın numuneden verimini artırmak için kitte bulunan eluted arabellek ile 3.2.4 adımını tekrarlayın.
    6. Numuneyi bir spektrofotometre üzerinde ölçün ve 40 ng/μL'ye normalleştirin.

4. Küçük RNA Sıralamaiçin Kütüphane Hazırlama

NOT: İzole Edilmiş RNA örneklerinden cDNA kitaplıkları oluşturmak için küçük bir RNA kitaplık hazırlık kiti(Malzeme Tablosu)kullanılmıştır. Kitaplıklar oluşturmak, arındırmak ve kalite kontrol etmek için adımlar bir sıralayıcı üzerinde çalışan önce herhangi bir sıralama protokolü için çok önemlidir onlar sonunda bir çalışma çıktı verilerinin kalitesini belirlemek gibi. Bu nedenle, her adımile dikkatle devam edin. Üreticiden gelen kurallar, en az 50 ng RNA kullanmanızı önerir. Genellikle bu iki örnek kaynaktan elde edilen toplam RNA'nın kalitesiz liği ve düşük miktarları göz önüne alındığında, bu protokol 100 ng'ye kadar düşük RNA konsantrasyonları için optimize edilebiyir. Aşağıdaki protokol bir kitaplığın bir örneği içindir.

  1. Adaptör-ligated cDNA oluşturun.
    1. Normalleştirilmiş (40 ng/μL) RNA numunesinin 5 μL'sini kullanın. 1 μL 3' adaptör ekleyin. Numuneleri kuluçkaya yatırmadan önce termal döngüciyi 70 °C'ye önceden ısıtın. 2 dk. Bir sonraki adıma geçmeden önce numuneleri buz üzerinde hemen aktarın.
    2. Ayrı bir tüpte, 2 μL ligasyon tamponu, 1 μL RNase inhibitörü ve 1 μL T4 RNA Ligase 2, bir silme mutantı karıştırın. Yukarı ve aşağı boru lar oluşturarak karıştırın ve RNA/3' adaptörü ile bu karışımın 4 μL'sini tüpe ekleyin.
    3. Önceden ısıtılmış olan termal döngüye 28 °C'ye ve 1 saat kuluçkaya yatırın.
    4. Numuneleri termal blokta tutarken 1 μL stop çözeltisi ekleyin. 28 °C'de 15 dakika daha kuluçkaya yatırın.
    5. Tüpleri çıkarın ve bu adımdan hemen sonra buz üzerinde tutun.
    6. Ayrı bir tüpe 1 μL 5' adaptör ekleyin.
    7. Önceden ısıtılmış bir ısı döngüsüne 70 °C'ye ve 2 dakika kuluçkaya yatırın.
    8. Adaptörlerin yeniden annealing önlemek için hemen buz üzerine tüp yerleştirin.
    9. Denatüre 5' adaptör tüpüne 1 μL 10 mM ATP ekleyin. Pipetleme ile karıştırın ve karışıma 1 μL T4 RNA ligase ekleyin. Pipetleme ile karıştırın ve 3' adaptör-ligated RNA içeren tüp için bu karışımın 3 μL ekleyin. Önceden ısıtılmış olan termal döngücün 28 °C'ye ve 1 saat kuluçkaya yatırılmasına yol aç.
    10. Hemen buza aktarın ve numunelerle daha fazla ilerleyin veya ileride kullanım için -20 °C'de saklayın.
    11. RT-PCR gerçekleştirmek için, her adaptörle bağlı RNA'dan 6 μL kullanın ve 1 μL RNA RT astar ekleyin. Önceden ısıtılmış olan ısı lösi kvericibine 70 °C'ye aktarın. 2 dk kuluçka.
    12. Ayrı bir tüpte 2 μL 5x iplikçik tamponu, 0,5 μL 12,5 mM dNTPs, 1 00 mM DTT 1L, 1 μL RNase inhibitörü ve 1 μL ters transkriptaz karıştırın. Adaptörle bağlanan RNA'ya bu karışımın 5,5°L'sini ekleyin ve önceden ısıtılmış olan termal döngüye 50°C'ye aktarın. 1 saat kuluçka.
    13. Adaptörle bağlanan cDNA'yı hemen buza aktarın.
    14. Ayrı bir tüpte 25 μL PCR karışımı, 2 μL RNA PCR astar, 2 μL RNA PCR astar indeksi ve 8,5 μL RNase içermeyen suyu karıştırın. Adaptör-liglenmiş cDNA 12,5 μL bu karışımın 37,5 μL ekleyin. Önceden ısıtılmış olan termal döngüye 98 °C'ye aktarın. Termal çevrimciyi üreticiprotokolünde önerildiği gibi, çevrim numarası 11 yerine 15 olarak değiştirildiğinde programla.
      NOT: Kullanılan tüm astarların dizileri Tablo Malzemelertablosu altında listelenmiştir.
    15. Numuneleri tamamlandıktan sonra 4 °C'de saklayın. Onlarla devam edin veya ileride kullanmak için -80 °C'de saklayın.
  2. ArındırMak ve ligated cDNA için kalite kontrol yapmak.
