Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Fare Megakaryosit Progenitors İzolasyonu

7.1K görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/62498

⸱

20 Mayıs 2021

 ,  ,  ,  , 

Bu makalede

Düzeltme bildirimi

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

Özet

Bu yöntem, MEP ve MKp'nin fare femurları, kaval kemiği ve pelvik kemiklerden akış sitometrisi ile saflaştırılmasını açıklar.

Özet

Kemik iliği megakaryositleri kan trombositlerinin üretimini sağlayan büyük poliploid hücrelerdir. Megakaryopoez yoluyla hematopoetik kök hücrelerden kaynaklanırlar. Bu sürecin son aşamaları karmaşıktır ve klasik olarak bipotent Megakaryosit-Eritrosit Progenitors (MEP) ve tek kişilik Megakaryosit Progenitors 'u (MKp) içerir. Bu popülasyonlar iyi niyetli megakaryositlerin oluşumundan önce gelir ve bu nedenle izolasyonları ve nitelemeleri megakaryosit oluşumunun sağlam ve tarafsız analizine izin verebilir. Bu protokol, fare kemik iliğinden hematopoetik hücreleri toplama prosedürünü, hematopoetik progenitörlerin manyetik tükenme yoluyla zenginleştirilmesini ve son olarak yüksek oranda saflaştırılmış MEP ve MKp popülasyonları veren bir hücre sıralama stratejisini ayrıntılı olarak sunar. İlk olarak, kemik iliği hücreleri femurdan, kaval kemiğinden ve ayrıca yüksek sayıda hematopoetik progenitör içeren bir kemik olan iliak arktan toplanır. İlyak tepe kemiklerinin kullanımı, fare başına elde edilen toplam hücre sayısını büyük ölçüde arttırır ve böylece hayvanların daha etik bir şekilde kullanılmasına katkıda bulunur. Manyetik soy tükenmesi, akış sitometrisine göre çok verimli bir hücre sıralamaya izin vererek 450 nm manyetik boncuk kullanılarak optimize edildi. Son olarak, protokol iki yüksek saflaştırılmış megakaryosit progenitör popülasyonunun sıralanması için etiketleme ve gating stratejisini sunar: MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim)ve MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9parlak ). Bu tekniğin uygulanması kolaydır ve i) kimlikleri ve biyolojileri hakkında daha derin bir bilgi için moleküler karakterizasyon, ii) megakaryositlerin olgunlaşma mekanizmalarının daha iyi anlaşılmasını sağlayacak in vitro farklılaşma tahlilleri veya iii) mikroçevrimle etkileşimin in vitro modellerini gerçekleştirmek için yeterli hücresel materyal sağlar.

Giriş

Kan trombositleri megakaryositler tarafından üretilir. Bu büyük poliploid hücreler kemik iliğinde bulunur ve tüm kan hücrelerine gelince Hematopoetik Kök Hücrelerden (HSC) türetilirler1. Kemik iliğindeki megakaryositlerin klasik üretim yolu HSC'den kaynaklanır ve farklılaşma potansiyellerini giderek kısıtlayan farklı ataların neslini içerir2. Megakaryosit soyuna bağlılığı imzalayan ilk ata, hem eritroid hücreleri hem de megakaryositler3,4,5 üretebilen bir bipotent progenitör olan Megakaryosit-Eritrosit Progenitor'dur(MEP). MEP d....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

Hayvanları içeren protokoller, CREMEAS Strazburg Üniversitesi Hayvan Deneyleri Etik Komitesi (Comité Régional d'Ethique en Matière d'Expérimentation Animale Strasbourg) uyarınca gerçekleştirildi. İzin Numarası: E67-482-10).

1. Fare kemiği koleksiyonu

  1. Hayvanı kurumsal yönergelere uygun olarak kurban edin.
    NOT: Bu yazıda sunulan veriler 8 ila 12 haftalık C57Bl/6 farelerden elde edilmiştir. Elde edilen hücre sayısı ve atıf yapılan popülasyonların sıklığı yaş ve fare zorlanmasına göre değişebilir.
  2. Vücuda% 70 etanol püskürtün.
  3. Makas kullanarak, omurgaya dik olan cildin 0,5-1 cm'lik bir kesisini yapın ve cildi tüm....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

MEP ve MKp olarak tanımlanan hücrelerin fenotipik analizi akış sitometrisi ile yapıldı. Hücreler, megakaryositik ve trombosit soylarının klasik belirteçleri olan CD41a ve CD42c'ye floresan konjuge antikorlarla etiketlendi. Her iki belirteç de MKp popülasyonunun hücreleri tarafından ifade edilirken, bu belirteçler MEP popülasyonunun hücrelerinin yüzeyinde henüz tespit edilmiştir (Şekil 4Ai,4Aii). Poliploidi megakaryositlerin ayırt edici özelliğidir. Sıralanmış popülasyonların.......