    NOT: Güçlendirilmiş cDNA, aşağıda açıklandığı gibi saflaştırılmış cDNA örneklerinin kalitesini ve verimini artırmak için birkaç değişiklik dışında üreticinin protokolüne uygun olarak jel-saflaştırılmıştı.
    1. Güçlendirilmiş cDNA arındırmak için% 6 TBE poliakrilamid jelleri kullanın. Yüksek çözünürlüklü merdiveni (HRL) ve özel RNA merdiveni (CRL) eşit hacimlerde DNA yükleme boyası ile seyreltin.
    2. Her cDNA örneğine 10 μL DNA yükleme boyası ekleyin. Her numunenin 30 μL'sini iki farklı örnek arasındaki ara boşlukta CRL ve HRL ile birbirine bitişik iki ayrı şeritte çalıştırın.
    3. Jeli 1x TBE tamponunda yaklaşık 30−40 dk çalıştırın.
      NOT: Yükleme boyasının alt mavi ön kısmını takip edin. Jelin dibine yaklaştığında elektroforezi durdurun.
    4. Jeli Ethidium Brommide (EtBr) ile 1x TBE tamponuna 0,5 μg EtBr/1 mL 1x TBE'de aktarın.
      DİkKAT: EtBr bilinen bir karsinojendir ve jelden eksizyonun anına kadar buradan her adım çok dikkatli bir şekilde yapılmalıdır.
    5. Jeli bir transilluminator'da görselleştirin ve jeli tam olarak 145 bp ile 160 bp marker arasında kesin olarak kesin olarak kesin.
      NOT: Adaptör dimer'leri 145 bp işaretleyiciye çok yakın çalışır. Bu nedenle, adaptör dimer ile kontaminasyonu önlemek için jeli 145 bp markerin biraz üzerinde kesin.
    6. Jeli 2 mL toplama tüpünde tutulan DNA kırma tüplerine aktarın. 2 dk. 2 dakika boyunca 20.000 x g'de spin. 300 μL RNase içermeyen su ekleyin ve rt'de bir rocker üzerinde yavaşça dönmesini bekleyin.
    7. DNA çökeltisi gerçekleştirmek için, ertesi gün tüpün içeriğini 5 μm filtre tüpüne aktarın. 10 s için 600 x g spin.
      NOT: Jel filtreden geçerken tüplerin 10 s'den uzun süre dönmesine izin vermeyin.
    8. Eluted DNA'ya 2°L glikojen, 30 μL 3 M NaOAc, 2 0,1x pelet boya ve 975°L %100 etanol ekleyin. 20 dakika boyunca 4°C'de 17.000 x g'de döndürün.
    9. Supernatant atın ve pelet yıkamak için% 75 etanol ekleyin. 17.000 x g 4 °C'de 5 dakika boyunca döndü.
    10. 10 mM Tris-HCl pH 8.5 ile 12 μL pelet resuspend.
    11. Saflaştırılmış cDNA'yı 10x (1:10) ile seyrelterek ve biyo-analizörde çalıştırmak için 1 μL seyreltilmiş cDNA kullanarak kütüphane kalite kontrolü yapın.
    12. CDNA ürün boyutunun elektroferogramdaki küçük RNA (136−160 bp) aralığına karşılık gelen denemin olun. Her örnek için toplam azı lılığını hesaplayın. Tris-HCl pH 8.5 kullanarak her numuneyi 2 nM'ye normalleştirin.
  3. Arındırılmış cDNA'yı denatüre ve sırala.
    1. Kütüphaneleri, her 2 nM numunenin eşit hacimlerini tek bir 200 μL PCR tüpte karıştırarak havuzlayın. 10 μL'lik taze hazırlanmış 0,2 N NaOH'u 10 μL havuzlu kütüphaneye ekleyin.
    2. Girdap ile hemen karıştırın ve 1 dk. RT'de 5 dk için 280 x g'de döndürün.
    3. Denatüre kitaplığın 10 μL 200 mM Tris-HCl pH 7 ila 20 μL ekleyin. Girdap ile karıştırın ve 1 dakika için 280 x g spin.
    4. Kütüphaneye 970 μL önceden soğutulmuş hibridizasyon tamponu ekleyin ve girdap yaparak iyice karıştırın. Kütüphane 20 pM konsantrasyonu bulunmaktadır. Sonunda seyreltilene kadar buz üzerinde tutun.
      NOT: Son seyreltme sequencer üzerinde çalışan hemen önce yapılır.
    5. 1.183 μL önceden soğutulmuş hibridizasyon arabelleği için denatüre kitaplık 117 μL ekleyin. Tüp ve darbe santrifüj ters karıştırArak. Kütüphanenin son konsantrasyonu şu anda 1.8 pM'dir.
    6. Son kitaplığın 1,3 mL'sine 1,3 μL PhiX ekleyin. Bir sıralayıcıda çalıştırmayı başlatmak için, yazılım arabirimindeki ekrandaki adımları izleyin, okuma türü (tek okuma), okuma uzunluğu (her okuma için döngü sayısı), kitaplık kimliği ve Başlat'ıseçin dahil olmak üzere çalışma parametrelerini gözden geçirin.

5. Veri Analizi

  1. Sıralayıcı çalışmasının sonunda, elde edilen sıralama verilerini fastQ dosyaları olarak elde edin. Elde edilen sıralama verilerini çözümlemek için uygun yazılımı kullanın.
  2. fastQ araç seti uygulamasını açın ve Başlat düğmesine basın.
  3. Yazılımdaki örnekler listesindeki dosyaları seçin ve verilerin nerede kaydedileceğini seçin.
  4. Kesilmiş her dizi için geçerli olan bir dize adı ekleyin. Sıkılığı 0.9'a tutun. Adaptör sırasını, her dizili örneğin 3' ucundan "TGGAATCTCGGGTGCCAAGG" olarak kırpmak için giriş leyin. Okuma Filtreleme sekmesini genişletin ve "5" en az okundu uzunluğunu seçin. Onay kutusunu seçin ve kırpmabaşlatmak için Devam düğmesine basın. Kırpılan dosyalar, çözümlemenin sonunda proje klasörüne kaydedilir.
  5. Yazılımdaki küçük RNA v.1.0 uygulamasını açın ve Başlat düğmesine basın.
  6. Dosyaların kaydedilip analizden sonra gönderilecek projeyi seçin.
  7. Uygulamada Roman miR'leri ve Diferansiyel miR işlevini seçin. Grupları diferansiyel analiz için "Control" ve "Test" olarak ayırın ve kırpılan dosyaları kendi gruplarında analiz etmek üzere ekleyin.
  8. Çözümlemesi başlatmak için Başlat düğmesini seçin. Analizleri takiben, ortaya çıkan dosyaları indirin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Kütüphane RNA izolasyonundan sonra hazırlandı ve kalite kontrolü yapıldı. Mikrodiskoplu dokulardan ve serum türetilmiş EV'lerden izole edilen RNA'dan hazırlanan güçlendirilmiş cDNA kütüphanesi için jel arınması Şekil 1 ve Şekil 2'degösterilmiştir. Adaptör-ligated miRNA'ların ürün boyutu her numune için yaklaşık 136−160 bp'ye karşılık gelmektedir. Şekil 1A-B, küçük RNA kitaplığı hazırlığı için hassas bir şekilde çıka...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu makalede, izole RNA'ların verimini ve kalitesini artırmak için optimize edilmiş kitleri kullanarak RNA'yı FFPE dokularından ve serum kaynaklı EV'lerden izole eden bir protokol açıklıyoruz. Ayrıca, saflaştırılmış RNA'lar küçük RNA dizilimi için cDNA kitaplıkları oluşturmak için kullanılmıştır. Listelenen adımların her ikisi de,24'ünnihai sonucu olan sıralama okumalarının kalitesini ve derinliğini belirlemede gereklidir. Bu nedenle, bu önemli adımları optimize etmek başarılı bir sıralama çalışmas...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarların beyan etmek için çıkar çatışması yok.