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu makalede açıklanan yöntem, fare MEP ve MKp'nin çıkarılmasına ve saflaştırılmasına izin verir. Protokolün optimizasyonunda önemli bir parametre, çoğu moleküler ve hücresel tabanlı tahlille uyumlu yeterli sayıda hücre elde etmekti. Hematopoetik hücre ekstraksiyonu için fare kemiği toplamanın genel uygulaması genellikle her farenin hem uyluk kemiğinin hem de kaval kemiğinin toplanmasından oluşur. Hematopoetik malzemenin başka bir kaynağı olan pelvik kemik, bu nedenle sıklıkla göz ardı edilir. İlyak armasını toplamamanın .......

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar rakip finansal çıkarlar beyan etmemektedir.

Teşekkürler

Yazarlar monique Freund, Catherine Ziessel ve Ketty'ye teknik yardım için teşekkür etmek istiyor. Bu çalışma ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique) ve Grant ANR-17-CE14-0001-01 tarafından Henri.de la'ya desteklendi. Salle.

....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
21 gauge iğnelerBD Microlance301155
7AADSigma-AldrichA9400
Antikor Gr-1-biotineBioscience13-5931-85Manyetik tükenme
Antikoru B220-biotineBioscience13-0452-85Manyetik tükenme
Antikoru Mac-1-biotineBioscience13-0112-85Manyetik tükenme
Antikoru CD3e-biotineBioscience13-0031-85Manyetik tükenme
Antikoru CD4-biotineBioscience13-9766-82Manyetik tükenme
Antikoru CD5-biotineBioscience13-0051-85Manyetik tükenme
Antikoru CD8a-biotineBioscience13-0081-85Manyetik tükenme
Antikoru TER119-biotineBioscience13-5921-85Manyetik tükenme
Antikoru CD127-biotineBioscience13-1271-85Manyetik tükenme
Antikoru CD45-FITCeBioscience11-0451-85Hücre sıralama
Antikoru CD45-PEeBioscience12-0451-83Hücre sıralama
Antikoru TER119-APCeBioscience17-5921-83Hücre sıralama
Antikor CD45-PECy7eBioscience25-0451-82Hücre sıralama
Antikoru CD45-biotineBioscience13-0451-85Hücre sıralama
Antikoru CD9-FITCeBioscience11-0091-82Hücre sıralama
Antikoru ve c-kit-APCeBioscience17-1171-83Hücre sıralama
Antikoru Sca-1-PEeBioscience12-5981-83Hücre sıralama
Antikoru CD16/32-PEeBioscience12-0161-83Hücre sıralama
Antikoru CD150-PECy7eBioscience25-1502-82Hücre sıralama
Kültür ortamı StemSpan-SFEMKök hücre teknolojileri# 09650
Diseksiyon pediFisher Scientific10452395
DPBSYaşam Teknolojileri14190-094
EtanolvWR Kimyasalları83813.360
ForsepsEuronexiaP-120-AS
Cam pastör pipetiDutscher42011
Mıknatıs :  DynaMag-5Thermo Fisher Scientific12303D
Manyetik boncuklar: Dynabeads Koyun Anti-Sıçan IgGThermo Fisher Scientific11035
MegacultKök Hücre teknolojileri#04970
MethoCult SF M3436Kök hücre teknolojileri#03436
Yenidoğan Buzağı SerumuDutscher50750-500
Kırmızı Hücre Lizisi çözümBD Bioscience555899
NeşterlerFisher Scientific12308009
MakasEuronexiaC-165-ASB
Steril 1 mL şırıngalarBD Bioscience303172
Steril 15 mL tüplerSarstedt62.554.502
Steril 5 mL polipropilen tüplerFalcon352063
Steril 5 mL polistiren tüplerFalcon352054
70 mikro& ile steril tüpler; m hücreli süzgeç kapağıFalcon352235
Steril petri kabıFalcon353003
Streptavidin-APC-Cy7BD Biosciences554063Hücre sıralama
Tüp silindiriBenchmark ScientificR3005

Kaynaklar

  1. Kaushansky, K. Historical review: megakaryopoiesis and thrombopoiesis. Blood. 111 (3), 981-986 (2008).
  2. Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages. Nature. 404 (6774), 193-197 (....

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Düzeltme


Formal Correction: Erratum: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors
Posted by JoVE Editors on 7/28/2021. Citeable Link.

An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.

Figure 2 was updated from:

Hematopoietic cell separation diagram with flow cytometry result, showing Lin+ and Lin- fractions.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

to:

Hematopoietic cell separation process diagram with antibody labeling and magnet use, flow cytometry results.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

Daha fazla makale keşfet

Kemik İliği İzolasyonuManyetik EksiltmeAkış SitometrisiHücre AyıklamaHematopoetik ProjenitörlerMegakaryosit-Eritrosit ProjenitörleriIn Vitro DiferansiyasyonCD41 MarkörüTrombosit Oluşumu