Teşekkürler

Bu çalışma, ABD Ordusu Tıbbi Araştırma Edinme Aktivitesi (USAMRAA) tarafından Fikir Geliştirme Ödülü altında Ödül No ile desteklenir. W81XWH-18-1-303 ve W81XWH-18-2-0013 ve ayrıca Ödül no. W81XWH-18-2-0015, W81XWH-18-2-0016, W81XWH-18-2-0017, W81XWH-18-2-0018 ve W81XWH-18-2-0019 Prostat Kanseri Biyorepozitory Network (PCBN). Ulusal Sağlık Enstitüleri (Grant Number RO1CA177984) ulusal kanser enstitüsü tarafından yazarların laboratuvarına finansman desteği de kabul edilmektedir. Rajvir Dahiya, BX004473 Gazi İşleri Bölümü'nde Kıdemli Araştırma Kariyer BilimCisi dir ve NIH-UO1199694 (RD) tarafından finanse edilmektedir. Görüşler, yorumlar, sonuçlar ve öneriler yazarın görüşleridir ve Mutlaka Savunma Bakanlığı veya ABD Ordusu tarafından onaylanmaz. Biz Judy Shigenaga, San Francisco VAMC de çekirdek tesis müdürü, NextSeq 500 sequencer ile ona yardım için müteşekkiriz.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3 M NaOAc pH 5.5USB Corp.75897 100 mL
5 ve mikro; m filtre tüpleriIST Mühendislik A.Ş.5388-50
%6 TBE poliakrilamid jellerNovexEC6265BOX
BaseSpaceIlluminaAnaliz yazılımı
BiyoanalizörAgilent
DNA yükleme boyasıNovexLC6678
Eppendorf Termostat artıEppendorf 1.5 mL
EtBrPierce17898
Etil alkol 200 geçirmezPharmco111000200
Ekzozomal RNA izolasyon kitiNorgen58000
Jel kırma tüpleriIST Mühendislik A.Ş.3388-100
Glikojen moleküler biyoloji sınıfıThermo ScientifcR0561
Hematoksilen SelectStat labSL401
MikrosantrifüjFisher Scientific13-100-676accuSpin Micro 17R
miRNeasy FFPE kitiQiagen217504
NanodropThermo ScientifcNano Drop 1000
Nanosight NTAMalvernLM14
NextSeq 500 SıralayıcıIllumina
NextSeq 500/550 Orta Çıkış Kiti v2 (150 döngü)IlluminaFC-404-2001
Pelet boyaMillipore70748-3
Üstsimge II Ters TranskriptazInvitogen18064014
T4 RNA Ligaz 2 Delesyon MutantıLucigenLR2D11310K
TBE Çalışan tampon (5x)NovexLC6675
Termal döngüleyiciMJ ResearchPTC100
Toplam eksozom izolasyon reaktifi (serumdan)Invitrogen4478360
TrueSeq küçük RNA kütüphanesi Hazırlık kiti-Set A (İndeks 1-12)IlluminaRS-200-0012
KsilenBalıkçısı BilimselX3P-1GAL
RNA 3' AstarGUUCAGAGUUCUACAGUCCGACGAUC
RNA 5' AstarTGGAATTCTCGGGTGCCAAGG
Durdur OligoGAAUUCCACCACGUUCCCGUGG
RNA RT AstarGCCTTGGCACCCGAGAATTCCA
RNA PCR AstarıAATGATACGGCGACCACCACCACCACGTTCAGAGTTCTACAGTCCGA
RNA PCR Endeksi PrimerCAAGCAGAAGACGGCATACGAGAT[6 baz]GTGACTGGAGTTCCTTGGCACCCGAGAATTCCA
--6 adaptör
RNA PCR İndeksi Primer 1CGTGAT
RNA PCR Endeksi Primer 2ACATCG
RNA PCR Endeksi Primer 3GCCTAA
RNA PCR İndeksi Primer 4TGGTCA
RNA PCR Endeksi Primer 5CACTGT
RNA PCR Endeksi Primer 6ATTGGC
RNA PCR Indeksi Primer 7GATCTG
RNA PCR Indeksi Primer 8TCAAGT
RNA PCR İNDEKSI Primer 9CTGATC
RNA PCR İNDEKSI Primer 10AAGCTA
RNA PCR Endeksi Primer 11GTAGCC
RNA PCR Endeksi Primer 12TACAAG

Kaynaklar

  1. Heinlein, C. A., Chang, C. Androgen receptor in prostate cancer. Endocrine Reviews. 25 (2), 276-308 (2004).
  2. Tilki, D., Schaeffer, E. M., Evans, C. P. Understanding Mechanisms of Resistance in Metastatic Castration-resistant Prostate Cancer: The Role of the Androgen Receptor. European Urology Focus. 2 (5), 499-505 (2016).
  3. Vlachostergios, P. J., Puca, L., Beltran, H. Emerging Variants of Castration-Resistant Prostate Cancer. Current Oncology Reports. 19 (5), 32(2017).
  4. Aggarwal, R., Zhang, T., Small, E. J., Armstrong, A. J. Neuroendocrine prostate cancer: subtypes, biology, and clinical outcomes. Journal of the National Comprehensive Cancer Network. 12 (5), 719-726 (2014).
  5. Beltran, H., et al. Divergent clonal evolution of castration-resistant neuroendocrine prostate cancer. Nature Medicine. 22 (3), 298-305 (2016).
  6. Calin, G. A., Croce, C. M. MicroRNA signatures in human cancers. Nature Reviews Cancer. 6 (11), 857-866 (2006).
  7. Coppola, V., De Maria, R., Bonci, D. MicroRNAs and prostate cancer. Endocrine-Related Cancer. 17 (1), 1-17 (2010).
  8. Ambs, S., et al. Genomic profiling of microRNA and messenger RNA reveals deregulated microRNA expression in prostate cancer. Cancer Research. 68 (15), 6162-6170 (2008).
  9. Lu, J., et al. MicroRNA expression profiles classify human cancers. Nature. 435 (7043), 834-838 (2005).
  10. Bhagirath, D., Yang, T. L., Dahiya, R., Saini, S. MicroRNAs as Regulators of Prostate Cancer Metastasis. Advances in Experimental Medicine and Biology. 1095, 83-100 (2018).
  11. Hoshino, A., et al. Tumour exosome integrins determine organotropic metastasis. Nature. 527 (7578), 329-335 (2015).
  12. Colombo, M., Raposo, G., Thery, C. Biogenesis, secretion, and intercellular interactions of exosomes and other extracellular vesicles. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 30, 255-289 (2014).
  13. Bhagirath, D., et al. microRNA-1246 Is an Exosomal Biomarker for Aggressive Prostate Cancer. Cancer Research. 78 (7), 1833-1844 (2018).
  14. Witte, J. S. Prostate cancer genomics: towards a new understanding. Nature Reviews Genetics. 10 (2), 77-82 (2009).
  15. Kim, J. H., et al. Deep sequencing reveals distinct patterns of DNA methylation in prostate cancer. Genome Research. 21 (7), 1028-1041 (2011).
  16. Robinson, D., et al. Integrative clinical genomics of advanced prostate cancer. Cell. 161 (5), 1215-1228 (2015).
  17. Kim, J., Yu, J. Interrogating genomic and epigenomic data to understand prostate cancer. Biochimica Et Biophysica Acta. 1825 (2), 186-196 (2012).
  18. Bucay, N., et al. miRNA Expression Analyses in Prostate Cancer Clinical Tissues. Journal of Visualized Experiments. (103), e53123(2015).
  19. Geiss, G. K., et al. Direct multiplexed measurement of gene expression with color-coded probe pairs. Nature Biotechnology. 26 (3), 317-325 (2008).
  20. Tam, S., de Borja, R., Tsao, M. S., McPherson, J. D. Robust global microRNA expression profiling using next-generation sequencing technologies. Laboratory Investigation. 94 (3), 350-358 (2014).
  21. Rodriguez, M., et al. Identification of noninvasive miRNAs biomarkers for prostate cancer by deep sequencing analysis of urinary exosomes. Molecular Cancer. 16 (1), 156(2017).
  22. Guelfi, G., et al. Next Generation Sequencing of urine exfoliated cells: an approach of prostate cancer microRNAs research. Scientific Reports. 8 (1), 7111(2018).
  23. Daniel, R., et al. A Panel of MicroRNAs as Diagnostic Biomarkers for the Identification of Prostate Cancer. International Journal of Molecular Sciences. 18 (6), 1281(2017).
  24. Xuan, J., Yu, Y., Qing, T., Guo, L., Shi, L. Next-generation sequencing in the clinic: promises and challenges. Cancer Letters. 340 (2), 284-295 (2013).

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

RNA İzolasyonuKütüphane HazırlamaYeni Nesil DizilemeJel ElektroforezicDNA SenteziEkzozom İzolasyonu
Formalin-sabit Dokulardan Küçük Kodlamaz RNA'nın ve Kastrasyona Dirençli Prostat Kanseri Hastalarından Serum Türetilmiş Ekzozomların Dizilimi
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.